Przegląd roślin wykorzystywanych w celu poprawy sprawności seksualnej i sprawności (2014)

 

Abstrakcyjny

Stosowanie produktów roślinnych lub roślinnych w celu pobudzenia pożądania seksualnego oraz zwiększenia wydajności i przyjemności jest prawie tak stare, jak sama rasa ludzka. W niniejszym artykule dokonano przeglądu aktywnych, naturalnych zasad i surowych ekstraktów roślin, które były użyteczne w zaburzeniach seksualnych, mają potencjał poprawy zachowań seksualnych i wydajności, a także są pomocne w spermatogenezie i reprodukcji. Szeroko przeprowadzono przegląd recenzowanych czasopism i literatury naukowej dostępnych w elektronicznych bazach danych i tradycyjnej literaturze dostępnej w Indiach. W pracy dokonano przeglądu korelacji dowodów z tradycyjnymi twierdzeniami, wyjaśnieniem i oceną wiarygodnej koncepcji regulującej wykorzystanie roślin jako ogółu afrodyzjaków. Fitokonstytucje o znanych strukturach zostały sklasyfikowane w odpowiednich grupach chemicznych, a aktywne surowe ekstrakty zostały zestawione w tabelach. Przedstawiono dane dotyczące ich aktywności farmakologicznej, mechanizmu działania i toksyczności. Niniejszy przegląd zawiera przegląd ziół i ich aktywnej cząsteczki z roszczeniami do poprawy zachowań seksualnych. Wiele leków ziołowych zostało zwalidowanych pod kątem ich wpływu na zachowania seksualne i płodność, a zatem może służyć jako podstawa do identyfikacji nowych związków chemicznych przydatnych w zaburzeniach erekcji i seksualnych.

1. Wprowadzenie

Według badania przeprowadzonego przez Światową Organizację Zdrowia w 50 roku, zdolność rozrodcza mężczyzn jest niewystarczająca u prawie 1987% niepłodnych par. Chociaż nadal oczekuje się dalszych danych dotyczących tej dekady, jest pewne, że stresujący styl życia zwiększył liczbę podmiotu cierpiącego na jedną lub drugą formę dysfunkcji seksualnych. Głównymi czynnikami zmniejszającymi prawdopodobieństwo poczęcia u partnerki są często przyczyny wrodzone, immunologiczne, jatrogenne lub endokrynologiczne. Oligozoospermia, zaburzenia seksualne i ejakulacyjne są dalej odpowiedzialne za niezdolność do poczęcia w wielu przypadkach [1]. Chociaż wiele leków syntetycznych jest dostępnych i / lub stosowanych do leczenia tych problemów, niektóre z wad tych leków obejmują ich kosztowność, a zatem ich zdolność do wywoływania poważnych działań niepożądanych, skutecznych naturalnych metod leczenia, jest zatem nadal pożądana. Nawet jeśli wiele roślin lub produktów naturalnych twierdzi, że udowodni swoją skuteczność bez dowodów naukowych, wiele z nich jest aktywnych i posiada aktywność biologiczną, co potwierdzają dane naukowe. Ponadto brakuje systematycznego przeglądu literatury naukowej na temat dowodów doświadczalnych generowanych dla roślin leczniczych przydatnych w leczeniu zaburzeń erekcji i istnieje potrzeba dogłębnej oceny farmakologicznej [2].

Postęp w zrozumieniu farmakologicznych podstaw erekcji i funkcji seksualnych na poziomie molekularnym okazuje się być krokiem w kierunku izolacji kluczowych czynników fizjologicznych zaangażowanych w podniecenie seksualne, pomagając w ten sposób zawęzić poszukiwania substancji z wyboru afrodyzjaku. Wielu ludzi nie wierzy w eliksiry miłosne lub afrodyzjaki, ale niezliczona liczba mężczyzn i kobiet wykorzystywała je przez wieki, a istnieją wyraźne dowody, że są one nadal w użyciu. Sceptycyzm wobec koncepcji afrodyzjaku nie jest nieuzasadniony, chociaż systematyczna ocena i kompilacja informacji naukowych może stanowić podstawę opartego na dowodach wykorzystania leków ziołowych w leczeniu dysfunkcji seksualnych w ogóle. Niniejszy przegląd jest próbą dopełnienia dostępnych informacji naukowych na temat różnych leków ziołowych, które zostały ocenione pod kątem ich wpływu na sprawność seksualną i funkcjonalność. Przegląd obejmuje również znane dowody zebrane w celu włączenia leków ziołowych do mechanizmów nerwowych, tlenku azotu i hormonozależnych oraz ich roli w funkcjach seksualnych. Wiele roślin zostało szczegółowo omówionych, a kilka innych jest tylko tabelarycznych; głównym kryterium tego układu było znaczenie etnofarmakologiczne rośliny w ajurwedyjskim systemie medycyny. Niemniej jednak bardzo ważne jest, aby wspomnieć, że nie pociąga to za sobą systemu klasyfikacji dla roślin opisanych w niniejszym dokumencie, a niektóre rośliny wymienione tylko w formie tabelarycznej mogą mieć również duże znaczenie naukowe.

2. Tło historyczne

Słowo „afrodyzjak” pochodzi od greckiej bogini miłości „Afrodyta”. Z definicji afrodyzjaki są substancją, która stymuluje pożądanie seksualne (grecko-afrodyzjako-seksualne) [3]. Różnorodne rośliny były używane jako środki pobudzające płeć lub wzmacniacz sprawności seksualnej w tradycyjnych systemach medycyny różnych krajów [4-6]. Praktycy Ajurwedy, tradycyjnego systemu medycznego w Indiach, uznali ogromne znaczenie męskości i sformułowali terapię Vajikarna [7] (Tabela 1). Współczesna koncepcja terminu „afrodyzjak” może być uważana za bliską koncepcji Vajikarny zdefiniowanej w tradycyjnych tekstach medycyny ajurwedyjskiej.

Tabela 1 

Lista roślin zgłoszona w Ayurveda jako Vajikaran Rasayan.

3. Vajikaran w tekstach ajurwedyjskich

Vajikaran jako pojęcie zostało zdefiniowane w Rig Veda oraz Yajurveda, pierwsze pisemne teksty medycyny, w Ajurwedzie. Zioła Vajikarana są również podstawą terapii zalecanych w Kamasutra, traktat określający metody odpowiedniej satysfakcji seksualnej wśród par. Fragment definicji wywodzącej się z tych tekstów sugeruje, że młodzież zdrowa, regularnie przyjmująca lekarstwa Vajikarany, może cieszyć się przyjemnością młodości każdej nocy przez wszystkie pory roku [8]. Starcy, którzy pragną cieszyć się przyjemnością seksualną lub zabezpieczyć uczucia kobiet, jak również ci, którzy cierpią z powodu starczego rozpadu lub niezdolności seksualnej, a także osoby osłabione ekscesami seksualnymi, mogą również stosować środki Vajikaran. Są bardzo korzystne dla przystojnej i bogatej młodzieży oraz dla osób, które mają wiele żon. Według Rasendry Sary Sangrah ajurwedyjskiego tekstu lekarstwo Wajikarana czyni mężczyznę seksualnie tak silnym jak koń (Vaji) i pozwala mu radośnie zaspokoić upał i miłosne żarty młodych dziewcząt (Rysunek 1) [9, 10]. Chociaż w kategoriach naukowych twierdzenia te mogą przedstawiać zaludnienie, popularność Vajikaran w ajurwedyjskim systemie medycyny jest jednak niekwestionowana dzięki licznym twierdzeniom i tekstowym odniesieniom do nich w historii ludzkości.

Rysunek 1 

Akcja Vajikarana Rasayany.

4. Funkcje seksualne: przegląd ajurwedyjski

Dyskusje seksualne omawiane w Ajurwedzie są następujące sześć typów:

  1. Zaprzestanie pożądania seksualnego z powodu narastających gorzkich myśli o wspomnieniach w umyśle mężczyzny lub przymusowy stosunek z nieprzyjemną kobietą (która nie wzbudza pożądania seksualnego w sercu partnera) ilustruje przypadek psychicznej impotencji.
  2. Nadmierne używanie artykułów o ostrym, kwaśnym lub słonym smaku lub artykułów wytwarzających ciepło w postaci taryfy prowadzi do utraty Saumya Dhatu (zasady wodnej) organizmu. To kolejny rodzaj impotencji.
  3. Impotencja wirusowa wynikająca z utraty nasienia u osób uzależnionych od nadmiernej przyjemności seksualnej bez stosowania afrodyzjaków jest zaletą impotencji męskiej.
  4. Długotrwała choroba męskiego narządu generatywnego (syfilis itp.) Lub zniszczenie lokalnej Marmy, takiej jak spermatyczna sznura, całkowicie niszczy moc korzeni.
  5. Niezdolność seksualna od samego urodzenia nazywana jest impotencją wrodzoną (Sahaja).
  6. Dobrowolne tłumienie pożądania seksualnego przez silnego mężczyznę obserwującego doskonałą wstrzemięźliwość lub całkowitą apatię powoduje twardość płynu nasiennego i jest przyczyną szóstej formy impotencji męskiej.

Spośród sześciu powyższych rodzajów impotencji postać wrodzona, jak również ta spowodowana zniszczeniem jakiejkolwiek lokalnej Marma (sznura nasienia), powinna być uważana za nieuleczalną, reszta jest uleczalna i podatna na środki i środki zaradcze przeciwne do ich pochodzenia powoduje [11].

5. Ajurweda i koncepcja afrodyzjaków

Tradycyjny traktat ajurwedyjski klasyfikuje afrodyzjak w następujących pięciu kategoriach, kilka roślin zostało dostarczonych jako odnośniki dla każdego rodzaju zdefiniowanej klasy terapeutycznej [3].

  1. Leki, które zwiększają ilość nasienia lub stymulują produkcję nasienia, na przykład, Microstylis wallichii, Roscoea procera, Polygonatum verticillatum, Mucuna pruriens, Szparag racemosus.
  2. Leki, które na przykład oczyszczają i poprawiają jakość nasienia, Saussurea lappa, Myrica nagi, Sesamum indicum, Vetiveria zizanioides, Anthocephalus cadamba.
  3. Np. Leki poprawiające funkcje ejakulacyjne, Strychnos nux vomica, Cannabis sativa, Myristica fragrans, Cassia occidentalis.
  4. Leki opóźniające czas wytrysku lub poprawiające wydajność ejakulacji, na przykład, Sida cordifolia, Asparagus racemosus, Cinnamomum tamala, Anacyclus pyrethrum, Mucuna pruriens i Cannabis sativum.
  5. Narkotyki wzbudzające pożądanie seksualne, a mianowicie, Withania somnifera, Szparagi racemosus, Datura stramonium, Anacyclus pyrethrum, Hibiscus abelmoschus, Opium.

Po omówieniu ajurwedyjskiej podstawy roli ziół Vajikarana, ważne jest, aby zrozumieć rolę współczesnej farmakologii i wgląd w kontrolę zachowań seksualnych w ludzkim ciele.

6. Mechanizm zachowania seksualnego: nowoczesna perspektywa

Nasze zrozumienie procesu i inicjacji podniecenia seksualnego polega na znalezieniu bardziej przejrzystej podstawy, która wynika z dowodów zarówno w badaniach przedklinicznych, jak i klinicznych. Podniecenie seksualne zależy od czynników neuronalnych (czuciowych i poznawczych), hormonalnych i genetycznych, a także od Ajurwedy, a także od języka naukowego odpowiedniego dla tego wieku.

