Cold Spring Harb Perspect Med. 2012 ก.ค.;2(7):a012070. doi: 10.1101/cshperspect.a012070.
+สังกัดของผู้เขียน
- Fishberg กรมประสาทและสถาบันสมองฟรีดแมน, โรงเรียนแพทย์ Mount Sinai, New York, New York 10029
- สารบรรณ: [ป้องกันอีเมล]
นามธรรม
การศึกษาการปรับตัวของเส้นประสาทที่เกิดจากยาเสพติดมีความเกี่ยวข้องโดยเฉพาะอย่างยิ่งในปัจจุบันเนื่องจากการใช้ยาตามใบสั่งแพทย์และการสั่งห้ามใช้ยาอย่างแพร่หลาย แม้ว่าจะมีคนจำนวนมากที่รู้เรื่องการกระทำที่รุนแรงของยาดังกล่าวในระบบประสาท แต่งานจำนวนมากยังคงเข้าใจถึงผลกระทบเรื้อรังของพวกเขาอย่างเต็มที่ ที่นี่เรามุ่งเน้นไปที่การปรับตัวที่ยาวนานขึ้นที่เกิดขึ้นในสองส่วนของสมอง catecholaminergic ซึ่งเป็นสื่อกลางในการกระทำพฤติกรรมที่แตกต่างของ opiates: พื้นที่หน้าท้อง tegmental (VTA) dopaminergic เซลล์ประสาทสำคัญสำหรับรางวัลยาและ locus coeruleus (LC) การพึ่งพาและการถอน เรามุ่งเน้นไปที่การเปลี่ยนแปลงในเซลล์, synaptic และปั้นพลาสติกในพื้นที่สมองเหล่านี้ที่มีส่วนช่วยในการพึ่งพาและการติดยาเสพติด การทำความเข้าใจกับตัวกำหนดระดับโมเลกุลของความเป็นพลาสติกที่ทำให้เกิด opiate-induced นี้จะมีความสำคัญต่อการพัฒนาวิธีการรักษาที่ดีกว่าสำหรับการติดยาเสพติด
เนื่องจากคุณสมบัติในการบรรเทาอาการปวดอย่างรุนแรง ยาในกลุ่มโอปิออยด์จึงถูกนำมาใช้เป็นเวลาหลายศตวรรษ โอปิออยด์ประกอบด้วยสารประกอบที่ได้จากฝิ่น เช่น มอร์ฟีนและโคเดอีน รวมถึงอนุพันธ์สังเคราะห์หลายชนิด เช่น เฮโรอีน ออกซิโคโดน และไฮโดรโคโดน สำหรับการทบทวนนี้ เราจะเน้นที่การออกฤทธิ์ของมอร์ฟีนและเฮโรอีน เนื่องจากเป็นสารที่ได้รับการศึกษามากที่สุดในระบบจำลอง แม้ว่าจะมีประสิทธิภาพในการรักษาอาการปวดเฉียบพลัน แต่การใช้โอปิออยด์ในระยะยาวมีภาวะแทรกซ้อนที่ร้ายแรง รวมถึงการดื้อยา การพึ่งพาทางกายภาพ และการเสพติด ( Ballantyne and LaForge 2007 ) การใช้ยาตามใบสั่งแพทย์ในทางที่ผิด โดยเฉพาะอย่างยิ่งยาแก้ปวดกลุ่มโอปิออยด์ ได้เพิ่มขึ้นอย่างมากในช่วงไม่กี่ปีที่ผ่านมาในประชากรผู้ใหญ่และวัยรุ่นในสหรัฐอเมริกา ( Compton and Volkow 2006 ; Manchikanti et al. 2010 ) การใช้โอปิออยด์ทางการแพทย์ก็เพิ่มขึ้นอย่างต่อเนื่องเช่นกัน เนื่องจากการรักษาความผิดปกติของอาการปวดเรื้อรังมีความเข้มข้นมากขึ้น ( Kuehn 2007 ) แม้ว่าจริยธรรมของการรักษาอาการปวดเรื้อรังและการใช้ยาโอปิออยด์มากเกินไปหรือน้อยเกินไปอาจเป็นประเด็นถกเถียงได้ ( Fields 2011 ) แต่ก็ไม่มีข้อสงสัยเลยว่าการใช้ยาโอปิออยด์เรื้อรังทำให้เกิดการปรับตัวของระบบประสาทซึ่งนำไปสู่ผลกระทบที่ไม่พึงประสงค์
ในอดีตเคยเชื่อกันว่าการพึ่งพาทางกายภาพและการเสพติดสารโอปิออยด์มีความเชื่อมโยงกันอย่างใกล้ชิด อย่างไรก็ตาม ปัจจุบันเชื่อกันว่ากระบวนการเหล่านี้เกิดขึ้นจากกลไกและวงจรที่แตกต่างกันภายในสมอง ( Koob และ Le Moal 2001 ) การพึ่งพาทางกายภาพแสดงออกเป็นอาการทางกายภาพที่เป็นลบ (เช่น เหงื่อออก ปวดท้อง ท้องเสีย) เมื่อหยุดใช้ยา การเสพติด หรือ "การพึ่งพาสารเสพติด" ตามที่กำหนดไว้ในคู่มือการวินิจฉัยและสถิติความผิดปกติทางจิต มีผลกระทบอย่างมากต่อสุขภาพและประสิทธิภาพการทำงานในระยะยาว และมีลักษณะเฉพาะคือความต้องการที่จะแสวงหาและใช้ยาแม้จะมีผลเสียตามมา ส่วนหนึ่ง แต่ไม่ใช่ทั้งหมดของลักษณะอาการเสพติดนี้ อาจสะท้อนถึง "การพึ่งพาทางจิตใจ" นั่นคือ อาการทางอารมณ์ที่เป็นลบที่เกิดขึ้นระหว่างการหยุดใช้ยา
ในบทความนี้ เราจะกล่าวถึงสิ่งที่เรารู้เกี่ยวกับกระบวนการปรับตัวของระบบประสาท หรือการเปลี่ยนแปลงทางพลาสติกที่เกิดจากสารโอปิออยด์ ซึ่งเกิดขึ้นในสองบริเวณของสมองที่อุดมไปด้วยเซลล์ประสาทแคเทโคลามีน ซึ่งมีบทบาทสำคัญในการเสพติดสารโอปิออยด์และการพึ่งพาทางกายภาพ ตามลำดับ ได้แก่ เซลล์ประสาทโดปามีนในบริเวณเท็กเมนทัลส่วนล่างของสมองส่วนกลาง (VTA) และเซลล์ประสาทนอร์อะดรีเนอร์จิกในบริเวณลอคัสโคเอรูลัสของพอนส์ (LC) การอภิปรายนี้มุ่งเน้นไปที่การเปลี่ยนแปลงทางพลาสติกที่เกิดจากสารโอปิออยด์สามประเภทในบริเวณเหล่านี้ ได้แก่ การเปลี่ยนแปลงทางพลาสติกของไซแนปส์ ซึ่งเป็นการเปลี่ยนแปลงที่คงอยู่ในการส่งสัญญาณไซแนปส์กลูตาเมอร์จิกและ GABAergic ( Dacher และ Nugent 2011b ; Luscher และ Malenka 2011 ); การเปลี่ยนแปลงทางพลาสติกของเซลล์ ซึ่งเป็นการเปลี่ยนแปลงแบบโฮมีโอสแตติกในลำดับการส่งสัญญาณภายในเซลล์ ( Williams et al. 2001 ; Nestler 1992 , 2004 ); และความยืดหยุ่นเชิงโครงสร้าง ซึ่งเป็นการเปลี่ยนแปลงที่คงอยู่ยาวนานในรูปร่างของเซลล์ประสาท ( Russo et al. 2010 ) การระบุปัจจัยกำหนดระดับโมเลกุลของความยืดหยุ่นทั้งสามประเภทนี้ในเซลล์ประสาทแคเทโคลามีนในสมอง ทำหน้าที่เป็นแบบจำลองของความยืดหยุ่นที่เกิดขึ้นในสารสื่อประสาทสำคัญอื่นๆ ที่เกี่ยวข้องกับการเสพติด และจะเป็นกุญแจสำคัญในการพัฒนายาบำบัดที่ดีขึ้นสำหรับการเสพติดยาโอปิออยด์ และอาจรวมถึงยาโอปิออยด์ที่ปลอดภัยกว่าสำหรับการบรรเทาอาการปวดด้วย
เขตพื้นที่ย่อย
พื้นหลัง
บริเวณ VTA ได้รับการศึกษาอย่างกว้างขวางในเรื่องการใช้ยาเสพติด เนื่องจากมีบทบาทสำคัญในระบบรางวัล เซลล์ประสาทโดปามีน (DA) ใน VTA ส่งสัญญาณไปยังหลายบริเวณของสมอง รวมถึงนิวเคลียสแอคคัมเบนส์ (NAc) ซึ่งมีการสังเกตพบว่ามีการปล่อย DA เพิ่มขึ้นเมื่อตอบสนองต่อยาเสพติดทุกประเภท ( Di Chiara และ Imperato 1988 ) อย่างไรก็ตาม แม้ว่าเซลล์ประสาท DA จะเป็นส่วนประกอบที่สำคัญ (ประมาณ 60%–65%) ของนิวเคลียสในสมองส่วนกลางนี้ แต่ก็มีความหลากหลายของเซลล์อยู่มาก โดยมีเซลล์ประสาท GABA อยู่เป็นจำนวนมาก (30%–35%) รวมถึงมีการอธิบายถึงเซลล์ประสาทกลูตาเมอร์จิก (2%–3%) ด้วย ( Swanson 1982 ; Nair-Roberts et al. 2008 ; Sesack และ Grace 2010 ) โดยทั่วไปแล้ว เซลล์ประสาท DA และ GABA ภายในสมองส่วนกลางด้านล่างจะส่งสัญญาณแบบเฉพาะที่ (จากด้านในไปด้านนอก) ไปยังโครงสร้างส่งออกหลัก ได้แก่ นิวเคลียสแอคคัมเบนส์ (NAc), คอร์เทกซ์ส่วนหน้า (PFC) และอะมิกดาลา (AMY) (มีการทบทวนอย่างละเอียดในSesack และ Grace 2010 ) ( รูปที่ 1 ) เส้นใยประสาทนำเข้าหลักไปยัง VTA ประกอบด้วยสัญญาณกระตุ้นจาก PFC, pedunculopontine และ laterodorsal tegmentum (PPTg และ LDT) รวมถึงโครงสร้างอื่นๆ ที่เพิ่งได้รับการกำหนดขึ้นใหม่ ( Geisler et al. 2007 ) ส่วนสัญญาณยับยั้งไปยัง VTA นั้นยังไม่ได้รับการกำหนดอย่างชัดเจนนัก แต่มีรายงานว่ามีสัญญาณนำเข้าจาก NAc, ventral pallidum และ mesopontine rostromedial tegmental nucleus (RMTg) ( Sesack และ Grace 2010 ) งานวิจัยที่ผ่านมามุ่งเน้นไปที่เซลล์ประสาท DA ใน VTA เป็นหลัก โดยเฉพาะอย่างยิ่งเซลล์ประสาทที่ส่งสัญญาณไปยัง NAc เนื่องจากบทบาทสำคัญของการส่งสัญญาณนี้ในเรื่องรางวัล ( Nestler 2004 )
การ์ตูนในส่วนทั้วไปของสมองสัตว์ฟันแทะที่แสดง VTA และ LC และการคาดการณ์อวัยวะสำคัญและออกมา DAergic (สีแดง) และเซลล์ประสาท GABAergic (สีน้ำเงิน) ในโครงการ VTA ไปยังโครงสร้าง limbic และ cortical และรับ glutamatergic (black-dash, PFC) และ GABAergic input (blue-dash, NAc, VP) เซลล์ประสาท Noradrenergic (สีเขียว) ใน LC มีประโยชน์หลายภูมิภาครวมถึง HIPP และ PFC และรับอินพุต glutamatergic จาก PGi ตัวย่อ: AMY, amygdala; HIPP ฮิบโปแคมปัส; LC, locus coeruleus; NAc นิวเคลียส accumbens; PFC, เยื่อหุ้มสมองส่วนหน้า; PGi นิวเคลียส paragigantocellularis; VP, pallidum หน้าท้อง; VTA พื้นที่หน้าท้องส่วนล่าง
การเปลี่ยนแปลงที่เกิดขึ้นแบบเฉียบพลันในกิจกรรมของเซลล์ประสาท
เนื่องจากมอร์ฟีนในปริมาณเฉียบพลันสามารถกระตุ้นการปล่อยโดปามีน (DA) ในนิวเคลียสแอคคัมเบนส์ (NAc) เพิ่มขึ้นเมื่อฉีดเข้าไปใน VTA ( Leone et al. 1991 ) จึงมีการศึกษาวิจัยจำนวนมากเกี่ยวกับผลกระทบเฉียบพลันของโอปิออยด์ใน VTA มอร์ฟีนในปริมาณเฉียบพลันจะเพิ่มอัตราการยิงของเซลล์ประสาทโดปามีนใน VTA ( Gysling and Wang 1983 ) ผลกระทบนี้เกิดขึ้นอย่างน้อยบางส่วนโดยการจับกันของมอร์ฟีนกับตัวรับ μ-โอปิออยด์ (MOR) ที่เชื่อมต่อกับ G i/oบนเซลล์ประสาท GABA ในบริเวณนั้น ทำให้กิจกรรมของเซลล์ประสาทเหล่านั้นลดลง และการปล่อย GABA จากเซลล์ประสาทโดปามีนก็ลดลง ส่งผลให้เกิดการปลดปล่อยการยับยั้งของเซลล์ประสาทโดปามีน ( Johnson and North 1992 ) อย่างไรก็ตาม การตีความงานวิจัยด้านสรีรวิทยาไฟฟ้าในยุคแรกๆ นั้นมีความซับซ้อนมากขึ้น เนื่องจากหลักฐานที่เน้นให้เห็นถึงลักษณะที่แทบจะแยกแยะไม่ได้ของเซลล์ประสาท VTA DA และ GABA (โดยขนาด รูปร่าง และคุณสมบัติทางสรีรวิทยาไฟฟ้า) ( Margolis et al. 2006 ) ซึ่งชี้ให้เห็นถึงความจำเป็นในการระบุเซลล์ประสาท VTA ที่ศึกษาอย่างแน่ชัดมากขึ้น (เช่น โดยวิธีอิมมูโนฮิสโตเคมี การใช้หนูทดลองที่มี GFP เป็นตัวบ่งชี้ เป็นต้น) ซึ่งเป็นประเด็นที่จะกล่าวถึงโดยละเอียดในภายหลังในบทความนี้ ในที่นี้ เราจะเน้นไปที่สารโอปิออยด์ที่ทำหน้าที่เป็นตัวกระตุ้นที่ MOR ใน VTA เช่น มอร์ฟีน เนื่องจากยาเหล่านี้ก่อให้เกิดผลที่น่าพึงพอใจซึ่งมักได้รับการศึกษามากที่สุดในสาขาการใช้ยาในทางที่ผิด อย่างไรก็ตาม เป็นที่ทราบกันว่าตัวรับ κ-opioid (KOR) ยังแสดงออกบนเซลล์ประสาท VTA DA ด้วย และการกระตุ้นตัวรับเหล่านี้สามารถยับยั้งอัตราการยิงของเซลล์ประสาท DA ได้โดยตรง ( Margolis et al. 2003 ) ซึ่งอาจมีส่วนทำให้เกิดผลเสียจากสารกระตุ้น kappa ความสามารถของสารโอปิเอตในการกระตุ้นและยับยั้งเซลล์ประสาท VTA DA รวมถึงผลทั้งด้านความพึงพอใจและด้านลบนั้นน่าสนใจ และการปรับสมดุลแบบ “หยิน-หยาง” นี้และบทบาทของเปปไทด์โอปิเอตภายในร่างกายในเรื่องรางวัลสมควรที่จะเป็นจุดสนใจของการศึกษาในอนาคต
พลาสติกซินแทพติกแบบชักนำให้เกิดอาการ