7. Mózg i neurochemiczne podstawy zachowań seksualnych

Leki wpływające na seksualność mogą działać na ośrodkowy układ nerwowy (mózg) i / lub obwodowy układ nerwowy. Leki wpływające na mózg i prawdopodobnie ośrodki seksualne są zwykle przypisywane wzrostowi lub zmniejszeniu pobudzenia seksualnego. Leki wpływające na nerwy obwodowe nie wpływają bezpośrednio na pobudzenie, ale mogą wpływać na funkcje seksualne. W niektórych przypadkach działanie leków jest bezpośrednie i obejmuje chemiczną zmianę neuronów, która reguluje pobudzenie seksualne lub funkcję. Alternatywnie, niektóre leki mogą działać pośrednio, zmieniając przepływ krwi do narządów płciowych. Większość hipotez dotyczących neurochemicznych podstaw zachowań seksualnych pochodzi z badań na zwierzętach, ale w niektórych przypadkach wsparcie zostało zapewnione przez badania kliniczne. Pięć głównych neurochemicznie odmiennych systemów ma współpracować w celu zwiększenia pobudzenia seksualnego. Nadajniki obejmują noradrenalinę, dopaminę, serotoninę, acetylocholinę i histaminę [12]. Najbardziej rozpowszechnione hipotezy sugerują, że zarówno serotonina, jak i dopamina biorą udział w neurochemicznej kontroli zachowań seksualnych, a serotonina odgrywa rolę hamującą, a dopamina odgrywa rolę pobudzającą. Dopamina odgrywa kluczową rolę w centralnej kontroli zachowań seksualnych u mężczyzn [13]. Wzrost aktywności ośrodkowych układów dopaminergicznych koreluje z aktywnością seksualną [14]. In vivo mikrodializa u przytomnych samców szczurów wykazała, że ​​transmisja dopaminy gwałtownie wzrasta w prążkowiu, jądrze półleżącym i przyśrodkowym obszarze preoptycznym podczas kopulacji [15-17]. Ta zmiana centralnej neurotransmisji może być dopuszczalna dla szeregu reakcji motorycznych, w tym wzwodu prącia. Może również modulować aktywność jąder mózgu bezpośrednio zaangażowanych w kontrolę wzwodu prącia [18]. Na przykład leki, takie jak lewodopa, które zwiększają poziom dopaminy w mózgu, są zwykle związane ze zwiększeniem libido i poprawą funkcji seksualnych u pacjentów cierpiących na nieprawidłową aktywność dopaminy, taką jak ta związana z chorobą Parkinsona. Natomiast leki blokujące działanie dopaminy, takie jak haloperidol, powodują utratę podniecenia seksualnego. Od dawna podejrzewano, że monoaminy odgrywają kluczową rolę w regulacji zachowań seksualnych, w szczególności transmisji dopaminergicznej, która ułatwia aktywność męską i obejmuje zarówno receptory dopaminergiczne, jak i adrenergiczne. Johimbina, bromokryptyna i rezerpina są czynnikami blokującymi receptory alfa-adrenergiczne, podczas gdy johimbina, bromokryptyna, amfetamina i apomorfina - wszystkie komety z neuroprzekaźnikiem dopaminą wiążą się z miejscami błony [19]. Ponadto niektóre badania sugerują również, że uwalnianie dopaminy zwiększa się również podczas aktywności seksualnej w jądrze przykomorowym podwzgórza i że w tym jądrze podwzgórza dopamina ułatwia wzwód prącia i zachowanie seksualne poprzez aktywację wytwarzania NO w ciałach komórkowych neuronów oksytocyny kontrolujących prącie erekcja i motywacja seksualna, które przenoszą się na poza mózgowe obszary mózgu i rdzeń kręgowy [13, 20-24]. W związku z tym wydaje się, że istnieje wiele przesłanek dotyczących różnych poziomów neuronów między dopaminą i tlenkiem azotu; zostało to omówione w dalszej części.

8. Mechanizm zachowania seksualnego oparty na tlenku azotu

Tlenek azotu (NO) jest atypową cząsteczką regulacyjną pełniącą podwójną rolę jako pomocniczy przekaźnik / neuroprzekaźnik. Wplątano go w różne funkcje fizjologiczne [22]. Dotychczasowe ustalenia wskazują, że NO może być również głównym przekaźnikiem neuronalnym [23]. W szczególności jest to ustalony fizjologiczny mediator erekcji prącia [24] i w mózgu; Syntaza NO jest silnie skoncentrowana w strukturach bezpośrednio lub pośrednio związanych z zachowaniami seksualnymi (opuszka węchowa, jądra nadkomorowe i okołokomorowe, ciało migdałowate, struktury przegrody itp.) [25].

Ostatnie badania sugerują, że NO jest głównym bodźcem fizjologicznym dla rozluźnienia naczyń prącia i mięśni gładkich beleczkowatych, niezbędnych dla erekcji prącia [26]. Relaksacja mięśni gładkich beleczkowatych ciał jamistych prowadzi do zmniejszenia oporu naczyniowego i zwiększenia przepływu krwi do prącia. Wraz ze zwiększonym przepływem, odpływ żylny zmniejsza się dzięki kompresji żył subtunicznych. Połączenie zwiększonego napływu i zmniejszonego odpływu powoduje obrzęk prącia i erekcję. NO z śródbłonka naczyniowego sinusoidów i nerwów nieadrenergicznych, niecholinergicznych i nerwów jamistych wydaje się pośredniczyć w rozszerzeniu naczyń [27, 28]. Nowy lek stosowany w leczeniu zaburzeń erekcji i syldenafil działa poprzez nasilanie działania NO przez hamowanie specyficznego enzymu fosfodiesterazy V, który kończy działanie cGMP wytwarzanego przez NO w układzie naczyniowym prącia [29]. Wykazano, że wiele ziół leczniczych i leków pochodzących z tych ziół ma wpływ na szlak sygnalizacji NO. Na przykład wykazano, że saponiny z żeń-szenia (ginsenozydy) rozluźniają naczynia krwionośne (prawdopodobnie przyczyniając się do działania przeciwwymiotnego i obniżającego ciśnienie krwi żeń-szenia) i ciał jamistych (a więc do leczenia mężczyzn cierpiących na zaburzenia erekcji; legendarny efekt afrodyzjaku żeń-szenia może być przesadą) [30].

9. Mechanizm zachowań seksualnych oparty na androgenach

Androgeny odgrywają kluczową rolę w rozwoju wtórnych męskich narządów płciowych, takich jak najądrza, nasieniowody, pęcherzyki nasienne, prostata i penis. Ponadto androgeny są potrzebne do dojrzewania płciowego, męskiej płodności i funkcji seksualnych mężczyzn [29]. Testosteron jest głównym androgenem wydzielanym przez jądra. Testosteron jest syntetyzowany w komórkach Leydiga jąder, stymulowanych przez hormon luteinizujący (LH). Jednym z głównych efektów testosteronu w jądrach jest stymulacja spermatogenezy w kanalikach nasiennych. Kompleks testosteronu lub receptora dihydrotestosteronu przechodzi przez błonę jądrową, wiąże się z DNA i stymuluje nową syntezę mRNA, a tym samym nową syntezę białek. Wpływ testosteronu na libido może wymagać konwersji testosteronu do estradiolu w podwzgórzu. Mechanizmy, za pomocą których testosteron wpływa na mięśnie, kości i erytron, nie wydają się wymagać wcześniejszej konwersji molekularnej [30].

Stwierdzono, że leki stosowane w leczeniu różnych problemów seksualnych modyfikują działanie neuroprzekaźników, które mogą być ułatwione, hamujące lub oba. Wiadomo, że androgeny wpływają na produkcję NO w mózgu, a także na obwodzie [31, 32]. NO jest syntetyzowany przez enzym syntazę tlenku azotu (NOS), który odgrywa ważną rolę w wielu funkcjach mózgu. Funkcja NO jako neurotransmiter i NOS jest obecna w regionach mózgu, które regulują funkcje seksualne [33]. Co ciekawe, podawanie testosteronu kastrowanym samcom szczurów zwiększa liczbę neuronów wyznakowanych syntazą NO w mPOA, co wskazuje na wzrost syntezy NO [34]. NO jest w stanie stymulować uwalnianie dopaminy (DA) w mPOA, co z kolei stymuluje erekcję prącia. Ten mechanizm może stanowić jeden ze sposobów, w jaki androgeny stymulują pobudzenie seksualne [35].

10. Kilka ziół leczniczych z potwierdzonym wpływem na funkcje seksualne

W niniejszej części omówimy kilka z wielu sprawdzonych ajurwedyjskich i innych tradycyjnych ziół, które od dawna cieszą się opinią lekarstwa na zaburzenia seksualne i które zostały wykorzystane w licznych preparatach poprawiających sprawność seksualną i płodność, szczególnie w przypadku mężczyzn. Oprócz tych ziół przetestowano również i oceniono dużą liczbę roślin pod kątem wpływu na funkcje seksualne i parametry reprodukcyjne, obszerny opis i nazwy tych ziół znajdują się w Tabela 2. Wielu badaczy zbadało aktywny biokomponent, obecny w różnych ziołach odpowiedzialnych za zwiększenie aktywności seksualnej, spermatogenezę i wykazanie innych pozytywnych efektów w parametrach reprodukcyjnych (Tabela 3).

Tabela 2 

Lista kilku popularnych ziół ze wsparciem ehtnofarmakologicznym do stosowania jako afrodyzjak. Tabela opisuje również możliwy mechanizm działania jednego lub więcej elementów składowych odizolowanych od nich.
Tabela 3 

Tabelaryczny przegląd niektórych aktywnych składników z odkryciami naukowymi i opisem źródła.

10.1. Butea superba

Butea superba Roxb (Leguminosae) jest powszechnie spotykany w tajskich lasach liściastych i ma krajową nazwę „Red Kwao Krua”. Bulwy roślin są od dawna spożywane jako tradycyjny lek w celu promocji męskiego wigoru seksualnego. B. superba ekstrakt alkoholowy (0.01, 0.1 lub 1.0mg / kg BW / dzień) dla 6 miesięcy leczenie znacząco zwiększyło stężenie plemników i opóźniło zmniejszoną ruchliwość z czasem. Nie zaobserwowano żadnych oznak anomalii plemników i uszkodzeń jąder [36]. Podchroniczne leczenie B. superba bulwiasta zawiesina proszku w wysokich dawkach (200mg / kg) u samców szczurów wykazywały niekorzystny wpływ na skład chemiczny krwi, hematologię i poziom testosteronu we krwi. Sproszkowany surowy lek w dawkach 2, 25, 250 i 1250mg / kg masy ciała podawano w tygodniach 8; wystąpił wzrost masy jąder i liczby plemników u szczura. Hematologia, jak również czynność wątroby i nerek wszystkich leczonych grup nie wykazały żadnej różnicy w porównaniu z kontrolą [37]. Zależne od dawki zmniejszenie tylko testosteronu we krwi, ale nie LH, było znacząco różne od kontroli u szczurów leczonych dużymi dawkami proszku roślinnego. Niniejsze badanie sugeruje, że zaburzenie testosteronu jest znaczące, przynajmniej po 90 dniach spożycia dużych dawek B. superba proszek [38]. Ekstrakt etanolu z B. superba jest skuteczny w zwiększaniu erekcji prącia. Ekstrakt etanolu zwiększył ciśnienie w jamie ustnej (ICP) in vivo. To również znacznie zwiększyło działanie cGMP i izobutylometyloksantyny. To sugeruje B. superba może działać poprzez ścieżki cAMP / cGMP [39].

Studia kliniczne. Proszek roślinny wykazywał potencjalną aktywność w badaniach klinicznych na ludziach w leczeniu zaburzeń erekcji u mężczyzn [40].

10.2. Orchioides Curculigo

Orchioides Curculigo Gaertn (Amaryllidaceae), znany również jako Kali Musli lub Syah (czarny) Musli, jest uważany za afrodyzjak i Rasayan lub odmładzacz [41]. Etanolowy wyciąg z kłącza poprawił zachowania seksualne u samców szczurów. Wydajność seksualna oceniana poprzez określenie parametrów takich jak erekcja prącia, wydajność kojarzenia oraz zachowanie seksualne i orientacyjne została znacznie poprawiona. Ponadto wyraźny efekt anaboliczny i spermatogenny potwierdzają przyrosty masy narządów rozrodczych. Leczenie znacząco wpłynęło na zachowania seksualne zwierząt, co znalazło odzwierciedlenie w zmniejszeniu opóźnienia montażu, zwiększeniu częstotliwości montażu i zwiększonej atrakcyjności w stosunku do kobiet. Wskaźnik erekcji prącia był również zwiększany w grupie leczonej [42, 43]. Liofilizowane wodne ekstrakty Orchioides Curculigo znacząco poprawił aktywność wahadłową u samców szczurów po dniach leczenia 14. Podobnie wyciąg może również zachować in vitro liczba plemników w porównaniu z grupą kontrolną po 30min. inkubacji [44]. Wodny ekstrakt rośliny wykazywał znaczącą aktywność przy poziomie dawki 200mg / kg. Ogólnie rzecz biorąc, wyraźny efekt anaboliczny u leczonych zwierząt wykazano przez przyrost masy ciała i narządów rozrodczych. Istniało znaczne zróżnicowanie w zachowaniach seksualnych zwierząt, co odzwierciedla zmniejszenie opóźnienia w montażu, opóźnienie wytrysku, opóźnienie poejulacyjne, opóźnienie w intrukcji i zwiększenie częstotliwości montażu. Wzmocniono również erekcję prącia. Zmniejszony czas wahania (wskaźnik przyciągania do samicy u leczonych szczurów) również wskazywał na poprawę zachowań seksualnych zwierząt traktowanych ekstraktem [45]. W przypadku fizycznie indukowanej dysfunkcji seksualnej, to znaczy wywołanej ciepłem uszkodzonej funkcji jąder, roślina była użyteczna w łagodzeniu zmniejszonej spermatogenezy i leczone zwierzęta mogły skutecznie pokonać białko szoku cieplnego; to było przykładem roli C. orchioides w przezwyciężaniu zaburzeń seksualnych spowodowanych uszkodzeniem jąder [46].

10.3. Cynomorium coccineum

Cynomorium coccineum Linn. (Cynomoraceae) jest znany jako Som-El-Ferakh w Arabii Saudyjskiej, która jest czarną bezlistną pasożytniczą rośliną pozbawioną chlorofilu. Tubylcy w Katarze używają go (głównie z miodem) jako toniku i afrodyzjaku [47]. Wodny ekstrakt z Cynomorium coccineum wywołało znaczny wzrost liczby plemników, poprawiło odsetek żywych plemników i ich ruchliwość oraz zmniejszyło liczbę nieprawidłowych plemników. Histologia jąder wykazała zwiększoną spermatogenezę i kanaliki nasienne pełne plemników w leczonej grupie w porównaniu z nietraktowanymi kontrolami [48]. Wodny ekstrakt rośliny wywołał znaczącą spermatogenezę u niedojrzałych szczurów. Poziom testosteronu i FSH w surowicy był niższy u zwierząt leczonych ekstraktami niż w grupie kontrolnej, podczas gdy poziomy hormonu stymulującego komórki śródmiąższowe były wyższe u leczonych zwierząt [49].

10.4. Chlorophytum borivilianum

Safed Musli (Chlorophytum borivilianum) należy do rodziny Liliaceae z twierdzeniami ludowymi jako afrodyzjak i stymulant seksualny [50]. Etanolowy ekstrakt z korzeni oraz sapogeniny wyizolowane z korzeni badano pod kątem wpływu na zachowania seksualne i spermatogenezę u szczurów albinosów. Leczenie miało wyraźne działanie anaboliczne i spermatogenne u leczonych zwierząt, o czym świadczą przyrosty masy ciała i narządów rozrodczych. Podawanie ekstraktów znacząco wpłynęło na zachowanie seksualne zwierząt odzwierciedlone w zmniejszeniu ejakulacji, opóźnienia poejaculacyjnego i opóźnienia w intromizacji. Zaobserwowano wzrost częstotliwości montażu i atrakcyjności w stosunku do kobiet [51]. Wodny ekstrakt z suszonych korzeni Chlorophytum borivilianum zwiększa podniecenie seksualne, wigor i libido u szczurów Wistar. Ekstrakt znacznie zwiększa liczbę plemników [44, 52].

W przypadku hiperglikemii indukowanej streptozotocyną i alloksanem, wodny ekstrakt z rośliny spowodował złagodzenie dysfunkcji seksualnych, skutkując poprawą sprawności seksualnej w porównaniu ze szczurami kontrolnymi z cukrzycą. Badanie dostarczyło dowodów na to, że leki ziołowe mogą działać na zaburzenia seksualne zarówno u zwierząt normalnych, jak i cukrzycowych [53, 54].

10.5. Epimedium koreanum

Tradycyjne chińskie zioło lecznicze, Epimedium L. (Berberidaceae) jest popularnym dodatkiem botanicznym stosowanym jako tonik zdrowotny. Najważniejszy Epimedium gatunki wykorzystywane do celów leczniczych są E. koreanum Nakai, E. pubescens Maksyma., E. brevicornum Maksyma, E. sagittatum (Sieb. Et Zucc) Maxim i E. wushanense TS Ying [55]. Hydroalcholijny ekstrakt z roślin wydaje się wywoływać działanie afrodyzjaku i jest powszechnie stosowany w chińskiej medycynie ziołowej w celu wzmocnienia funkcji erekcji [56]. Uważa się, że icariin prawdopodobnie będzie głównym aktywnym składnikiem Epimedium ekstrakty. Icariin to flawonol, rodzaj flawonoidu. Jest to prenyloacetylacja 3,7-O-diglikozydu kaempferydu, ikaryny na zaburzenia erekcji i ustalenie jej zależnego od dawki selektywnego działania hamującego na fosfodiesterazy-5 (PDE5). Doustne leczenie ikaryną (> 98.6% czystości) przez 4 tygodnie może poprawić erekcję. Efekt ten jest skorelowany ze wzrostem odsetka mięśni gładkich i ekspresją pewnych izoform syntazy NO w ciałach jamistych wykastrowanych szczurów. Wyniki te sugerują, że ikariina może mieć terapeutyczny wpływ na zaburzenia erekcji [57]. Icariina była hamująca dla wszystkich trzech izoform PDE5 i miała podobne wartości IC50, które były około trzy razy większe niż dla zaprinastu. Icariin był w stanie zwiększyć poziom cyklicznego monofosforanu guanozyny w komórkach mięśni gładkich potraktowanych nitroprusydkiem sodu [58-60] i zwiększenie produkcji bioaktywnego tlenku azotu [61] jak również naśladując działanie testosteronu [62].

10.6. Eurycoma longifolia

Eurycoma longifolia Jack (Simaroubaceace), znany lokalnie jako Tongkat Ali, jest powszechnie spotykany w nizinnych lasach. Jest bardzo często używany przez grupy etniczne z wielu powodów i jest jednym z głównych komponentów eksportowych z Malezji [63]. E. longifolia zwiększa motywację seksualną u naiwnych samców szczurów płciowych. Siatkę elektryczną zastosowano jako przeszkodę w elektrycznej klatce kopulacyjnej w celu określenia, ile bodźca awersyjnego u szczura płci męskiej naiwnego dla obu leczonych E. longifolia i grupy kontrolne były skłonne przezwyciężyć, by dotrzeć do żeńskiej otwartej płci w klatce bramkowej. Intensywność prądu siatki była utrzymywana w 0.12mA i to była intensywność, w której samce szczurów z grupy kontrolnej nie zdołały przejść do klatki bramkowej. Wyniki pokazały to E. longifolia Jack kontynuował wzmacnianie, a także utrzymywanie wysokiego poziomu zarówno całkowitej liczby udanych krzyżówek, wierzchowców, intromisji i ejakulacji podczas okresu obserwacji 9 – 12th tygodnia [64]. Leczenie ekstraktem etanolu w dniach 10 zwiększyło sprawność seksualną leczonych samców szczurów, wydłużając czas trwania nawrotu i zmniejszając okres refrakcji między różnymi seriami kopulacji [65]. Administracja 800mg / kg butanolu, metanolu, wody i frakcji chloroformu E. longifolia znacząco zwiększył mięśnie wychowawcze w porównaniu z kontrolą (nietraktowane) u niekastrowanych nienaruszonych samców szczurów i w porównaniu z kontrolą (nietraktowane) u kastrowanych nienaruszonych samców szczurów stymulowanych testosteronem [66]. E. longifolia kontynuował zwiększanie, a także utrzymywanie wysokiego poziomu zarówno całkowitej liczby udanych zwrotnic, montaży, intromisji i ejakulacji podczas okresu obserwacji 9 – 12th tygodnia. Butanol, metanol, woda i ekstrakty chloroformowe z korzeni E. longifolia spowodował zależny od dawki, nawracający i znaczący wzrost epizodów odruchów prącia, o czym świadczy wzrost szybkich przerzutów, długich przerzutów i erekcji leczonych samców szczurów podczas okresu obserwacji 30-min [67]. E. longifolia (0.5g / kg) dla trzytygodniowego wzrostu odsetka samców szczurów odpowiadających na właściwy wybór, ponad 50% samców szczurów uzyskało „właściwy wybór” po tygodniach 3 po leczeniu, a efekt stał się bardziej widoczny po tygodniach leczenia 8 ( tylko 40 – 50% kontrolnych samców szczurów zareagował na właściwy wybór) za pomocą elektrycznej klatki kopulacyjnej [68]. Samce szczurów w średnim wieku leczone 800mg / kg E. longifolia zwiększona aktywność orientacyjna w stosunku do chłonnych kobiet, o czym świadczy wzrost zachowań anogenitalnych, lizanie i mocowanie, ale brak zainteresowania środowiskiem zewnętrznym, o czym świadczy spadek wspinania się, rażenia i eksploracji na ścianie w klatce, a także jej zwiększyły również orientację na siebie, o czym świadczy zwiększone dbanie o własne genitalia, a także ograniczoną izolację, z ukierunkowaną orientacją i ruchem w kierunku kobiet w porównaniu z kontrolami; poprawiło to również seksualne cechy samców szczurów w średnim wieku, zmniejszając ich czas wahania w porównaniu z kontrolami z różnymi frakcjami E. longifolia [69, 70].

10.7. Lepidium meyenii

Lepidum meyenii Walp (Brassicaceae) znany jako Maca jest korzeniem jadalnym tradycyjnie wykorzystywanym ze względu na jego rzekomy afrodyzjak i właściwości poprawiające płodność. Podostre doustne podawanie ekstraktów heksanowych, metanolowych i chloroformowych Maca (Lepidium meyenii) korzeń istotnie zmniejszył opóźnienie w intrakcji i odstęp międzykomorowy oraz zwiększył częstość występowania i skuteczność kopulacyjną w porównaniu z grupą kontrolną. Ekstrakty heksanowe i metanolowe były w stanie zwiększyć częstotliwość montażu, podczas gdy tylko frakcja heksanowa znacznie poprawiła opóźnienie montażu. Globalnie tylko frakcja heksanowa znacznie poprawiła większość mierzonych parametrów płciowych. Podostre doustne podawanie heksanowego ekstraktu Maca najskuteczniej poprawiło parametry sprawności seksualnej u męskich szczurów niedoświadczonych seksualnie [71]. Doustne podawanie ekstraktu lipidowego z Lepidium meyenii wzmocnił funkcje seksualne myszy i szczurów, o czym świadczy wzrost liczby całkowitych intromisji i liczby kobiet pozytywnych dla plemników u normalnych myszy oraz zmniejszenie okresu utajonego erekcji u samców szczurów z zaburzeniami erekcji [72]. Poprawę aktywności tlenku azotu wielkocząsteczkowego przypisano również Macie. Ostre i codzienne podawanie Maca u doświadczonych seksualnie samców szczurów spowodowało niewielką zmianę w latencji ejakulacji i odstępie postejakulacyjnym, a zmiany te zniknęły po przewlekłym leczeniu. Przewlekłe podawanie Maca nie zwiększało lęku i miało pewien wpływ na aktywność ruchową [73]. Czarny maca wywierał korzystniejszy wpływ na liczbę plemników i ruchliwość plemników najądrza po 42 dniach leczenia [74]. Maca wykazała również skuteczność jako leczenie wiodące w przypadku dysfunkcji powstałych w wyniku metalicznej ekspozycji na ołów. Maca chroni spermatogenezę przez zwiększenie długości etapów VIII i IX – XI oraz dzienną liczbę plemników, która powoduje wzrost liczby plemników najądrza [75]. Leczenie doustne frakcją octanu etylu w wodno-alkoholowym ekstrakcie Black Maca w dniach 7 miało najbardziej korzystny wpływ na liczbę plemników najądrza i dzienną liczbę plemników w porównaniu z innymi frakcjami [76].

Studia kliniczne. Maca zwiększyła płodność zarówno u mężczyzn jak iu kobiet [77, 78]. Poprawa pożądania seksualnego nie jest związana ze zmianami w hormonach przysadki lub gonad [79, 80]. Maca nie aktywuje receptorów androgenowych i może faktycznie blokować receptory androgenowe [81, 82]. Ekstrakt wodny Maca można uznać za bezpieczny w dawkach do 5g ekstraktu / kg, co odpowiada niektórym 11g suchych hipokotyl / kg. Wpływ na fizjologię rozrodczą można zaobserwować w 0.10g ekstrakt / kg ekstraktu Maca, który reprezentuje 15.4g suchych hipokotyli dla osobnika 70kg [83].

10.8. Pruriens Mucuna

Pruriens Mucuna Linn. Rodzina Leguminosae jest popularną indyjską rośliną leczniczą, która od dawna jest używana w tradycyjnej medycynie ayurwedyjskiej. Całkowite alkaloidy z nasion M. pruriens stwierdzono, że zwiększają spermatogenezę i masę jąder, pęcherzyków nasiennych i prostaty u szczurów albinosów [84]. M. pruriens stymulował funkcje seksualne u normalnych samców szczurów, co obserwowano przez zwiększenie częstotliwości montażu, częstotliwości intromisji i opóźnienia wytrysku [85]. M. pruriens proszek do nasion poprawił znacząco różne zachowania kopulacyjne parametrów seksualnych, w tym częstotliwość montażu, opóźnienie montażu, częstotliwość intromisji i opóźnienie introminacji samców szczurów albinosów [86]. Ekstrakty etanolowe M. pruriens Nasiona powodowały znaczący i trwały wzrost aktywności seksualnej normalnych samców szczurów przy określonej dawce (200mg / kg). Występuje znacznie zwiększona częstotliwość narastania, częstość występowania i opóźnienie wytrysku oraz zmniejszone opóźnienie narastania, opóźnienie wewnątrzkomórkowe, interwał postejakulacyjny i interwał międzyzakładowy [87]. M. pruriens skutecznie odzyskał utratę spermatogenną wywołaną przez podawanie szczurom etynyloestradiolu. Odzyskiwanie odbywa się poprzez zmniejszenie poziomu ROS, przywrócenie MMP, regulację apoptozy i ewentualny wzrost liczby komórek zarodkowych i regulację apoptozy. Główny składnik L-DOPA z M. pruriens w dużej mierze odpowiada za właściwości prospermatogenne [88]. Podany ekstrakt z nasion M. pruriens u szczurów z cukrzycą wykazano znaczącą poprawę zachowań seksualnych, libido i siły działania, parametrów nasienia, DSP i poziomów hormonów w porównaniu do szczurów z cukrzycą bez leczenia ekstraktem [89].

Studia kliniczne. Leczenie za pomocą M. pruriens Nasiona zwiększyły koncentrację plemników i ruchliwość we wszystkich niepłodnych grupach badawczych u ludzi. Po leczeniu wyciągu plazmy nasiennej wszystkich grup niepłodnych, poziomy lipidów, witamin antyoksydacyjnych i skorygowanej fruktozy zostały odzyskane po zmniejszeniu nadtlenków lipidów po leczeniu. Odzyskiwano je znacząco u plemników oligo-zoospermicznych, ale ruchliwość plemników nie został przywrócony do normalnego poziomu u mężczyzn astenozoospermicznych [90]. M. pruriens znacznie poprawił poziom T, LH, dopaminy, adrenaliny i noradrenaliny oraz zmniejszył poziom FSH i PRL u niepłodnych mężczyzn. Znacznie odzyskał także liczbę i ruchliwość plemników. M. pruriens leczenie bezpłodnych mężczyzn reguluje steroidogenezę i poprawia jakość nasienia [91, 92]. Leczenie za pomocą M. pruriens znacząco hamowało peroksydację lipidów, podwyższoną spermatogenezę i poprawioną ruchliwość plemników niepłodnych mężczyzn, a także poprawiło poziom lipidów całkowitych, triglicerydów, cholesterolu, fosfolipidów i witaminy A, C i E oraz skorygowaną fruktozę w plazmie nasienia niepłodnych mężczyzn [93]. M. pruriens znacznie złagodził stres psychiczny i poziomy nadtlenku lipidów w osoczu, wraz z poprawą liczby i ruchliwości plemników. Leczenie przywróciło również poziomy SOD, katalazy, GSH i kwasu askorbinowego w plazmie nasienia niepłodnych mężczyzn. Reaktywuje system obrony antyoksydacyjnej niepłodnych mężczyzn, a także pomaga w radzeniu sobie ze stresem i poprawia jakość nasienia [94].

10.9. Tribulus terrestris

Roślina Tribulus terrestris Linn. (Zygophyllaceae), popularnie zwana winoroślą przebijającą, to wieloletnie ziele pełzające o światowej dystrybucji. Od czasów starożytnych jest uważany za afrodyzjak, oprócz korzystnych roszczeń dotyczących różnych dolegliwości, takich jak infekcje dróg moczowych, stany zapalne, krwawienia z moczu, obrzęki i wodobrzusze [95]. T. terrestris jest od dawna stosowany w tradycyjnych chińskich i indyjskich systemach medycznych do leczenia różnych dolegliwości i powszechnie uważa się, że poprawia funkcje seksualne. Administracja T. terrestris samcom jagniąt i baranów poprawia testosteron w osoczu i spermatogenezę [96]. Odkryto również, że zwiększa poziom testosteronu, hormonu luteinizującego [97], dehydroepiandrosteron, dihydrotestosteron i siarczan dehydroepiandrosteronu [98, 99]. Tkanki ciał jamistych uzyskane z białych królików nowozelandzkich po leczeniu T. terrestris przetestowane in vitro z różnymi środkami farmakologicznymi i stymulacją pola elektrycznego i stwierdzono, że ma działanie proerektyczne [100]. T. terrestris stwierdzono, że zwiększa zachowania seksualne u szczurów. Leczenie kastrowanych szczurów za pomocą T. terrestris ekstrakt wykazywał wzrost masy prostaty i ciśnienie wewnątrz jam ciała. Nastąpiła poprawa parametrów zachowania seksualnego, o czym świadczy wzrost częstotliwości montażu i częstości intromizacji; zmniejszenie opóźnienia montażu, opóźnienie intromisji i wskaźnik erekcji prącia [101, 102]. T. terrestris podawanie szczurom zwiększało dodatnie neurony NADPH-d i immunoreaktywność receptora androgenowego w regionie PVN. Wiadomo, że androgeny zwiększają zarówno neurony receptora androgenowego, jak i neurony dodatnie NADPH-d, albo bezpośrednio, albo przez jego konwersję do estrogenu. Mechanizm obserwowanego wzrostu neuronów AR i NADPH-d dodatnich w niniejszym badaniu wynika prawdopodobnie z właściwości androgenowych wzrastających T. terrestris [103]. T. terrestris zwiększył również syntezę cyklicznych nukleotydów w komórkach CCSM [101]. T. terrestris ekstrakt zwiększył poziomy T, DHT i DHEAS, a efekt był bardziej wyraźny w stanie hipogonadyzmu. Taki wzrost poziomu androgenów może być czynnikiem odpowiedzialnym za odwieczne stwierdzenia PTN jako afrodyzjaku, a zatem T. terrestris może być przydatny jako dodatek w łagodnych do umiarkowanych przypadkach ED [104]. Zdolność tribulusa do zwiększenia uwalniania tlenku azotu może wyjaśniać jego twierdzenia jako afrodyzjak [100, 102].

10.10. Withania somnifera

Ashwagandha (Withania somnifera (L.) Dunal, Rodzina: Solanaceae) jest również znany jako żeń-szeń indyjski powszechnie stosowany w medycynie ajurwedyjskiej. Najlepiej uważany jest za adaptogen, tonik o właściwościach afrodyzjaku. Niektórzy pracownicy zgłosili zmniejszenie zachowania godowego i działanie przeciwzapalne W. somnifera root na myszach [105]. Wyciąg z korzenia spowodował wyraźne upośledzenie libido, sprawności seksualnej, wigoru seksualnego i zaburzeń erekcji prącia [106]. Wykazano również aktywność przeciwzapalną u samców szczura [107]. Ale niektórzy naukowcy to pokazują W. somnifera ma zdolność zwalczania niepłodności wywołanej stresem. Chroni także płodowe zaburzenia endokrynologiczne układu rozrodczego u samców szczura [108]. Ekstrakt wodny poprawił spermatogenezę, co może być spowodowane zwiększonym działaniem hormonu stymulującego komórki śródmiąższowe i podobnego do testosteronu, jak również indukcją syntazy tlenku azotu [109].

Studia kliniczne. Wyciąg z korzenia Ashwagandha podawany pacjentom oligospermicznym spowodował znacznie większą poprawę aktywności spermatogennej i poziomów hormonów w surowicy w porównaniu z placebo [110]. Leczenie niepłodnych mężczyzn Withania somnifera zahamował peroksydację lipidów i zawartość karbonylu białka oraz poprawił liczbę i ruchliwość plemników. Odzyskał także poziomy enzymów antyoksydacyjnych w osoczu nasiennym W. somnifera proszek korzeniowy podawany w dawce 5g / dzień dla 3 miesięcy dla normozoospermicznego niepłodnego mężczyzny spowodowało zmniejszenie stresu, poprawiło poziom antyoksydantów i poprawiło ogólne nasienie i witaminy A, C i E oraz skorygowaną fruktozę. Zaobserwowano znacząco zwiększone stężenie T i LH w surowicy oraz obniżone poziomy FSH i PRL u niepłodnych mężczyzn [111, 112].

11. Wniosek

Różne zioła były wykorzystywane przez ludzi z różnych kultur do leczenia stanów niepłodności męskiej lub leczenia zaburzeń rozrodczych. Sugerowano je również do poprawy pożądania seksualnego, sprawności seksualnej i zaburzeń erekcji, rozszerzenia naczyń, zwiększenia poziomu testosteronu, monoamin mózgowych, wpływu na oś przysadki-gonad i tak dalej.113].

W przypadku braku danych dotyczących skuteczności klinicznej i bezpieczeństwa tych ziół, ludzie są sceptyczni co do ich stosowania. Istnieje pilna potrzeba przeprowadzenia badań klinicznych w celu wsparcia tradycyjnych twierdzeń oraz wypracowania mechanizmu komórkowego i molekularnego. Badania w zakresie walidacji ziół znacznie przyczynią się do opanowania niepłodności. Co więcej, należy również wziąć pod uwagę krzyżową drogę różnych zaangażowanych ścieżek, aby opracować ścieżkę molekularną w celu znalezienia wiodącej cząsteczki pochodzenia ziołowego w leczeniu różnych form zaburzeń seksualnych.

Potwierdzenie

Jeden z autorów, Nagendra Singh Chauhan, dziękuje AICTE, New Delhi, za udostępnienie National Doctoral Fellowship.

Konflikt interesów

Autorzy deklarują, że nie ma konfliktu interesów w odniesieniu do publikacji tego artykułu.