นอกเหนือจากการเปลี่ยนแปลงในกิจกรรมของเซลล์ประสาทแล้ว ยังมีรายงานมากมายเกี่ยวกับการเปลี่ยนแปลงความแข็งแรงของไซแนปส์ที่เกิดจากสารโอปิออยด์เฉียบพลัน เช่นเดียวกับโคเคนและยาเสพติดอื่นๆ การฉีดมอร์ฟีนเพียงครั้งเดียวพบว่าเพิ่มอัตราส่วนของกรด α-amino-3-hydroxy-5-methyl-4-isoxazolepropionic (AMPA) ต่อ กรด N -methyl-D-aspartic (NMDA) ในกระแสโพสต์ไซแนปส์กระตุ้น (EPSCs) 24 ชั่วโมงหลังการให้ยา ซึ่งสอดคล้องกับการเสริมศักยภาพระยะยาว (LTP) ของไซแนปส์กลูตาเมอร์จิกบนเซลล์ประสาทโดปามีน ( Saal et al. 2003 ) เมื่อเร็วๆ นี้ ยังมีรายงานว่ามอร์ฟีนเฉียบพลันทำให้เกิดการกระจายตัวใหม่ของตัวรับ AMPAR (AMPAR) ใน VTA ในลักษณะคล้ายกับโคเคน โดยเฉพาะอย่างยิ่งการแทรกตัวของ AMPAR ที่ขาด GluA2 ( Brown et al. 2010 ) Brown et al. พบว่าดัชนีการแก้ไขเพิ่มขึ้นและ GluA2 AMPAR ในไซโตพลาสซึมเพิ่มขึ้นเมื่อตอบสนองต่อมอร์ฟีนเฉียบพลัน ซึ่งเป็นผลที่เกิดขึ้นซ้ำได้โดยการกระตุ้นเซลล์ประสาท DA ใน VTA โดยตรงโดยใช้การแสดงออกของแชนเนลโรดโพซิน 2 แบบเลือก ( Brown et al. 2010 ) ซึ่งบ่งชี้โดยตรงว่ากิจกรรม/การส่งสัญญาณของ DA ภายใน VTA เกี่ยวข้องกับการควบคุมกลูตาเมต ข้อมูลเหล่านี้สอดคล้องกับงานวิจัยก่อนหน้านี้ที่พบว่าการแสดงออกมากเกินไปของ GluA1 แต่ไม่ใช่ GluA2 ใน VTA ทำให้สัตว์ไวต่อพฤติกรรมการกระตุ้นการเคลื่อนไหวและการให้รางวัลของมอร์ฟีนมากขึ้น ( Carlezon et al. 1997 )
สารโอปิออยด์ชนิดเฉียบพลันยังมีอิทธิพลต่อความยืดหยุ่นของไซแนปส์ GABAergic ใน VTA ด้วย การกระตุ้นด้วยความถี่สูงพบว่าสามารถกระตุ้นให้เกิด LTP ที่ปลายประสาท GABA (LTP GABA ) บนเซลล์ประสาท DA ใน VTA ซึ่งผลดังกล่าวขึ้นอยู่กับการกระตุ้นตัวรับ NMDA หลังไซแนปส์ (NMDAR) และการปล่อยไนตริกออกไซด์ (NO) ในฐานะสารสื่อประสาทแบบย้อนกลับจากเซลล์ประสาท DA ( Nugent et al. 2007 ) จากนั้น NO จะเพิ่มกิจกรรมของเอนไซม์ guanylyl cyclase (GC) ในเซลล์ประสาท GABA ส่งผลให้มีการปล่อย GABA เพิ่มขึ้น และเกิด LTP GABAมอร์ฟีนในปริมาณเดียวสามารถยับยั้ง LTP GABA ได้ โดยการขัดจังหวะการส่งสัญญาณของ NO–GC–โปรตีนไคเนส G (PKG) ทำให้สูญเสียการควบคุมการยับยั้งตามปกติ (สังเกตได้ 2 และ 24 ชั่วโมงหลังการฉีด แต่ไม่พบใน 5 วัน) ( Nugent et al. 2007 , 2009 ; Niehaus et al. 2010 ) ดังนั้น การรบกวน LTP GABAจึงเป็นอีกกลไกหนึ่งที่ทำให้สารโอปิออยด์ชนิดเฉียบพลันสามารถเพิ่มกิจกรรมของเซลล์ประสาท VTA DA ได้
เมื่อไม่นานมานี้ มีการอธิบายถึงพลาสติซิตี้ของเซลล์ประสาท GABAergic ใน VTA อีกรูปแบบหนึ่ง นั่นคือ การกดการทำงานของไซแนปส์ GABAergic บนเซลล์ประสาท DA ในระยะยาว (LTD GABA ) ( Dacher และ Nugent 2011a ) โดยใช้การกระตุ้นด้วยความถี่ต่ำ (LFS) ทำให้เกิด LTD GABA ที่เสถียร ในเซลล์ DA ซึ่งแตกต่างจาก LTP GABA ตรงที่ LTD GABA แสดงออกที่บริเวณหลังไซแนปส์และไม่ขึ้นอยู่กับ NMDAR ผลกระทบนี้ยังไม่ขึ้นอยู่กับการส่งสัญญาณของเอนโดแคนนาบินอยด์ แต่ถูกยับยั้งโดยซัลพิไรด์ ซึ่งเป็นตัวต้านตัวรับโดปามีน D2 (D2R) ที่น่าสนใจคือ การฉีดมอร์ฟีนเพียงครั้งเดียวก็เพียงพอที่จะป้องกัน LTD GABA ที่เกิดจากการกระตุ้นด้วย LFS ได้ 24 ชั่วโมงหลังการให้ยา ซึ่งบ่งชี้ว่ามอร์ฟีนสามารถควบคุมพลาสติซิตี้ของ GABA ใน VTA ได้ทั้งสองทิศทาง ( Dacher และ Nugent 2011a )
พลาสติกซินแทพติกแบบชักนำให้เกิดภาวะเรื้อรัง
แม้ว่าการเปลี่ยนแปลงของไซแนปส์ที่เกิดขึ้นจากการใช้โอปิออยด์แบบเฉียบพลันจะได้รับการศึกษาค่อนข้างดีแล้ว แต่การเปลี่ยนแปลงแบบเรื้อรังยังไม่ได้รับการศึกษาอย่างละเอียด จนถึงปัจจุบัน มีการศึกษาเพียงไม่กี่ชิ้นหรือแทบไม่มีเลยที่ตรวจสอบการเปลี่ยนแปลงของพลาสติซิตี้ในระบบกลูตาเมตหรือระบบ GABA ในการตอบสนองต่อการใช้โอปิออยด์แบบเรื้อรัง ซึ่งรวมถึงการขาดความรู้เกี่ยวกับความแตกต่างระหว่างการให้ยาแบบพาสซีฟและแบบแอคทีฟ ซึ่งเป็นประเด็นสำคัญที่ต้องพิจารณา เนื่องจากงานวิจัยล่าสุดแสดงให้เห็นว่าการคงอยู่ของ LTP ใน VTA ของสัตว์ที่งดการใช้โคเคน (นานถึง 3 เดือน) เกิดขึ้นเฉพาะเมื่อได้รับโคเคนแบบมีเงื่อนไขเท่านั้น ( Chen et al. 2008 )
อย่างไรก็ตาม เป็นที่ทราบกันดีว่ามอร์ฟีนเรื้อรัง เช่นเดียวกับมอร์ฟีนเฉียบพลัน จะเพิ่มกิจกรรมของเซลล์ประสาทโดปามีน (DA) การบันทึกในร่างกายภายหลังการใช้มอร์ฟีนเรื้อรังแสดงให้เห็นถึงการเพิ่มขึ้นทั้งอัตราการยิงพื้นฐานและกิจกรรมการระเบิด ซึ่งจะกลับสู่ระดับพื้นฐานในระหว่างการถอนยา ( Georges et al. 2006 ) ซึ่งแตกต่างจากงานวิจัยก่อนหน้านี้ที่สังเกตเห็นการลดลงอย่างต่อเนื่องของกิจกรรม DA ในหนูที่ถอนมอร์ฟีน ( Diana et al. 1995 , 1999 ) เหตุผลหนึ่งที่เป็นไปได้สำหรับความแตกต่างเหล่านี้คือวิธีการให้ยาที่ใช้ ตัวอย่างเช่น การศึกษาของ Georges et al. ใช้รูปแบบเม็ดปล่อยยาแบบต่อเนื่องใต้ผิวหนัง (sc) ซึ่งแสดงให้เห็นว่ามีลักษณะทางเภสัชพลศาสตร์ที่แตกต่างกันมากจากรูปแบบการเพิ่มขนาดยาเรื้อรังที่ใช้ในการศึกษาของ Diana et al. ก่อนหน้านี้ ดังที่ได้รายงานไว้ก่อนหน้านี้ ( Fischer et al. 2008 ) 24 ชั่วโมงหลังจากรับประทานมอร์ฟีนเม็ดสุดท้าย ระดับมอร์ฟีนในเลือดจะไม่ลดลง ยังคงค่อนข้างคงที่ที่ระดับสูงสุด (ประมาณ 3000 ng/ml) ในขณะที่แบบจำลองการฉีดเรื้อรังทำให้ระดับสูงสุดสูงกว่ามาก (ประมาณ 10,000 ng/ml) ในเวลา 1 ชั่วโมง โดยระดับในเลือดจะต่ำกว่า 100 ng/ml หลังจาก 4 ชั่วโมง และน้อยมากจนแทบไม่มีเลยใน 12 ชั่วโมง การเปลี่ยนแปลงอัตราการยิงของ DA ที่เกิดจากการถอนมอร์ฟีนเรื้อรัง ไม่ว่าจะเป็นการกลับสู่ระดับพื้นฐานหรือลดลงต่ำกว่าระดับพื้นฐาน ดูเหมือนจะขึ้นอยู่กับการเปลี่ยนแปลงในการปล่อย GABA การหยุดใช้มอร์ฟีนเรื้อรังจะเพิ่มกระแสโพสต์ไซแนปส์ยับยั้งของ GABA (IPSCs) และการปล่อย GABA ไปยังเซลล์ประสาท VTA DA ( Bonci และ Williams 1997 ) ซึ่งเมื่อเร็วๆ นี้พบว่าผลดังกล่าวขึ้นอยู่กับการรีไซเคิลของ MOR และการส่งสัญญาณของไซคลิกอะดีโนซีน-5′-โมโนฟอสเฟต (cAMP) ( Madhavan et al. 2010 )
ปัจจัยอีกประการหนึ่งที่อาจส่งผลให้เกิดความแตกต่างระหว่างการศึกษาต่างๆ คือ ความไม่สม่ำเสมอของ VTA เมื่อเทียบกับ LC (ดังที่อธิบายไว้ด้านล่าง) ไม่เพียงแต่มีความซับซ้อนของเซลล์หลายประเภท (โดยหลักคือ GABA เทียบกับ DA) เท่านั้น แต่การกระจายตัวของเซลล์แต่ละประเภทก็แตกต่างกันไปตามแกน VTA จากด้านหน้าไปด้านหลัง ( รูปที่ 2 ) โดยเฉพาะอย่างยิ่ง สัดส่วนของเซลล์ประสาท DA ต่อ GABA นั้นสูงกว่ามากในบริเวณย่อย VTA ด้านหน้า (IFN, RL) เมื่อเทียบกับบริเวณย่อยด้านหลัง (PN, PIF) ( Nair-Roberts et al. 2008 ) ความแตกต่างนี้มีความเกี่ยวข้องกับการทำงานของการเปลี่ยนแปลงพฤติกรรมที่เกิดจากมอร์ฟีน การแสดงออกมากเกินไปของ HSV-GluA1 เพิ่มพฤติกรรมการให้รางวัลมอร์ฟีนเมื่อฉีดเข้าไปใน VTA ส่วนหน้า ในขณะที่ทำให้เกิดพฤติกรรมหลีกเลี่ยงใน VTA ส่วนหลัง ซึ่งเป็นผลที่สังเกตได้เช่นกันจากการแสดงออกมากเกินไปของไวรัสของโปรตีนที่จับกับองค์ประกอบตอบสนอง cAMP (CREB) หรือฟอสโฟลิเปสซีแกมมา (PLCγ) ( Carlezon et al. 2000 ; Bolanos et al. 2003 ; Olson et al. 2005 ) ความแตกต่างนี้สามารถมองเห็นได้ในระดับโมเลกุลเช่นกัน เนื่องจากมอร์ฟีนเรื้อรังกระตุ้นการถอดรหัสที่ควบคุมโดยองค์ประกอบตอบสนอง cAMP (CRE) ในเซลล์ประสาท DA ใน VTA ส่วนหน้าและส่วนหลัง แต่สังเกตได้เฉพาะในเซลล์ประสาทที่ไม่ใช่ DA ใน VTA ส่วนหน้าเท่านั้น ( Olson et al. 2005 ) การศึกษาโครงสร้างระดับจุลภาคยืนยันความแตกต่างระหว่างส่วนหน้าและส่วนหลังดังกล่าว และชี้ให้เห็นถึงความซับซ้อนที่เพิ่มขึ้นของรูปแบบการรักษาและผลลัพธ์ของการฉายภาพ ระดับ GluA1 เพิ่มขึ้นทั้งในเดนไดรต์ที่ให้ผลบวกต่อไทโรซีนไฮดรอกซิเลส (TH) (DAergic) และเดนไดรต์ที่ให้ผลลบต่อ TH (น่าจะเป็น GABAergic) ในบริเวณพาราบราเคียล (PBP) VTA เมื่อฉีดมอร์ฟีนเพียงครั้งเดียว ในทางตรงกันข้าม เมื่อใช้มอร์ฟีนเรื้อรัง พบว่าระดับ GluA1 เพิ่มขึ้นในบริเวณพาราไนกราล (PN) VTA นอกเหนือจากบริเวณ PBP ด้วย ( Lane et al. 2008 )
ความซับซ้อนของเซลล์และการฉายภาพภายใน VTA สัดส่วนของเซลล์ประสาท DA (สีแดง) ต่อ GABA (สีน้ำเงิน) แตกต่างกันไปในแต่ละนิวเคลียสย่อยของ VTA โดยพบอัตราส่วน DA:GABA ที่สูงกว่าในบริเวณส่วนหน้ามากกว่า เช่น นิวเคลียสเชิงเส้นส่วนหน้า (RL) เมื่อเทียบกับนิวเคลียสส่วนท้ายมากกว่า เช่น บริเวณพาราไนกราล (PN) และพาราอินเตอร์ฟาสซิคุลาร์ (PIF) นอกจากนี้ การฉายภาพของเซลล์ประสาท DA ยังแตกต่างกันไปทั่ว VTA โดยบริเวณด้านข้างมากกว่า เช่น นิวเคลียสพาราบราเคียล (PBP) จะฉายภาพไปยังเปลือกด้านข้างของนิวเคลียสแอคคัมเบนส์ (Lat Sh) ในขณะที่บริเวณตรงกลาง เช่น PN มีการฉายภาพที่หลากหลาย รวมถึงอะมิกดาลา (AMY) เปลือกสมองส่วนหน้า (PFC) แกนกลางของนิวเคลียสแอคคัมเบนส์ (NAc) และเปลือกด้านในของนิวเคลียสแอคคัมเบนส์ (Med Sh) มีงานวิจัยจำกัดที่ศึกษาการฉายภาพของเซลล์ประสาท GABA มีหลักฐานบางอย่างที่แสดงว่าเซลล์ประสาท GABA ในส่วนหน้าของ PBP มีการส่งสัญญาณไปยัง PFC อย่างแข็งแรง ในขณะที่มีเซลล์ประสาท DA ในส่วนหน้าของ PBP เพียงไม่กี่เซลล์ที่ส่งสัญญาณไปยัง PFC แต่มีการส่งสัญญาณ DA จากส่วนท้ายของ PBP ไปยัง PFC เป็นจำนวนมาก ซึ่งบ่งชี้ว่าการส่งสัญญาณจาก PBP ไปยัง PFC ไม่เพียงแต่ถูกกำหนดตามภูมิภาคเท่านั้น แต่ยังมีความเฉพาะเจาะจงตามชนิดย่อยของเซลล์ประสาทด้วย ( Lammel et al. 2008 ) (จำนวนเซลล์ที่ใช้มาจากNair-Roberts et al. 2008และการส่งสัญญาณมาจากงานวิจัยการติดฉลากแบบย้อนกลับโดยLammel et al. 2008 )