Referencje

1. KTO. Podręcznik WHO dotyczący standaryzowanego badania, diagnozy i postępowania z niepłodnym mężczyzną. Cambridge, Wielka Brytania: Cambridge University Press; 2000.
2. Carpentier M, Sahpaz S, Bailleul F. Rośliny i zaburzenia erekcji. Fitoterapia. 2004; 3: 66-71.
3. Singh G, Mukherjee T. Herbal afrodyzjaki: przegląd. Indyjskie narkotyki. 1998;35(4):175–182.
4. Afolayan AJ, Yakubu MT. Opcje zarządzania zaburzeniami erekcji w Nigerii. Journal of Sexual Medicine. 2009;6(4):1090–1102. [PubMed]
5. Noumi E, Zollo PHA, Lontsi D. Afrodyzjak rośliny używane w Kamerunie. fitoterapia. 1998;69(2):125–134.
6. Niski W, Tan H. Azjatycki tradycyjny lek na zaburzenia erekcji. The Journal of Men's Health and Gender. 2007;4(3):245–250.
7. Anonimowy. Farmakopea ajurwedyjska Indii, część 1 – 4. New Delhi, Indie: rząd Indii, Ministerstwo Zdrowia i Opieki Rodzinnej, Departament Indyjskiego Systemu Medycyny i Homeopatii; 1999.
8. Upadhya SC. Kama Sutra Vatsyayana. Bombaj, Indie: Taraporevala; 1961.
9. Sharma RK. (Chowkhamba Sanskrit Studies).Agnivesas Caraka Samhita, obj. III. 1988; 94
10. Puri HS. Rasayana: Ayurvedic Herbs dla długowieczności i odmłodzenia. Nowe Delhi, Indie: CRC Press; 2002.
11. Bhishagratna KL. Sushruta Samhita. 2nd edycja. Vol. 2. Varanasi, Indie: 1963. (Tłumaczenie angielskie oparte na oryginalnych tekstach sanskryckich).
12. Kapp B, Cain M. Neuralna podstawa pobudzenia. W: Smelser N, Baltes P, redaktorzy. Międzynarodowa Encyklopedia Nauk Społecznych i Behawioralnych. Oxford, Wielka Brytania: Elsevier Science; 2001.
13. Melis MR, Argiolas A. Neuropeptydy i centralna kontrola zachowań seksualnych z przeszłości do chwili obecnej: przegląd. Postęp w neurobiologii. 2013; 108: 80 – 107. [PubMed]
14. Pfaus JG, Damsma G, Nomikos GG i in. Zachowania seksualne zwiększają centralną transmisję dopaminy u samca szczura. Brain Research. 1990;530(2):345–348. [PubMed]
15. Hull EM, Eaton RC, Moses J, Lorrain D. Copulation zwiększa aktywność dopaminy w przyśrodkowym obszarze przedbłonowym samców szczurów. Life Sciences. 1993;52(11):935–940. [PubMed]
16. Hull EM, Du J, Lorrain DS, Matuszewich L. Pozakomórkowa dopamina w obszarze przyśrodkowym: implikacje dla motywacji seksualnej i hormonalnej kontroli kopulacji. Journal of Neuroscience. 1995;15(11):7465–7471. [PubMed]
17. Sato Y, Wada H, Horita H, i in. Uwalnianie dopaminy w obszarze przyśrodkowym przedostkowym podczas zachowań kopulacyjnych mężczyzn u szczurów. Brain Research. 1995;692(1-2):66–70. [PubMed]
18. Giuliano F, Rampin O. Centralna regulacja neuronalna erekcji prącia. Neurobiologia i recenzje biobehawioralne. 2000;24(5):517–533. [PubMed]
19. Waddell TG, Ibach DM. Nowoczesne chemiczne afrodyzjaki. Indian Journal of Pharmaceutical Sciences. 1989;51(3):79–82.
20. Moncada S, Palmer RMJ, Higgs EA. Tlenek azotu: fizjologia, patofizjologia i farmakologia. Opinie farmakologiczne. 1991;43(2):109–142. [PubMed]
21. Snyder SH. Tlenek azotu: najpierw w nowej klasie neuroprzekaźników? nauka. 1992;257(5069):494–496. [PubMed]
22. Forstermann U, Gorsky LD, Pollock JS, Schmidt HHHW, Heller M, Murad F. Regionalna dystrybucja enzymu (ów) syntetyzującego EDRF / NO w mózgu szczura. Biochemiczne i biofizyczne komunikaty badawcze. 1990;168(2):727–732. [PubMed]
23. Bredt DS, Hwang PM, Glatt CE, Lowenstein C, Reed RR, Snyder SH. Sklonowana i wyrażona syntaza tlenku azotu strukturalnie przypomina reduktazę cytochromu P-450. Natura. 1991;351(6329):714–718. [PubMed]
24. Anderson KE. Farmakologia mięśni gładkich dolnych dróg moczowych i tkanek erekcji prącia. Opinie farmakologiczne. 1993;45(3):253–308. [PubMed]
25. Kim N, Azadzoi KM, Goldstein I, Saenz de Tejada I. Czynnik podobny do tlenku azotu pośredniczy w nieadrenergiczno-niecholinergicznym neurogennym rozluźnieniu mięśni gładkich ciał jamistych prącia. Journal of Clinical Investigation. 1991;88(1):112–118. [Artykuł bezpłatny PMC] [PubMed]
26. Holmquist F, Hedlund H, Andersson KE. LNG-nitro arginina hamuje nieadrenergiczne, niecholinergiczne rozluźnienie ciał jamistych u człowieka. Acta Physiologica Scandinavica. 1991;141(3):441–442. [PubMed]
27. Nehra A, Colreavy F, Khandheria BK, Chandrasekaran K. Sildenafil cytrynian, selektywny inhibitor fosfodiesterazy typu 5: implikacje urologiczne i sercowo-naczyniowe. World Journal of Urology. 2001;19(1):40–45. [PubMed]
28. Achike FI, Kwan CY. Tlenek azotu, choroby człowieka i produkty ziołowe, które wpływają na szlak sygnalizacji tlenku azotu. Farmakologia kliniczna i eksperymentalna i fizjologia. 2003;30(9):605–615. [PubMed]
29. Dohle GR, Smit M, Weber RFA. Androgeny i płodność męska. World Journal of Urology. 2003;21(5):341–345. [PubMed]
30. Snyder PJ. Kliniczne zastosowanie androgenów. Roczny przegląd medycyny. 1984; 35: 207 – 217. [PubMed]
31. Hull EM, Du J, Lorrain DS, Matuszewich L. Testosteron, preoptyczna dopamina i kopulacja u samców szczurów. Brain Research Bulletin. 1997;44(4):327–333. [PubMed]
32. Zvara P, Sioufi R, Schipper HM, Begin LR, Brock GB. Aktywność erekcji zależna od tlenku azotu jest zdarzeniem zależnym od testosteronu: modelem erekcji szczura. International Journal of Impotence Research. 1995;7(4):209–219. [PubMed]
33. Gauthaman K, Adaikan PG. Efekt Tribulus terrestris na aktywność dinukleotydu dinukleotydu nikotynamidoadeninowego i receptorów androgenowych w mózgu szczura. Journal of Ethnopharmacology. 2005;96(1-2):127–132. [PubMed]
34. Du J, Hull EM. Wpływ testosteronu na neuronalną syntazę tlenku azotu i hydroksylazę tyrozynową. Brain Research. 1999;836(1-2):90–98. [PubMed]
35. Liu YC, Sachs BD. Funkcja erekcji u samców szczurów po zmianach w bocznym jądrze komórkowym. Neuroscience Letters. 1999;262(3):203–206. [PubMed]
36. Tocharus C, Jeenapongsa R, Teakthong T, Smitasiri Y. Skutki długoterminowego leczenia Butea superba na ruchliwość i koncentrację plemników. Dziennik Uniwersytetu Naresuan. 2005; 13: 11-17.
37. Manosroi A, Sanphet K, Saowakon S, Aritajat S, Manosroi J. Efekty Butea superba na układach rozrodczych szczurów. fitoterapia. 2006;77(6):435–438. [PubMed]
38. Cherdshewasart W, Bhuntaku P, Panriansaen R, Dahlan W, Malaivijitnond S. Testy androgenów na zakłócenia i toksyczności Butea superba Roxb., Tradycyjne zioło stosowane w leczeniu zaburzeń erekcji u samców szczurów. Maturitas. 2008;60(2):131–137. [PubMed]
39. Cherdshewasart W, Nimsakul N. Badanie kliniczne Buten superba, alternatywne ziołowe leczenie zaburzeń erekcji. Asian Journal of Andrology. 2003;5(3):243–246. [PubMed]
40. Tocharus C, Smitasiri Y, Jeenapongsa R. Butea superba Roxb. zwiększa erekcję prącia u szczurów. Badania fitoterapii. 2006;20(6):484–489. [PubMed]
41. Chauhan NS, Dixit VK. Aktywność przeciwhiperglikemiczna ekstraktu etanolowego Orchioides Curculigo Gaertn. Magazyn Pharmacognosy. 2007; 3: 237-240.
42. Chauhan NS, Rao CV, Dixit VK. Wpływ kłączy Curculigo orchioides na zachowania seksualne samców szczurów. fitoterapia. 2007;78(7-8):530–534. [PubMed]
43. Chauhan NS, Dixit VK. Spermatogenne działanie kłączy Orchioides Curculigo gaertn u samców szczurów. International Journal of Applied Research in Natural Products. 2008;1(2):26–31.
44. Thakur M, Dixit VK. Wpływ niektórych ziół vajikaran na aktywność wahadłową i liczbę plemników in vitro u mężczyzn. Seksualność i niepełnosprawność. 2007;25(4):203–207.
45. Thakur M, Chauhan NS, Bhargava S, Dixit VK. Badanie porównawcze aktywności afrodyzjaku niektórych ziół ajurwedyjskich u samców szczurów albinosów. Archiwa zachowań seksualnych. 2009;38(6):1009–1015. [PubMed]
46. Thakur M, Loeppert R, Praznik W, Dixit VK. Wpływ niektórych ajurwedyjskich ziół rasajana na ajurwedyjskie uszkodzenia wywołane ciepłem jąder u samców szczurów. Journal of Complementary and Integrative Medicine. 2008; 5: 1-14.
47. Ageel AM, Mossa JS, Tariq M, Al-Yahya MA, Al-Said MS. Saudyjskie rośliny używane w medycynie ludowej. Rijad, Arabia Saudyjska: Departament Badań Naukowych, miasto Król Abdel-Aziz ds. Nauki i technologii; 1987.
48. Abd El-Rahman HA, El-Badry AA, Mahmoud OM, Harraz FA. Wpływ wodnego ekstraktu Cynomorium coccineum na wzór nasienia najądrza szczura. Badania fitoterapii. 1999; 13: 248 – 250. [PubMed]
49. Abdel-Magied EM, Abdel-Rahman HA, Harraz FM. Wpływ wodnych ekstraktów Cynomorium coccineum i Withania somnifera na rozwój jąder u niedojrzałych szczurów Wistar. Journal of Ethnopharmacology. 2001;75(1):1–4. [PubMed]
50. Thakur M, Dixit VK. Przegląd niektórych ważnych roślin leczniczych Chlorophytum spp. Farmakognozja Recenzje. 2008;2(3):168–172.
51. Thakur M, Dixit VK. Efekt Chlorophytum borivilianum na temat androgennych i seksualnych zachowań samców szczurów. Indyjskie narkotyki. 2006;43(4):300–306.
52. Kenjale R, Shah R, Sathaye S. Efekty Chlorophytum borivilianum o zachowaniach seksualnych i liczbie plemników u samców szczurów. Badania fitoterapii. 2008;22(6):796–801. [PubMed]
53. Thakur M, Bhargava S, Praznik W, Loeppert R, Dixit VK. Efekt Chlorophytum borivilianum Santapau i Fernandes o zaburzeniach seksualnych u samców szczurów z hiperglikemią. Chinese Journal of Integrative Medicine. 2009;15(6):448–453. [PubMed]
54. Vyawahare NS, Kagathara VG, Kshirsagar AD, et al. Wpływ ekstraktu wodno-alkoholowego Chlorophytum borivilianum bulw w łagodzeniu impotencji cukrzycowej u samców szczurów z cukrzycą wywołaną streptozotocyną. Badania farmakologiczne. 2009; 1: 314-319.
55. Farmakopea Chińskiej Republiki Ludowej Wydanie angielskie. Vol. 1. Pekin, Chiny: Przemysł chemiczny Prasa; 2000. Państwowa komisja farmakopealna PR China.
56. Makarova MN, Pozharitskaya ON, Shikov AN, Tesakova SV, Makarov VG, Tikhonov VP. Wpływ zawiesiny na bazie lipidów Epimedium koreanum Wyciąg z Nakai na zachowania seksualne u szczurów. Journal of Ethnopharmacology. 2007; 114: 412 – 416. [PubMed]
57. Liu W, Xin Z, Xin H, Yuan Y, Tian L, Guo Y. Wpływ icariin na funkcje erekcji i ekspresję izoform syntazy tlenku azotu u kastrowanych szczurów. Asian Journal of Andrology. 2005;7(4):381–388. [PubMed]
58. Ning H, Xin ZC, Lin G, Banie L, Lue TF, Lin CS. Wpływ ikariiny na aktywność fosfodiesterazy-5 in vitro i poziom cyklicznego monofosforanu guanozyny w komórkach mięśni gładkich jamistych. Urologia. 2006;68(6):1350–1354. [PubMed]