ความแตกต่างระหว่างเซลล์ประสาทโดปามีน (DA) ใน VTA โดยพิจารณาจากบริเวณที่ส่งสัญญาณออกไปนั้น ได้รับความสนใจอย่างมากในปัจจุบัน เนื่องจากเป็นที่ทราบกันดีแล้วว่า คุณสมบัติทางสรีรวิทยาไฟฟ้าของเซลล์ประสาท DA นั้นแตกต่างกันไปตามบริเวณที่ส่งสัญญาณไป เซลล์ประสาท DA ใน VTA ที่ส่งสัญญาณไปยัง NAc มีกระแส I h น้อย กว่าเซลล์ประสาทที่ส่งสัญญาณไปยังอะมิกดาลาส่วนฐานด้านข้าง (BLA) มาก ( Ford et al. 2006 ) และยังมีความแตกต่างในการส่งสัญญาณภายใน NAc เองด้วย โดยเซลล์ประสาท DA ที่ส่งสัญญาณไปยังเปลือกด้านข้างของ NAc แสดงกระแส I h ที่สูง กว่าเซลล์ประสาท DA ที่ส่งสัญญาณไปยังเปลือกด้านในของ NAc มาก ( Lammel et al. 2011 ) ระยะเวลาของศักย์ไฟฟ้าแอ็กชัน (AP) ของเซลล์ประสาท DA ก็แตกต่างกันไปตามบริเวณที่ส่งสัญญาณเช่นกัน โดยเซลล์ประสาท DA ที่ส่งสัญญาณไปยัง NAc มีระยะเวลา AP ยาวที่สุด ในขณะที่เซลล์ประสาทที่ส่งสัญญาณไปยัง PFC มีระยะเวลา AP สั้นกว่า และเซลล์ประสาท DA ที่ส่งสัญญาณไปยัง AMY มีระยะเวลาสั้นที่สุด ( Margolis et al. 2008 ) ที่สำคัญ การตอบสนองต่อสารโอปิออยด์ดูเหมือนจะแตกต่างกันภายใน VTA ขึ้นอยู่กับประเภทของการส่งสัญญาณ: เซลล์ประสาท DA ที่ส่งสัญญาณไปยัง NAc ตอบสนองต่อสารกระตุ้น KOR มากกว่าเซลล์ประสาทที่ส่งสัญญาณไปยัง BLA ในขณะที่พบผลตรงกันข้ามสำหรับการตอบสนองต่อสารกระตุ้น MOR/delta (DOR) ซึ่งมีผลต่อเซลล์ประสาทที่ส่งสัญญาณไปยัง BLA มากกว่า ( Ford et al. 2006 ) สิ่งนี้สะท้อนให้เห็นถึงผลของสารโอปิออยด์ที่เกิดขึ้นในระดับก่อนซินแนปส์เช่นกัน โดยสารกระตุ้น KOR ทำให้เกิดการยับยั้ง IPSC ของ GABA Aในเซลล์ประสาท DA ที่ส่งสัญญาณไปยัง BLA มากขึ้น ในขณะที่มีการยับยั้ง IPSC ของ GABA B ที่เกิดจากสารกระตุ้น KOR ในเซลล์ประสาทที่ส่งสัญญาณไปยัง NAc มากกว่า ( Ford et al. 2006 ) นอกจากนี้ เพิ่งมีการสังเกตว่าการปรับเปลี่ยนซินแนปส์กระตุ้นบนเซลล์ประสาท DA แตกต่างกันไปตามการส่งสัญญาณ ( Lammel et al. 2011 ) Lammel และคณะ (2011)พบว่าอัตราส่วน AMPA/NMDA เพิ่มขึ้นจากการใช้โคเคนในเซลล์ประสาท DA ที่ส่งสัญญาณไปยัง NAc แต่ไม่เพิ่มขึ้นในเซลล์ประสาท DA ที่ส่งสัญญาณไปยัง PFC อย่างไรก็ตาม อัตราส่วน AMPA/NMDA เพิ่มขึ้นในเซลล์ DA ที่ส่งสัญญาณไปยัง PFC เมื่อตอบสนองต่อสิ่งเร้าที่ไม่พึงประสงค์ (การฉีดฟอร์มาลินที่อุ้งเท้าหลัง) ซึ่งเป็นผลที่สังเกตได้ในเซลล์ประสาท DA ที่ส่งสัญญาณไปยัง NAc lateral shell แต่ไม่พบในเซลล์ประสาท DA ที่ส่งสัญญาณไปยัง NAc medial shell แสดงให้เห็นถึงความแตกต่างหลากหลายในการตอบสนองภายในบริเวณย่อยของเป้าหมายการส่งสัญญาณนี้ ( Lammel et al. 2011 ) เห็นได้ชัดว่าการศึกษาเหล่านี้บ่งชี้ว่า การทำความเข้าใจอย่างละเอียดถี่ถ้วนมากขึ้นเกี่ยวกับการปรับตัวของไซแนปส์ที่เกิดขึ้นกับสารโอปิออยด์ทั้งแบบเฉียบพลันและเรื้อรัง จำเป็นต้องบูรณาการข้อมูลเกี่ยวกับผลลัพธ์ของเซลล์ประสาท DA ที่ศึกษา การพัฒนาเทคนิคเฉพาะสำหรับเซลล์ประสาทและการส่งสัญญาณจะช่วยชี้แจงประเด็นเหล่านี้ โดยอนุญาตให้มีการปรับเปลี่ยนเฉพาะในบริเวณที่มีความหลากหลายนี้
โครงสร้างที่เป็นพลาสติกและเซลลูล่าร์
ความเกี่ยวข้องของความยืดหยุ่นของโครงสร้างยากระตุ้นการเปลี่ยนแปลงทาง synaptic และพฤติกรรมได้รับการทบทวนเมื่อเร็ว ๆ นี้ (รุสโซและคณะ 2010). การศึกษาส่วนใหญ่ของพลาสติกที่มีโครงสร้างจนถึงปัจจุบันมีการตรวจสอบการเปลี่ยนแปลงในลักษณะทางสัณฐานวิทยาของกระดูกสันหลังหรือการแตกแขนงของเซลล์ประสาทในพื้นที่เป้าหมาย VTA แต่ห้องปฏิบัติการของเราได้ทำการตรวจสอบการปรับโครงสร้างอื่นเพื่อตอบสนองต่อการบริหาร opiate เรื้อรัง ก่อนอื่นเราสังเกตว่าพื้นที่ผิวของเซลล์ประสาทหนู VTA DA ลดลง decre25% ในการตอบสนองต่อการบริหารมอร์ฟีนเรื้อรัง แต่ไม่รุนแรง (Sklair-Tavron และคณะ 1996). ผลกระทบนี้มีลักษณะเฉพาะสำหรับเซลล์ประสาท DA ใน VTAเนื่องจากเซลล์ TH-negative (น่าจะเป็น GABAergic) จึงไม่เปลี่ยนแปลง นอกจากนี้การเปลี่ยนแปลงนี้อาจถูกบล็อกโดยระบบ naltrexone ซึ่งบ่งชี้ว่าจำเป็นต้องมีการส่งสัญญาณ MOR และปัจจัยการแพร่กระจายของเซลล์ประสาทที่มาจากสมอง (BDNF) ใน VTA ยังช่วยป้องกันการลดลงซึ่งบ่งบอกว่าการส่งสัญญาณของเซลล์ประสาทที่ลดลงอาจรองรับการเปลี่ยนแปลงทางสัณฐาน ที่สำคัญการลดขนาดของเซลล์ประสาท VTA DA ขนาดนี้เป็นที่สังเกตด้วยการบริหารเฮโรอีนเรื้อรังและมอร์ฟีน (รุสโซและคณะ 2007), ในโปรโตคอลการจัดการตนเองและแฝง (สปิกาและคณะ 2003; ชูและคณะ 2007; รุสโซและคณะ 2007), และข้ามสปีชีส์เมื่อเร็ว ๆ นี้เราได้จำแนกลักษณะพิเศษนี้ของหนูและเนื้อเยื่อหลังศพจากผู้เสพเฮโรอีนของมนุษย์ (Mazei-Robison และคณะ 2011). การศึกษาติดตามผลไม่พบหลักฐานของการตายของเส้นประสาท VTA DA หรือการบาดเจ็บ (Sklair-Tavron และคณะ 1996; รุสโซและคณะ 2007) และการลดลงของขนาดเซลล์ยังคงอยู่เป็นเวลา 14 วันหลังจากการบริหารมอร์ฟีนเรื้อรัง แต่กลับสู่ระดับพื้นฐาน 30 วัน เส้นเวลานี้แสดงถึงการยอมรับรางวัล (รุสโซและคณะ 2007), การใช้ยาซ้ำหลายครั้งจะลดผลกระทบของยาเสพติดและนำไปสู่การเพิ่มการบริโภคยาเท่าที่เห็นในมนุษย์ (โอไบรอัน 2001).