59. Jiang Z, Hu B, Wang J i in. Wpływ ikariiny na poziomy cyklicznego GMP i na ekspresję mRNA cGMP-specyficznej fosfodiesterazy wiążącej cGMP (PDE5) w jamistych ciałach prącia. Journal of Huazhong University of Science and Technology. 2006;26(4):460–462. [PubMed]
60. Dell'Agli M, Galli GV, Dal Cero E i in. Silne hamowanie ludzkiej fosfodiesterazy-5 przez pochodne ikaryny. Journal of Natural Products. 2008;71(9):1513–1517. [PubMed]
61. Xu HB, Huang ZQ. Icariin wzmacnia śródbłonkową ekspresję syntazy tlenku azotu na ludzkich komórkach śródbłonka in vitro. Farmakologia naczyniowa. 2007;47(1):18–24. [PubMed]
62. Zhang ZB, Yang QT. Mimetyzujące właściwości icariiny testosteronu. Asian Journal of Andrology. 2006;8(5):601–605. [PubMed]
63. Cyranoski D. Malezyjscy naukowcy postawili na rodzimą Viagrę. Nature Medicine. 2005; 11, artykuł 912 [PubMed]
64. Ang HH, Sim MK. Eurycoma longifolia zwiększa motywację seksualną u naiwnych samców szczurów płciowych. Archiwa Pharmacal Research. 1998;21(6):779–781. [PubMed]
65. Ang HH, Sim MK. Eurycoma longifolia Jack zwiększa libido u doświadczonych seksualnie samców szczurów. Zwierzęta eksperymentalne. 1997;46(4):287–290. [PubMed]
66. Ang HH, Cheang HS. Efekty Eurycoma longifolia Jack na mięsie lewnika u niekastrowanych i stymulowanych testosteronem kastrowanych nienaruszonych samców szczurów. Archiwa Pharmacal Research. 2001;24(5):437–440. [PubMed]
67. Ang HH, Ikeda S, Gan EK. Ocena aktywności działania afrodyzjaku w Eurycoma longifolia Jack. Badania fitoterapii. 2001;15(5):435–436. [PubMed]
68. Ang HH, Ngai TH. Ocena afrodyzjaku u samców szczurów nie będących copulatorami po przewlekłym podaniu Eurycoma longifolia Jack. Farmakologia podstawowa i kliniczna. 2001;15(4):265–268. [PubMed]
69. Ang HH, Lee KL. Efekt Eurycoma longifolia Jack na zajęciach orientacyjnych u samców szczurów w średnim wieku. Farmakologia podstawowa i kliniczna. 2002;16(6):479–483. [PubMed]
70. Ang HH, Ngai TH, Tan TH. Efekty Eurycoma longifolia Jack o cechach seksualnych u samców szczurów w średnim wieku. Fitomedycyna. 2003;10(6-7):590–593. [PubMed]
71. Cicero AFG, Piacente S, Plaza A, Sala E, Arletti R, Pizza C. Ekstrakt z Macex Hexanic poprawia skuteczność seksualną szczurów skuteczniej niż ekstrakty Maca z metanolem i chloroformem. andrologia. 2002;34(3):177–179. [PubMed]
72. Zheng BL, He K, Kim CH, et al. Wpływ wyciągu lipidowego z Lepidium meyenii o zachowaniach seksualnych u myszy i szczurów. Urologia. 2000;55(4):598–602. [PubMed]
73. Lentz A, Gravitt K, Carson CC, Marson L, Giuliano F. Ostre i przewlekłe dawkowanie lepidium meyenii (Maca) na zachowanie seksualne samców szczura. Journal of Sexual Medicine. 2007;4(2):332–340. [PubMed]
74. Gonzales C, Rubio J, Gasco M, Nieto J, Yucra S, Gonzales GF. Wpływ krótkoterminowych i długoterminowych zabiegów z trzema ekotypami Lepidium meyenii (MACA) na spermatogenezę u szczurów. Journal of Ethnopharmacology. 2006;103(3):448–454. [PubMed]
75. Rubio J, Riqueros MI, Gasco M, Yucra S, Miranda S, Gonzales GF. Lepidium meyenii (Maca) odwrócił uszkodzenia wywołane octanem ołowiu na funkcje rozrodcze u samców szczurów. Toksykologia żywności i substancji chemicznych. 2006;44(7):1114–1122. [PubMed]
76. Yucra S, Gasco M, Rubio J, Nieto J, Gonzales GF. Wpływ różnych frakcji z ekstraktu wodno-alkoholowego Black Maca (Lepidium meyenii) o funkcji jąder u dorosłych samców szczurów. Płodność i bezpłodność. 2008;89(5):1461–1467. [PubMed]
77. Gonzalez GF, Córdova A, Vega K, Chung A, Villena A, Góñez C. Wpływ Lepidium meyenii (Maca), korzeń z afrodyzjakiem i właściwościami zwiększającymi płodność, na poziom hormonów rozrodczych w surowicy u dorosłych zdrowych mężczyzn. Journal of Endocrinology. 2003;176(1):163–168. [PubMed]
78. Ruiz-Luna AC, Salazar S, Aspajo NJ, Rubio J, Gasco M, Gonzales GF. Lepidium meyenii (Maca) zwiększa rozmiar miotu u normalnych dorosłych samic myszy. Biologia reprodukcyjna i endokrynologia. 2005; 3, artykuł 16 [Artykuł bezpłatny PMC] [PubMed]
79. Gonzales GF, Cordova A, Gonzales C, Chung A, Vega K, Villena A. Lepidium meyenii (Maca) poprawił parametry nasienia u dorosłych mężczyzn. Asian Journal of Andrology. 2001;3(4):301–303. [PubMed]
80. Gonzales GF, Córdova A, Vega K, et al. Efekt Lepidium meyenii (MACA) na pożądanie seksualne i jego brak związku ze stężeniem testosteronu w surowicy u dorosłych zdrowych mężczyzn. andrologia. 2002;34(6):367–372. [PubMed]
81. Bogani P, Simonini F, Iriti M, i in. Lepidium meyenii (Maca) nie wywiera bezpośredniego działania androgennego. Journal of Ethnopharmacology. 2006;104(3):415–417. [PubMed]
82. Gonzales GF, Miranda S, Nieto J i in. Czerwona maca (Lepidium meyenii) zmniejszyła rozmiar prostaty u szczurów. e-produktywna biologia i endokrynologia. 2005; 3, artykuł 5 [Artykuł bezpłatny PMC] [PubMed]
83. Chung F, Rubio J, Gonzales C, Gasco M, Gonzales GF. Efekty zależne od dawki Lepidium meyenii (Maca) wodny ekstrakt na funkcje jąder i masa różnych narządów u dorosłych szczurów. Journal of Ethnopharmacology. 2005;98(1-2):143–147. [PubMed]
84. Saksena S, Dixit VK. Rola całkowitych alkaloidów Pruriens Mucuna Baker w spermatogenezie u szczurów albinosów. Indian Journal of Natural Products. 1987; 3: 3-7.
85. Amin YMN, Rehman ZS, Khan NA. Poprawa funkcji seksualnych M. pruriens u normalnych płciowo samców szczurów. Fitoterapial. 1996; 67: 53-58.
86. Kumar AKV, Srinivasan KK. Afrodyzjak aktywności nasion Pruriens Mucuna. Indyjskie narkotyki. 1994;31(7):321–327.
87. Suresh S, Prithiviraj E, Prakash S. Efekt Pruriens Mucuna o uszkodzeniach pośredniczonych przez stres oksydacyjny w wieku nasienia szczura. International Journal of Andrology. 2010;33(1):22–32. [PubMed]
88. Singh AP, Sarkar S, Tripathi M, Rajender S. Pruriens Mucuna a jego główny składnik L-DOPA odzyskuje utratę spermatogenną przez zwalczanie ROS, utratę potencjału błony mitochondrialnej i apoptozę. PLoS ONE. 2013; 8 (1) e54655 [Artykuł bezpłatny PMC] [PubMed]
89. Suresh S, Prakash S. Efekt Pruriens Mucuna (Linn.) Na temat zachowań seksualnych i parametrów nasienia u szczurów cukrzycowych indukowanych streptozotocyną. Journal of Sexual Medicine. 2012;9(12):3066–3078. [PubMed]
90. Ahmad MK, Mahdi AA, Shukla KK, Islam N, Jaiswar SP, Ahmad S. Wpływ pruriens Mucuna na profil nasienia i parametry biochemiczne w plazmie nasienia niepłodnych mężczyzn. Płodność i bezpłodność. 2008;90(3):627–635. [PubMed]
91. Shukla KK, Mahdi AA, Shankwar SN, Ahmad MK. Efekt Pruriens Mucuna na status hormonalny i jakość nasienia u niepłodnych mężczyzn. Zapobieganie ciąży. 2008; 78: p. 194.
92. Shukla KK, Mahdi AA, Ahmad MK, Shankhwar SN, Rajender S, Jaiswar SP. Pruriens Mucuna poprawia męską płodność poprzez działanie na oś podwzgórze-przysadka-gonad. Płodność i bezpłodność. 2009;92(6):1934–1940. [PubMed]
93. Ahmad MK, Mahdi AA, Shukla KK, Islam N, Jaiswar SP, Ahmad S. Efekt Pruriens Mucuna o profilu nasienia i parametrach biochemicznych w plazmie nasienia niepłodnych mężczyzn. Płodność i bezpłodność. 2008;90(3):627–635. [PubMed]
94. Shukla KK, Mahdi AA, Ahmad MK, Jaiswar SP, Shankwar SN, Tiwari SC. Pruriens Mucuna zmniejsza stres i poprawia jakość nasienia u niepłodnych mężczyzn. Oparta na dowodach komplementarna i alternatywna medycyna. 2010;7(1):137–144. [Artykuł bezpłatny PMC] [PubMed]
95. Chopra RN, Chopra IC, Handa KL, Kapoor LDUN, redaktorzy. Miejscowe narkotyki Chopry w Indiach. Wydanie 2. Kalkuta, Indie: Dhur & Sons Private Ltd .; 1958.
96. Georgiev P, Dimitrov M, Vitanov S. Wpływ Tribestana (z Tribulus terrestris) na testosteron w osoczu i spermatogenezę u samców jagniąt i baranów. Veterinarna Sbirka. 1988;86(3):20–22.
97. Koumanov F, Bozadjieva E, Andreeva M. Badanie kliniczne leku Tribestan. Savremenna Medicina. 1982;33(4):211–215.
98. Adimoelja A, Adaikan PG. Protodioscin z roślin ziołowych Tribulus terrestris L. poprawia funkcje seksualne mężczyzn, prawdopodobnie za pośrednictwem DHEA. International Journal of Impotence Research. 1997; 9 (artykuł S6)
99. Gauthaman K, Adaikan PG, Prasad RNV, Goh VHH, Ng SC. Zmiany parametrów hormonalnych wtórnych do podawania dożylnego Tribulus terrestris ekstrakt u naczelnych. International Journal of Impotence Research. 2000; 1: p. 6.
100. Adaikan PG, Gauthaman K, Prasad RNV, Ng SC. Proerektyczne efekty farmakologiczne Tribulus terrestris ekstrakt z ciała jamistego królika. Roczniki Akademii Medycznej w Singapurze. 2000;29(1):22–26. [PubMed]
101. Gauthaman K, Adaikan PG, Prasad RNV. Właściwości afrodyzjaku Tribulus Terrestris ekstrakt (Protodioscin) u normalnych i kastrowanych szczurów. Life Sciences. 2002;71(12):1385–1396. [PubMed]
102. Gauthaman K, Ganesan AP, Prasad RNV. Seksualne efekty punkcjiTribulus terrestris) ekstrakt (protodioscyna): ocena za pomocą modelu szczurzego. Journal of Medicine alternatywnych i uzupełniających. 2003;9(2):257–265. [PubMed]
103. Gauthaman K, Adaikan PG. Wpływ Tribulus terrestris na aktywność dinukleotydu dinukleotydu nikotynamidoadeninowego i receptory androgenowe w mózgu szczura. Journal of Ethnopharmacology. 2005;96(1-2):127–132. [PubMed]
104. Gauthaman K, Ganesan AP. Efekty hormonalne Tribulus terrestris i jego rola w zarządzaniu męskimi zaburzeniami erekcji: ocena z wykorzystaniem naczelnych, królików i szczurów. Fitomedycyna. 2008;15(1-2):44–54. [PubMed]
105. Garg LC, Parasar GC. Efekt Withania somnifera na rozrodczość u myszy. Planta Medica. 1965; 13: 46-47.
106. Ilayperuma I, Ratnasooriya WD, Weerasooriya TR. Efekt Withania somnifera wyciąg z korzenia na zachowania seksualne samców szczurów. Asian Journal of Andrology. 2002;4(4):295–298. [PubMed]
107. Mali PC, Chouhan PS, Chaudhary R. Ocena aktywności przeciwzapalnej Withania somnifera u samców szczurów albinosów. Płodność i bezpłodność. 2008; 90: p. S18.
108. Misra DS, Maiti RK, Bera S, Das K, Ghosh D. Efekt ochronny wyciągu kompozytowego Withania somnifera, Ocimum sanctum i Zingiber officinale o zaburzeniach endokrynologicznych wywoływanych przez pływanie u szczura płci męskiej. Iranian Journal of Pharmacology & Therapeutics. 2005; 4: 110-117.
109. Iuvone T, Esposito G, Capasso F, Izzo AA. Indukcja ekspresji syntazy tlenku azotu przez Withania somnifera w makrofagach. Life Sciences. 2003;72(14):1617–1625. [PubMed]
110. Ambiye VR, Langade D, Dongre S, Aptikar P, Kulkarni M, Dongre A. Ocena kliniczna spermatogennej aktywności ekstraktu korzeniowego Ashwagandha (Withania somnifera) u samców oligospermicznych: badanie pilotażowe. Oparta na dowodach komplementarna i alternatywna medycyna. 2013; 2013: strony 6.571420 [Artykuł bezpłatny PMC] [PubMed]
111. Ahmad MK, Mahdi AA, Shukla KK i in. Withania somnifera poprawia jakość nasienia poprzez regulację poziomu hormonów reprodukcyjnych i stresu oksydacyjnego w plazmie nasienia niepłodnych mężczyzn. Płodność i bezpłodność. 2010;94(3):989–996. [PubMed]
112. Mahdi AA, Shukla KK, Ahmad MK, et al. Withania somnifera poprawia jakość nasienia w związanej ze stresem płodności męskiej. Oparta na dowodach komplementarna i alternatywna medycyna. 2011; 2011: strony 9.576962 [Artykuł bezpłatny PMC] [PubMed]
113. Chauhan NS, Saraf DK, Dixit VK. Wpływ ziół rasajana vajikaran na oś przysadkowo-gonadową. European Journal of Integrative Medicine. 2010;2(2):89–91.
114. Kamtchouing P, Mbongue GYF, Dimo ​​T, Watcho P, Jatsa HB, Sokeng SD. Wpływ gwinei Aframomum melegueta i Piper na zachowania seksualne samców szczurów. Farmakologia behawioralna. 2002;13(3):243–247. [PubMed]
115. Thakur M, Bhargava S, Dixit VK. Wpływ szparagów racemosus na zaburzenia seksualne u samców szczurów z hiperglikemią. Biologia farmaceutyczna. 2009;47(5):390–395.
116. Guohua H, Yanhua L, Rengang M, Dongzhi W, Zhengzhi M, Hua Z. Afrodyzjak właściwości Allium tuberosum ekstrakt z nasion. Journal of Ethnopharmacology. 2009;122(3):579–582. [PubMed]
117. Ratnasooriya WD, Jayakody JR. Efekty ekstraktu wodnego Alpinia calcarata kłącza na kompetencje reprodukcyjne samców szczurów. Acta Biologica Hungarica. 2006;57(1):23–35. [PubMed]
118. Subramoniam A, Madhavachandran V, Ravi K, Anuja VS. Afrodyzjak własności pnącza słonia Argyreia nervosa. Journal of Endocrinology and Reproduction. 2007; 2: 82-85.
119. Campos AR, Lima RCP, Jr., Uchoa DEA, Silveira ER, Santos FA, Rao VSN. Pro-erekcyjne działanie bogatej w alkaloidy frakcji z Aspidosperma ulei kora korzenia u myszy. Journal of Ethnopharmacology. 2006;104(1-2):240–244. [PubMed]
120. Chauhan NS, Sharma V, Dixit VK. Efekt Asteracantha longifolia nasiona dotyczące zachowań seksualnych samców szczurów. Natural Product Research: Dawniej listy produktów naturalnych. 2011;25(15):1423–1431. [PubMed]
121. Sharma V, Thakur M, Chauhan NS, Dixit VK. Ocena aktywności anabolicznej, afrodyzjaku i reprodukcyjnej Anacyclus pyrethrum DC u samców szczurów. Scientia Pharmaceutica. 2009;77(1):97–110.
122. Sharma V, Thakur M, Chauhan NS, Dixit VK. Wpływ ekstraktu eteru naftowego z Anacyclus pyrethrum DC. o zachowaniach seksualnych u samców szczurów. Journal of Chinese Integrative Medicine. 2010;8(8):767–773. [PubMed]
123. Sharma V, Boonen J, de Spiegeleer B, Dixit VK. Androgenne i spermatogenne działanie ekstraktu z etanolu bogatego w alkilamid Anacyclus pyrethrum DC. Badania fitoterapii. 2013;27(1):99–106. [PubMed]
124. Tédong L, Djomeni Dzeufiet DP, Dimo ​​T, i in. Wpływ liścia Anacardium occidentale L. (Anacardiaceae) ekstrakt heksanowy na funkcje rozrodcze u szczurów cukrzycowych indukowanych streptozotocyną. Fitoterapia. 2007;5(4):182–193.
125. Yakubu MT, Afolayan AJ. Wpływ ekstraktu wodnego Bulbine natalensis (Baker) wywodzi się z zachowań seksualnych samców szczurów. International Journal of Andrology. 2009;32(6):629–636. [PubMed]
126. Ramachandran S, Sridhar Y, Sam SKG, i in. Aktywność ahroidyzmu Butea frondosa Koen. ex Roxb. ekstrakt u samców szczurów. Fitomedycyna. 2004;11(2-3):165–168. [PubMed]
127. Chauhan NS, Dixit VK. Wpływ nasion Bryonia laciniosa na zachowania seksualne samców szczurów. International Journal of Impotence Research. 2010;22(3):190–195. [PubMed]
128. Moundipa PF, Beboy NSE, Zelefack F, et al. Wpływ ekstraktów Basella alba i Hibiscus macranthus na produkcję testosteronu u dorosłych szczurów i komórek leydigowych. Asian Journal of Andrology. 2005;7(4):411–417. [PubMed]
129. Sudwan P, Saenphet K, Aritajat S, Sitasuwan N. Skutki Rotunda Boesenbergia (L.) Mansf. o zachowaniach seksualnych samców szczurów. Asian Journal of Andrology. 2007;9(6):849–855. [PubMed]
130. Ali ST, Rakkah NI. Prawdopodobny neuro-seksualny tryb działania Casimiroa edulis wyciąg z nasion przedstawia cytrynian sildenafilu (viagra) na zachowanie godowe u normalnych samców szczurów. Pakistan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2008;21(1):1–6. [PubMed]
131. Ratnasooriya WD, Fernando TSP. Wpływ naparu czarnej herbaty Camellia sinensis na kompetencje seksualne samców szczurów. Journal of Ethnopharmacology. 2008;118(3):373–377. [PubMed]
132. Abdulwaheb M, Makonnen E, Debella A, Abebe D. Efekt Catha edulis foresk (khat) wyciągi z zachowań seksualnych samców szczura. Journal of Ethnopharmacology. 2007;110(2):250–256. [PubMed]
133. Zamblé A, Martin-Nizard F, Sahpaz S, et al. Vasoaktywność, właściwości przeciwutleniające i afrodyzjak Caesalpinia benthamiana Korzenie. Journal of Ethnopharmacology. 2008;116(1):112–119. [PubMed]
134. Sangameswaran B, Jayakar B. Działanie przeciwcukrzycowe i spermatogenne Cocculus hirsutus (L) Diels. African Journal of Biotechnology. 2007;6(10):1212–1216.
135. Thakur M, Chauhan NS, Sharma V, Dixit VK, Bhargava S. Wpływ Orchioides Curculigo na oligospermię indukowaną hiperglikemią i dysfunkcję seksualną u samców szczurów. International Journal of Impotence Research. 2012;24(1):31–37. [PubMed]
136. Hosseinzadeh H, Ziaee T, Sadeghi A. Efekt szafranu, Crocus sativus piętno, ekstrakt i jego składniki, safranal i crocin na zachowania seksualne u normalnych samców szczurów. Fitomedycyna. 2008;15(6-7):491–495. [PubMed]
137. Onuaguluchi G, Nwafor P. Farmakologiczne podstawy stosowania rozpuszczalnego w wodzie ekstraktu antivenene Diodia scandens jako środek przeczyszczający, środek oksytocynowy i możliwy afrodyzjak w tradycyjnej medycynie we wschodniej Nigerii. Badania fitoterapii. 1999; 13: 459 – 463. [PubMed]
138. Watcho P, Wankeu-Nya M, Nguelefack TB, Tapondjou L, Teponno R, Kamanyi A. Pro-seksualne efekty Dracaena arborea (dzikie) połączenie (dracenaceae) u doświadczonych seksualnie samców szczurów. Linia farmakologiczna. 2007; 1: 400-419.
139. Thakur M, Dixit VK. Afrodyzjak Dactylorhiza hatagirea (D.Don) Soo u samców szczurów albinosów. Oparta na dowodach medycyna komplementarna i alternatywna. 2007;4(1):29–31. [Artykuł bezpłatny PMC] [PubMed]
140. Jagdale SP, Shimpi S, Chachad D. Badania farmakologiczne „Salep” Journal of Herbal Medicine and Toxicology. 2009; 3: 153-156.
141. Chiu JH, Chen KK, Chien TM i in. Epimedium brevicornum Ekstrakt Maxim rozluźnia ciałko jamiste królika poprzez wiele szlaków sygnałowych na tlenku azotu / cyklicznym monofosforanie guanozyny. International Journal of Impotence Research. 2006;18(4):335–342. [PubMed]
142. Yakubu MT, Akanji MA, Oladiji AT. Afrodyzjakalne potencjały wodnego ekstraktu Fadogia agrestis (Schweinf. Ex Hiern) łodyga u samców szczurów albinosów. Asian Journal of Andrology. 2005;7(4):399–404. [PubMed]
143. Zanoli P, Benelli A, Rivasi M, Baraldi C, Vezzalini F, Baraldi M. Przeciwny efekt ostrych i subchronicznych zabiegów Ferula hermonis o zachowaniach kopulacyjnych samców szczurów. International Journal of Impotence Research. 2003;15(6):450–455. [PubMed]
144. Oluyemi KA, Jimoh OR, Adesanya OA, Omotuyi IO, Josiah SJ, Oyesola TO. Wpływ surowego ekstraktu etanolowego Garcinia cambogia na układ rozrodczy samców szczurów Wistar (Rattus novergicus) African Journal of Biotechnology. 2007;6(10):1236–1238.
145. Amin A, Hamza AEA. Wpływ Roselle i Ginger na indukowaną cisplatyną toksyczność reprodukcyjną u szczurów. Asian Journal of Andrology. 2006;8(5):607–612. [PubMed]
146. Chaturapanich G, Chaiyakul S, Verawatnapakul V, Pholpramool C. Efekty Kaempferia parviflora ekstrakty na temat parametrów rozrodczych i spermatycznego przepływu krwi u samców szczurów. Reprodukcja. 2008;136(4):515–522. [PubMed]
147. Chaturapanich G, Chaiyakul S, Verawatnapakul V, Yimlamai T, Pholpramool C. Zwiększenie aktywności afrodyzjaka u samców szczurów za pomocą ekstraktu etanolowego Kaempferia parviflora i trening ćwiczeń. andrologia. 2012; 44 (uzupełnienie 1): 323 – 328. [PubMed]
148. Etuk E, Muhammad AA. Oceny bezpieczeństwa wodnego ekstraktu z kory macierzystej Lophira lanceolata w sprague'owych szczurach Dawleya. International Journal of Research in Pharmaceutical Sciences. 2010;1(1):28–33.
149. Ilarionov J. Androgenne i afrodyzjakowe działanie rośliny medycznej Lithospermum arvense (proso z ptaków) Eksperimentalna Medicina I Morfologiya. 1989;28(1):28–33. [PubMed]
150. Yakubu MT, Akanji MA, Oladiji AT, Adesokan AA. Androgenne potencjały ekstraktu wodnego Massularia acuminata (G. Don) Bullock z Hoyl. łodyga u samców szczurów Wistar. Journal of Ethnopharmacology. 2008;118(3):508–513. [PubMed]
151. Watcho P, Kamtchouing P, Sokeng SD i in. Androgenne działanie korzeni Mondia whitei u samców szczurów. Asian Journal of Andrology. 2004;6(3):269–272. [PubMed]
152. Lampiao F, Krom D, Du Plessis SS. The in vitro skutki Mondia whitei na parametry ruchliwości plemników ludzkich. Badania fitoterapii. 2008;22(9):1272–1273. [PubMed]
153. Zamblé A, Sahpaz S, Brunet C, Bailleul F. Wpływ keayany na zachowania seksualne samców szczurów. Fitomedycyna. 2008;15(8):625–629. [PubMed]
154. Carro-Juárez M, Cervantes E, Cervantes-Méndez M, Rodríguez-Manzo G. Właściwości afrodyzjaku wodnego surowego ekstraktu Montanoa tomentosa u samców szczurów. Biochemia i zachowanie farmakologiczne. 2004;78(1):129–134. [PubMed]
155. Tajuddin A, Ahmad S, Latif A, Qasmi IA. Afrodyzjakowa aktywność 50% etanolowych ekstraktów Myristica fragrans Houtt. (Gałka muszkatołowa) i Syzygium aromaticum (L.) Merr. & Perry. (Goździki) u samców myszy: badanie porównawcze. BMC Medycyna uzupełniająca i alternatywna. 2003; 3, artykuł 6 [Artykuł bezpłatny PMC] [PubMed]