เนื่องจาก BDNF สามารถช่วยเหลือการเปลี่ยนแปลงโครงสร้างที่เกิดจากมอร์ฟีนเรื้อรังเราต้องการตรวจสอบว่าเส้นทางการส่งสัญญาณประสาทปลายน้ำเป็นสื่อกลางปั้นพลาสติกโครงสร้างนี้ แม้ว่าจะมีข้อโต้แย้งว่าระดับตัวเองของ BDNF จะเปลี่ยนแปลงใน VTA เพื่อตอบสนองต่อการบริหารยาเสพติดเรื้อรังหรือไม่ (นูแมนและคณะ 1998; ชูและคณะ 2007; คูเอตอัล 2010) มีการรายงานกฎระเบียบในเส้นทางส่งสัญญาณหลักสามเส้นทางจาก BDNF: PLCγ, phosphatidylinositol 3′-kinase (PI3K) และ kinase โปรตีนที่กระตุ้นการทำงานของ mitogen (MAPK) (รุสโซและคณะ 2009). มอร์ฟีนเรื้อรังเพิ่มกิจกรรมของทางเดินPLCγ (Wolf และคณะ 1999, 2007) ลดกิจกรรมของทางเดิน PI3K ซึ่งวัดจากสารรับอินซูลินที่ลดลง -2 (IRS2) และระดับ phospho-AKT (Wolf และคณะ 1999; รุสโซและคณะ 2007; Mazei-Robison และคณะ 2011) และเพิ่มการส่งสัญญาณ MAPK ซึ่งวัดโดยการเพิ่มฟอสโฟรีเลชั่นและการเร่งปฏิกิริยาของไคเนสโปรตีนที่เกี่ยวข้องกับเซลล์นอกเซลล์ (ERK) (Ortiz และคณะ 1995; Berhow และคณะ 1996; หลิวและคณะ 2007). เมื่อใช้การแสดงออกของไวรัสมากเกินไปเราพบว่ามันเป็นการเปลี่ยนแปลงที่เกิดจากมอร์ฟีนเรื้อรังในการส่งสัญญาณ PI3K ที่ก่อให้เกิดการเปลี่ยนแปลงทางสัณฐานวิทยา: overexpression ของ IRS2 ที่โดดเด่น - ลบ (IRS2dn) หรือ AKTdn ก็เพียงพอที่จะลดขนาด VTA DA soma ในขณะที่ overexpression ของ IRS2 ชนิดที่ป่าช่วยป้องกันการลดลงของมอร์ฟีนที่เกิดขึ้นและการแสดงออกของ AKT ที่ใช้งานอยู่ (AKTca) (รุสโซและคณะ 2007; Mazei-Robison และคณะ 2011) ในทางตรงกันข้ามการแสดงออกอย่างมากของPLCγหรือ ERK นั้นไม่เพียงพอที่จะเปลี่ยนขนาด VTA DA soma (รุสโซและคณะ 2007). ที่สำคัญการแสดงออกที่เกินขีด จำกัด ของ IRS2 ก็สามารถป้องกันการยอมรับมอร์ฟีนในการรับรางวัลโดยปริยายบทบาทของความยืดหยุ่นของโครงสร้างในการตอบสนองเชิงพฤติกรรม
งานวิจัยล่าสุดของเราชี้ให้เห็นว่าการเปลี่ยนแปลงโครงสร้างนี้อาจมีความเชื่อมโยงอย่างใกล้ชิดกับการเปลี่ยนแปลงกิจกรรมที่เกิดจากการใช้สารโอปิออยด์เรื้อรัง คล้ายกับการศึกษาในร่างกายของ Georges et al. ที่กล่าวถึงข้างต้น เราพบว่าอัตราการยิงของ VTA DA เพิ่มขึ้นในช่วงเวลาเดียวกันกับที่ขนาดของเซลล์ประสาทลดลงในหนูที่ได้รับมอร์ฟีนเรื้อรัง ( Mazei-Robison et al. 2011 )
อย่างไรก็ตามเราพบว่าการส่งออก DA ไปยัง NAc ซึ่งวัดโดยโวลแทมเมทรีไซโคลวิฟนั้นลดลงจริงโดยแสดงให้เห็นถึงการหยุดพักในการเปิดใช้งานปกติและการส่งออกในวงจรรางวัล mesolimbic
เราได้ทำการวิเคราะห์ผลลัพธ์นี้เพิ่มเติมและพบว่า การแสดงออกมากเกินไปของ IRS2dn ใน VTA ซึ่งเพียงพอที่จะลดขนาดของเซลล์ประสาทโดปามีน (DA soma) ส่งผลให้ปริมาณโดปามีนที่ส่งไปยัง NAc ลดลง และยังลดการแสดงออกของหน่วยย่อยของช่อง K + หลายตัว ในลักษณะที่คล้ายกับการใช้มอร์ฟีนเรื้อรัง
ในการพยายามระบุเส้นทางการส่งสัญญาณที่อยู่ปลายทางของ IRS2/AKT ซึ่งเป็นตัวกลางในการปรับตัวของระบบประสาทที่เกิดจากมอร์ฟีนเรื้อรัง เราได้สังเกตเห็นอย่างน่าประหลาดใจว่า การส่งสัญญาณของ mammalian target of rapamycin (mTOR) complex 1 (mTORC1) ซึ่งเป็นเส้นทางที่ได้รับการยอมรับอย่างดีในการเจริญเติบโตของเซลล์ กลับเพิ่มขึ้นจากการใช้มอร์ฟีนเรื้อรัง ในทางตรงกันข้าม เราสังเกตเห็นการลดลงของการส่งสัญญาณของ mTOR complex 2 (mTORC2) ซึ่งเราได้แสดงให้เห็นในภายหลังว่ามีความจำเป็นและเพียงพอต่อการเปลี่ยนแปลงขนาดของเซลล์และกิจกรรมของเซลล์ประสาทที่เกิดจากมอร์ฟีน โดยเฉพาะอย่างยิ่ง เราพบว่าการแสดงออกมากเกินไปของ rapamycin-insensitive companion of mTOR (Rictor) ซึ่งเป็นโปรตีนองค์ประกอบที่สำคัญของ mTORC2 นั้น เพียงพอที่จะป้องกันการลดลงของขนาดของเซลล์ และยังป้องกันการเพิ่มขึ้นของอัตราการยิงของเซลล์ประสาทโดปามีน (DA) ในลักษณะที่เกิดขึ้นเองภายในเซลล์ กล่าวคือ เฉพาะเซลล์ DA ใน VTA ที่แสดงออก Rictor มากเกินไปเท่านั้นที่มีอัตราการยิงลดลง ในขณะที่เซลล์ DA ที่อยู่ใกล้เคียงยังคงแสดงอัตราการยิงที่เพิ่มขึ้น สิ่งนี้ชี้ให้เห็นว่าการเปลี่ยนแปลงการส่งสัญญาณภายในเซลล์ประสาท DA สามารถเป็นตัวกลางในการเปลี่ยนแปลงความตื่นตัวที่เกิดจากสารโอปิออยด์เรื้อรัง อาจโดยการเปลี่ยนแปลงการปรับ AKT ของกระแส GABA A ( Krishnan et al. 2008 ) หรือการแสดงออกของช่อง K + ( Mazei-Robison et al. 2011 ) ( รูปที่ 3 ) เช่นเดียวกับการแสดงออกเกินของ IRS2 เราพบว่าการเปลี่ยนแปลงกิจกรรมของ mTORC2 สัมพันธ์กับพฤติกรรมการให้รางวัลของมอร์ฟีน เนื่องจากกิจกรรมของ mTORC2 ที่ลดลงทำให้การเลือกสถานที่ที่ได้รับการปรับสภาพด้วยมอร์ฟีน (CPP) ลดลง ในขณะที่กิจกรรมของ mTORC2 ที่เพิ่มขึ้นนั้นเพียงพอที่จะทำให้เกิด CPP กับมอร์ฟีนในปริมาณต่ำที่ไม่ทำให้เกิดการปรับสภาพสถานที่ในสัตว์ทดลองกลุ่มควบคุม