156. Ahmad S, Latif A, Qasmi IA, Amin KMY. Eksperymentalne badanie efektu poprawy funkcji seksualnych Myristica fragrans Houtt. (Gałka muszkatołowa) BMC Medycyna uzupełniająca i alternatywna. 2005; 5, artykuł 16 [Artykuł bezpłatny PMC] [PubMed]
157. Thakur M, Dixit VK. Działanie łagodzące ekstraktu bogatego w frukto-oligosacharydy Orchis latifolia linn. na zaburzenia seksualne u samców szczurów z hiperglikemią. Seksualność i niepełnosprawność. 2008;26(1):37–46.
158. Murphy LL, Lee TJ. Żeń-szeń, zachowania seksualne i tlenek azotu. Roczniki Akademii Nauk w Nowym Jorku. 2002; 962: 372 – 377. [PubMed]
159. Murphy LL, Cadena RS, Chávez D, Ferraro JS. Wpływ żeń-szenia amerykańskiego (Panax quinquefolium) o zachowaniach kopulacyjnych mężczyzn u szczura. Fizjologia i zachowanie. 1998;64(4):445–450. [PubMed]
160. Riley AJ. Johimbina w leczeniu zaburzeń erekcji. British Journal of Clinical Practice. 1994;48(3):133–136. [PubMed]
161. Subhan F, Sultan S, Alam W, Dil AST. Potencjał afrodyzjaku Peganum harmala posiew. Hamdard Medicus. 1998; 41: 69-72.
162. Kamtchouing P, Fandio GYM, Dimo ​​T, Jatsa HB. Ocena aktywności androgennej Zingiber officinale i Pentadiplandra brazzeana u samców szczurów. Asian Journal of Andrology. 2002;4(4):299–301. [PubMed]
163. Oshima M, Gu Y. Pfaffia paniculatazmiany w estradiolu w osoczu-17β, poziom progesteronu i testosteronu u myszy. Journal of Reproduction and Development. 2003;49(2):175–180. [PubMed]
164. Akinola OB, Oladosu OS, Dosumu OO. Ekstrakt z liści etanolu Psidium guajava Linn zwiększa wydajność spermy u zdrowych szczurów Wistar. African Journal of Medicine and Medical Sciences. 2007;36(2):137–140. [PubMed]
165. Yang WM, Chang MS, Park SK. Efekty Psoralea corylifolia na temat ekspresji modulatora elementu reagującego na cAMP (CREM) i spermatogenezy u szczurów. Journal of Ethnopharmacology. 2008;117(3):503–506. [PubMed]
166. Dhawan K, Kumar S, Sharma A. Afrodyzjak aktywność metanolowego ekstraktu z liści Passiflora incarnata Linn. w myszach. Badania fitoterapii. 2003;17(4):401–403. [PubMed]
167. Oh MS, Yang WM, Chang MS, et al. Efekty Rubus coreanus na parametry spermy i ekspresję elementu modulującego cAMP (CREM) w jądrach szczurów. Journal of Ethnopharmacology. 2007;114(3):463–467. [PubMed]
168. Rakuambo NC, Meyer JJM, Hussein A, Huyser C, Mdlalose SP, Raidani TG. In vitro działanie roślin leczniczych stosowanych w leczeniu zaburzeń erekcji na rozluźnienie mięśni gładkich i plemniki ludzkie. Journal of Ethnopharmacology. 2006;105(1-2):84–88. [PubMed]
169. Tajuddin A, Ahmad S, Latif A, Qasmi IA. Wpływ 50% etanolowego ekstraktu Syzygium aromaticum (L.) Merr. & Perry. (goździk) na zachowania seksualne normalnych samców szczurów. BMC Medycyna uzupełniająca i alternatywna. 2004; 4, artykuł 17 [Artykuł bezpłatny PMC] [PubMed]
170. Carro-Juárez M, Alcazar C, Ballesteros-Polvo E, Villalobos-Peñalosa P. Zwiększenie zdolności wytrysku przez ogólnoustrojowe podawanie oquichpatli (Senecio cardiophyllus) wodny surowy ekstrakt u samców szczurów. Journal of Ethnopharmacology. 2009;126(3):506–511. [PubMed]
171. Islam MW, Tariq M, Ageel AM, Al-Said MS, Al-Yhya AM. Efekt Hematody szałwii o zachowaniach seksualnych samców szczurów. Journal of Ethnopharmacology. 1991;33(1-2):67–72. [PubMed]
172. Ratnasooriya WD, Dharmasiri MG. Wpływ nasion Terminalia catappa na zachowania seksualne i płodność samców szczurów. Asian Journal of Andrology. 2000;2(3):213–219. [PubMed]
173. El-Tantawy WHA, Temraz A, El-Gindi OD. Wolny poziom testosteronu w surowicy u samców szczurów leczonych Tribulus alatus wyciągi. International Brazilian Journal of Urology. 2007;33(4):554–559. [PubMed]
174. Subramoniam A, Madhavachandran V, Rajasekharan S, Pushpangadan P. Afrodyzjak Trichopus zeylanicus ekstrakt u samców myszy. Journal of Ethnopharmacology. 1997;57(1):21–27. [PubMed]
175. Padashetty SA, Mishra SH. Badania nad afrodyzjakiem Tricholepis glaberrima z wspomagającym działaniem enzymów antyoksydacyjnych. Biologia farmaceutyczna. 2007;45(7):580–586.
176. Arletti R, Benelli A, Cavazzuti E, Scarpetta G, Bertolini A. Właściwości pobudzające Turnera diffusa i Pfaffia paniculata fragmenty dotyczące zachowań seksualnych samców szczurów. Psychopharmacology. 1999;143(1):15–19. [PubMed]
177. Suresh Kumar PK, Subramoniam A, Pushpangadan P. Afrodyzjak aktywność Vanda tessellata (Roxb.) Hook. ex Extract u samców myszy. Indian Journal of Pharmacology. 2000;32(5):300–304.
178. Chauhan NS, Sharma V, Thakur M, Sawaya ACHF, Dixit VK. Pueraria tuberosa Ekstrakt DC poprawia androgenezę i zachowanie seksualne poprzez kaskadę FSH LH. The Scientific World Journal. 2013; 2013: strony 8.780659 [Artykuł bezpłatny PMC] [PubMed]
179. Sharma V, Boonen J, Chauhan NS, Thakur M, de Spiegeleer B, Dixit VK. Spilanthes acmella etanolowy ekstrakt z kwiatów: profilowanie alkilamidowego LC-MS i jego wpływ na zachowania seksualne u samców szczurów. Fitomedycyna. 2011;18(13):1161–1169. [PubMed]
180. Sharma V, Thakur M, Dixit VK. Porównawcze badanie ekstraktów etanolowych Pedalium murex Linn. owoce i cytrynian sildenafilu na zachowania seksualne i poziom testosteronu w surowicy u samców szczurów podczas i po leczeniu. Journal of Ethnopharmacology. 2012;143(1):201–206. [PubMed]
181. Wyciągi Watcho P, Modeste WN, Albert K, Carro-Juarez M. Dracaena arborea opóźniają działanie ejakulacyjne dopaminy i oksytocyny u samców szczurów kręgosłupa. International Journal of Impotence Research. 2014 [PubMed]
182. Sanda AK, Miegueu P, Bilanda DC, et al. Aktywność ejakulacyjna kory łodygi floribunda Allanblackia u samców szczurów rdzeniowych. Biologia farmaceutyczna. 2013;51(8):1014–1020. [PubMed]
183. Kataria S, Kaur D, Rao SK, Khajuria RK. In vitro i in vivo właściwości afrodyzjaku Corchorus depressus Linn. na ciałach jamistych królika rozluźnienie mięśni gładkich i zachowania seksualne normalnych samców szczurów. Journal of Ethnopharmacology. 2013;148(1):210–217. [PubMed]
184. JianFeng C, PengYing Z, ChengWei X, TaoTao H, YunGui B, KaoShan C. Wpływ wodnego ekstraktu Arctium lappa L. (łopian) wywodzi się z zachowań seksualnych samców szczurów. BMC Medycyna uzupełniająca i alternatywna. 2012; 12, artykuł 8 [Artykuł bezpłatny PMC] [PubMed]
185. Yakubu MT, Oyeyipo TO, Quadri AL, Akanji MA. Efekty ekstraktu wodnego Musa paradisiaca zakorzenić się w parametrach funkcji jąder u samców szczurów. Journal of Basic and Clinical Physiology and Pharmacology. 2013;24(2):151–157. [PubMed]
186. Ajiboye TO, Nurudeen QO, Yakubu MT. Afrodyzjakowy efekt wodnego ekstraktu korzeniowego Lecaniodiscus cupanioides u szczurów z upośledzeniem płci. Journal of Basic and Clinical Physiology and Pharmacology. 2014;25(2):241–248. [PubMed]
187. Srisuwan S, Sattayasai J, Arkaravichien T, Aromdee C. Wpływ andrographolidu i jego półsyntetycznej pochodnej na zachowania seksualne u samców myszy. Thai Journal of Pharmacology. 2009; 31: 68-71.
188. Taha SA, Ageel AM, Islam MW, Ginawi OT. Wpływ (-) - katynonu, psychoaktywnego alkaloidu z khat (Catha edulis forsk.) i kofeina na zachowania seksualne u szczurów. Badania farmakologiczne. 1995;31(5):299–303. [PubMed]
189. Zanoli P, Rivasi M, Zavatti M, Brusiani F, Vezzalini F, Baraldi M. Aktywność pojedynczych składników Ferula hermonis na zachowanie seksualne samców szczura. International Journal of Impotence Research. 2005;17(6):513–518. [PubMed]
190. Colman-Saizarbitoria T, Boutros P, Amesty A, i in. Ferutinina stymuluje aktywność syntazy tlenku azotu w medianie wybitności szczura. Journal of Ethnopharmacology. 2006;106(3):327–332. [PubMed]
191. Wang X, Chu S, Qian T, Chen J, Zhang J. Ginsenoside Rg1 poprawia zachowanie kopulacyjne mężczyzn poprzez szlak monofosforanu tlenku azotu / cyklicznego guanozyny. Journal of Sexual Medicine. 2010;7(2):743–750. [PubMed]
192. Luo Q, Li Z, Huang X, Yan J, Zhang S, Cai Y. Lysium barbarum polisacharydy: Efekty ochronne przeciwko uszkodzeniom wywołanym przez ciepło jąder szczura i H2O2indukowane przez DNA uszkodzenie mysich komórek jąder i korzystny wpływ na zachowania seksualne i funkcje rozrodcze szczurów hemicastrowanych. Life Sciences. 2006;79(7):613–621. [PubMed]
193. Taepongsorat L, Tangpraprutgul P, Kitana N, Malaivijitnond S. Stymulujący wpływ kwercetyny na jakość nasienia i narządy rozrodcze u dorosłych samców szczurów. Asian Journal of Andrology. 2008;10(2):249–258. [PubMed]
194. Benson BB, BéKro YA, MamyrbéKova-BéKro JA, Coulibaly WK, Ehilé EE. Ocena potencjału stymulującego seksualnie wszystkich flawonoidów wyekstrahowanych z liści Palisota hirsuta Thunb K. Schum (Commelinaceae) European Journal of Scientific Research. 2008;22(4):533–538.
195. Sala M, Braida D, Leone MP, Calcaterra P, Monti S, Gori E. Centralny wpływ johimbiny na zachowania seksualne u szczura. Fizjologia i zachowanie. 1990;47(1):165–173. [PubMed]
196. Peters RH, Koch PC, Blythe BL. Różnicowe działanie johimbiny i naloksonu na zachowania kopulacyjne samców szczurów. Behawioralna neuronauka. 1988;102(4):559–564. [PubMed]
197. Meyer JJM, Rakuambo NC, Hussein AA. Nowe ksantony z Securidaca longepedunculata z aktywnością przeciw zaburzeniom erekcji. Journal of Ethnopharmacology. 2008;119(3):599–603. [PubMed]
198. Haeri S, Minaie B, Amin G i in. Efekt Satureja khuzestanica olejek eteryczny na płodność samców szczura. fitoterapia. 2006;77(7-8):495–499. [PubMed]
199. Tyagi RM, Aswar UM, Mohan V, Bodhankar SL, Zambare GN, Thakurdesai PA. Badanie frakcji glikozydów furostenolu Tribulus terresteris na funkcje seksualne u szczurów. Biologia farmaceutyczna. 2008;46(3):191–198.
200. Estrada-Reyes R, Ortiz-López P, Gutiérrez-Ortíz J, Martínez-Mota L. Turnera diffusa Dziki (Turneraceae) odzyskuje zachowania seksualne u mężczyzn wyczerpanych seksualnie. Journal of Ethnopharmacology. 2009;123(3):423–429. [PubMed]
201. Subramoniam A, Gangaprasad A, Sureshkumar PK, Radhika J, Arun BK. Nowy afrodyzjak z orchidei, który aktywuje syntazy tlenku azotu. International Journal of Impotence Research. 2013;25(6):212–216. [PubMed]
202. Park JS, Han K. Efekt spermatogenny ekstraktu Yacon i jego składników oraz ich działanie hamujące metabolizm testosteronu. Biomolekuły i terapeutyki. 2013;21(2):153–160. [Artykuł bezpłatny PMC] [PubMed]