การใช้มอร์ฟีนเรื้อรังทำให้ขนาดของเซลล์ประสาทโดปามีน (DA) ใน VTA ลดลง แต่กลับเพิ่มความตื่นตัวของเซลล์ประสาท ในขณะที่การส่งสัญญาณโดปามีนไปยัง NAc ลดลง ผลสุทธิของมอร์ฟีนคือวิถีการให้รางวัลที่ตอบสนองน้อยลง หรือก็คือภาวะดื้อต่อรางวัลการลดลงของการส่งสัญญาณ IRS2-AKT (สีน้ำเงิน) ใน VTA เป็นตัวกลางในการส่งผลกระทบของมอร์ฟีนเรื้อรังต่อขนาดของเซลล์ประสาทและความตื่นตัวทางไฟฟ้า ผลกระทบต่อความตื่นตัวนั้นเกิดจากการลดลงของกระแส GABA Aและการยับยั้งการแสดงออกของช่อง K +การลดลงของกิจกรรม mTORC2 ใน VTA ที่เกิดจากมอร์ฟีนมีความสำคัญอย่างยิ่งต่อการปรับตัวทางสัณฐานวิทยาและสรีรวิทยาที่เกิดจากมอร์ฟีน รวมถึงภาวะดื้อต่อรางวัล ในทางตรงกันข้าม มอร์ฟีนเรื้อรังจะเพิ่มกิจกรรม mTORC1 (สีแดง) ซึ่งดูเหมือนว่าจะไม่มีผลโดยตรงต่อการปรับตัวที่เกิดจากมอร์ฟีนเหล่านี้ การใช้มอร์ฟีนเรื้อรังยังลดการส่งสารโดปามีนไปยังนิวเคลียสแอคคัมเบนส์ (NAc) รวมทั้งลดการแตกแขนงของเดนไดรต์และจำนวนหนามเดนไดรต์บนเซลล์ประสาท GABA ที่มีหนามขนาดกลางใน NAc ซึ่งเป็นการยับยั้งการส่งสัญญาณโดปามีนตามปกติในวงจรเมโซลิมบิกอีกด้วย
ไม่น่าเป็นไปได้ที่การเปลี่ยนแปลงขนาดของตัวเซลล์จะเป็นการปรับตัวทางโครงสร้างเพียงอย่างเดียวที่เกิดจากการใช้สารโอปิออยด์เรื้อรังใน VTA เนื่องจากจำนวนหนามเดนไดรต์และความซับซ้อนของการแตกแขนงของเดนไดรต์ในเซลล์ประสาทหนามขนาดกลางของ NAc ในหนูที่เคยได้รับมอร์ฟีนเรื้อรังลดลง ( Robinson และ Kolb 1999 ; Robinson et al. 2002 ) เราจึงคาดว่าการเปลี่ยนแปลงของเดนไดรต์ก็เกิดขึ้นในเซลล์ประสาทโดปามีนใน VTA ด้วยเช่นกัน ปัจจุบันมีการศึกษาเพื่อระบุลักษณะการเปลี่ยนแปลงของรูปร่างหนามเดนไดรต์ ซึ่งเป็นช่องว่างขนาดใหญ่ในสาขานี้ เนื่องจากมีเพียงการศึกษาเดียวเท่านั้นที่ตรวจสอบการเปลี่ยนแปลงของโครงสร้างเดนไดรต์ใน VTA ที่เกิดจากยา การศึกษานี้พบว่าความหนาแน่นของหนามเดนไดรต์เพิ่มขึ้นในเซลล์ประสาท VTA ชนิดหนึ่งย่อยที่ตอบสนองต่อการฉีดโคเคนแบบเฉียบพลัน ซึ่งเป็นชนิดย่อยเดียวกันกับที่แสดงให้เห็นว่าอัตราส่วน NMDA/AMPA เพิ่มขึ้น ( Sarti et al. 2007 ) ข้อมูลจากงานวิจัยก่อนหน้านี้ของเราที่ระบุว่า ความยาวของกระบวนการโดปามีน (DA) ใน VTA ลดลง (ประมาณ 30%) ในหนูที่ได้รับการรักษาด้วยมอร์ฟีนเรื้อรัง ( Sklair-Tavron et al. 1996 ) สอดคล้องกับการเปลี่ยนแปลงโดยรวมของโครงสร้างโดปามีนใน VTA การเปลี่ยนแปลงนี้อาจช่วยอธิบายการลดลงของการส่งสัญญาณโดปามีนไปยัง NAc หลังจากได้รับมอร์ฟีนเรื้อรังได้เช่นกัน เนื่องจากเราเคยรายงานการลดลงของการขนส่งแอกซอนและระดับโปรตีนนิวโรฟิลาเมนต์ใน VTA มาก่อน ( Beitner-Johnson et al. 1992 , 1993 ) ซึ่งบ่งชี้ว่ามอร์ฟีนเรื้อรังส่งผลต่อโครงสร้างและหน้าที่ของแอกซอนด้วยเช่นกัน เนื่องจากความซับซ้อนของภูมิภาคและการส่งสัญญาณในเซลล์ประสาทโดปามีนใน VTA ดังที่กล่าวมาข้างต้น เรากำลังตรวจสอบว่าการเปลี่ยนแปลงโครงสร้างเหล่านี้เกิดขึ้นในกลุ่มย่อยเฉพาะของเซลล์ประสาทโดปามีนใน VTA หรือไม่ โดยใช้สารติดตามย้อนกลับเรืองแสง ข้อมูลเหล่านี้มีความสำคัญอย่างยิ่งต่อการทำความเข้าใจการเปลี่ยนแปลงโครงสร้างและทางสรีรวิทยาไฟฟ้าที่เกิดจากสารโอปิออยด์เรื้อรังและวงจรส่งสัญญาณที่เกี่ยวข้อง
ดังที่กล่าวไว้ก่อนหน้านี้ การศึกษาหลายชิ้น ทั้งในระดับโมเลกุลและทางสรีรวิทยาไฟฟ้า ได้ให้หลักฐานว่าการให้ยาโอปิออยด์เรื้อรังกระตุ้นวิถี cAMP-CREB ใน VTA ( Bonci และ Williams 1997 ; Olson et al. 2005 ; Madhavan et al. 2010 ) นอกจากนี้ การศึกษาไมโครอาร์เรย์ยังได้กำหนดการเปลี่ยนแปลงโดยรวมของการแสดงออกของยีนที่เกิดขึ้นใน VTA เพื่อตอบสนองต่อมอร์ฟีนเรื้อรัง ( McClung et al. 2005 ) ขณะนี้จำเป็นต้องมีการวิจัยเพิ่มเติมเพื่อกำหนดความเฉพาะเจาะจงของเซลล์ในการปรับตัวทางประสาทเหล่านี้ให้ดียิ่งขึ้น รวมถึงระบุผลกระทบต่อการทำงานของมันด้วย ยิ่งไปกว่านั้น ในขณะที่งานวิจัยส่วนใหญ่เกี่ยวกับ VTA มุ่งเน้นไปที่การปรับตัวทางประสาทที่เกิดจากโอปิออยด์ ซึ่งคาดว่าจะเกิดขึ้นในเซลล์ประสาท DA การสำรวจความยืดหยุ่นที่เกิดจากยาซึ่งเกิดขึ้นในเซลล์ประสาท GABAergic ของ VTA ซึ่งเป็นหนึ่งในเป้าหมายเริ่มต้นที่สำคัญของการออกฤทธิ์ของโอปิออยด์ในบริเวณสมองนี้ จึงเป็นสิ่งสำคัญอย่างยิ่ง
ท้องถิ่น COERULEUS
พื้นหลัง
นิวเคลียส LC เป็นแหล่งหลักของเซลล์ประสาทที่มีนอร์เอพิเนฟริน (NE) ในสมอง ( Dahlstrom และ Fuxe 1965 ) ดังที่ได้ทบทวนไว้ก่อนหน้านี้ ( Aston-Jones และ Bloom 1981a ; Aston-Jones et al. 1991b ; Berridge และ Waterhouse 2003 ; Van Bockstaele et al. 2010 ) LC เป็นนิวเคลียสที่แยกตัวออกมา มีขนาดกะทัดรัด และเป็นเนื้อเดียวกัน ประกอบด้วยเซลล์ประสาท NE เกือบทั้งหมด อินพุตหลักของ LC มาจากนิวเคลียสพาราจิแกนโตเซลลูลาริส (PGi) และนิวเคลียสพรีโพซิตัสไฮโปกลอสซัสในไขสันหลัง และเอาต์พุตของ LC กระจายไปทั่วรวมถึงสมองส่วนหน้า สมองน้อย ก้านสมอง และไขสันหลัง ( รูปที่ 1 ) ( Berridge และ Waterhouse 2003 ) กิจกรรมของเซลล์ประสาท LC มีความสอดคล้องกันสูงทั้งในสภาวะปกติและเมื่อตอบสนองต่อสิ่งเร้า ( Foote et al. 1980 ; Aston-Jones and Bloom 1981b ; Aston-Jones et al. 1991a ; Ishimatsu and Williams 1996 ) เซลล์ประสาท LC ทำงานเองได้ ( Williams et al. 1991 ) และการกระตุ้นของเซลล์ประสาทเหล่านี้จะทำให้เกิดการปล่อย NE ในหลายบริเวณของสมองส่วนหน้า รวมถึงคอร์เทกซ์และฮิปโปแคมปัส LC ทำหน้าที่เป็นนิวเคลียสส่งต่อข้อมูลเป็นส่วนใหญ่ โดยมีการเปลี่ยนแปลงของไซแนปส์ที่จำกัดเท่าที่สังเกตได้ในปัจจุบัน แม้ว่าเส้นใยประสาทกลูตาเมตจะควบคุมกิจกรรมของ LC โดยเฉพาะจาก PGi ( Ennis et al. 1992 ) เซลล์ประสาท LC แสดงออกถึงตัวรับโอปิออยด์หลักสามประเภท ได้แก่ MOR, DOR และ KOR ซึ่งมีการกระจายตัวที่แตกต่างกัน อย่างไรก็ตาม เช่นเดียวกับ VTA การอภิปรายของเราจะจำกัดอยู่เฉพาะ MOR ซึ่งเกี่ยวข้องโดยตรงกับการพึ่งพาและการเสพติดโอปิออยด์มากที่สุด
ความเป็นพลาสติก
แม้ว่าจะไม่มีหลักฐานของพลาสติกซินแนปติกแบบดั้งเดิม (เช่น LTP และ LTD) ใน LC แต่ก็มีพลาสติกที่อธิบายไว้อย่างดี คุณสมบัติที่เป็นเอกลักษณ์ของ LC คือการตอบสนองแบบ in vivo จำนวนมากต่อ opiates เรื้อรังสามารถ recapitulated และศึกษาในระดับเซลล์เดียว (เนสท์เล่และคณะ 1994; Nestler และ Aghajanian 1997; Nestler 2004) การผูก opiates (เช่นมอร์ฟีน) กับ MOR นำไปสู่กิจกรรม adenylyl cyclase (AC) ที่ลดลงและการส่งสัญญาณ cAMP (Duman และคณะ 1988) การมีเพศสัมพันธ์แบบเฉียบพลันของ opiates กับ MOR ยังช่วยลดกิจกรรมของเครื่องกระตุ้นหัวใจของ LC เซลล์ประสาทส่วนใหญ่โดยการเปิดใช้งาน G โปรตีน gated gated ภายในแก้ไข+ (GIRK) ช่อง (วิลเลียมส์และคณะ 1982; Torrecilla และคณะ 2002) อย่างไรก็ตามด้วยการบริหารยาเสพติดเรื้อรังทั้งอัตราการยิงและการส่งสัญญาณแคมป์กลับไปสู่พื้นฐานเพราะกฎระเบียบของทางเดินแคมป์แสดงให้เห็นถึงความอดทน (อากาจาเนียน 1978; Duman และคณะ 1988; Nestler และ Tallman 1988; Guitart และ Nestler 1989; Kogan และคณะ 1992; Ivanov และ Aston-Jones 2001) ความเป็นพลาสติกนี้เกิดขึ้นจากการบริหารยาเสพติดเรื้อรัง (เช่นการควบคุมทางเดินของแคมป์) กลายเป็นหน้าที่ในการถอนยาเสพติดเมื่ออัตราการยิงของเซลล์ประสาท LC เพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญพร้อมกับกิจกรรมแคมป์เพิ่มขึ้นอย่างมากมะเดื่อ. 4) (อากาจาเนียน 1978; Rasmussen และคณะ 1990).
การเพิ่มขึ้นของการทำงานของวิถี cAMP ใน LC เป็นกลไกของความทนทานและการพึ่งพาสารโอปิอ อยด์ แผง ด้านบนสารโอปิออยด์ยับยั้งการทำงานของวิถี cAMP อย่างเฉียบพลัน (แสดงโดยระดับ cAMP ในเซลล์และการฟอสโฟรีเลชันของโปรตีนที่ขึ้นอยู่กับ cAMP) เมื่อได้รับสารโอปิออยด์อย่างต่อเนื่อง การทำงานของวิถี cAMP จะค่อยๆ ฟื้นตัว และเพิ่มขึ้นสูงกว่าระดับควบคุมมากหลังจากหยุดใช้สารโอปิออยด์ (เช่น โดยการให้ยาต้านตัวรับโอปิออยด์นาล็อกโซน) การเปลี่ยนแปลงสถานะการทำงานของวิถี cAMP เหล่านี้เกิดขึ้นผ่านการเหนี่ยวนำของอะเดนิลไซเคลส (AC) และโปรตีนไคเนส A (PKA) เพื่อตอบสนองต่อการใช้สารโอปิออยด์เรื้อรัง การเหนี่ยวนำของเอนไซม์เหล่านี้อธิบายถึงการฟื้นตัวอย่างค่อยเป็นค่อยไปของการทำงานของวิถี cAMP ที่เกิดขึ้นระหว่างการได้รับสารโอปิออยด์เรื้อรัง (ความทนทานและการพึ่งพา) และการกระตุ้นวิถี cAMP ที่สังเกตได้เมื่อหยุดใช้สารโอปิออยด์ (อาการถอนยา) แผง ด้านล่างสารโอปิออยด์ยับยั้งเซลล์ประสาท LC อย่างเฉียบพลันโดยการเพิ่มการนำไฟฟ้าของช่อง K + ที่ปรับทิศทางเข้าด้านใน ผ่านการเชื่อมต่อกับชนิดย่อยของ G i/oและอาจลดกระแสไฟฟ้าเข้าด้านในที่ขึ้นอยู่กับ Na +ผ่านการเชื่อมต่อกับ G i/oและการยับยั้ง AC ที่ตามมา ระดับกิจกรรมของ PKA ที่ลดลง และการฟอสฟอริเลชันของช่องหรือปั๊มที่รับผิดชอบที่ลดลง การยับยั้งวิถี cAMP ยังลดการฟอสฟอริเลชันของโปรตีนอื่นๆ อีกมากมาย และส่งผลกระทบต่อกระบวนการทางประสาทอื่นๆ อีกมากมาย ตัวอย่างเช่น มันลดสถานะการฟอสฟอริเลชันของโปรตีนที่จับกับองค์ประกอบการตอบสนอง cAMP (CREB) ซึ่งเป็นตัวเริ่มต้นการเปลี่ยนแปลงระยะยาวบางอย่างในหน้าที่ของ LC การให้มอร์ฟีนเรื้อรังจะเพิ่มระดับของ ACI, ACVIII, หน่วยย่อยเร่งปฏิกิริยา (cat.) และหน่วยย่อยควบคุมของ PKA และโปรตีนฟอสโฟหลายชนิด รวมถึง CREB และไทโรซีนไฮดรอกซิเลส (TH) (แสดงด้วยลูกศรสีแดง) การเปลี่ยนแปลงเหล่านี้มีส่วนทำให้ลักษณะทางฟีโนไทป์ของภาวะติดยาเสพติดเปลี่ยนแปลงไป ตัวอย่างเช่น ความสามารถในการกระตุ้นภายในของเซลล์ประสาท LC เพิ่มขึ้นจากการทำงานที่เพิ่มขึ้นของวิถี cAMP และกระแสไฟฟ้าขาเข้าที่ขึ้นอยู่กับ Na +ซึ่งมีส่วนทำให้เกิดความทนทาน การพึ่งพา และอาการถอนยาที่แสดงโดยเซลล์ประสาทเหล่านี้ การควบคุมระดับของ ACVIII และ TH เกิดขึ้นผ่าน CREB ในขณะที่การควบคุมระดับของ ACI และหน่วยย่อยของ PKA ดูเหมือนจะเกิดขึ้นผ่านกลไกที่ไม่ทราบแน่ชัดและไม่ขึ้นอยู่กับ CREB
การดัดแปลงเหล่านี้จะเป็นสื่อกลางผ่านการควบคุมขึ้นของโปรตีนการส่งสัญญาณหลายอย่างในทางเดินของค่ายรวมทั้ง AC1 / 8 (มัตสึโอกะและคณะ 1994; เลนแลดด์และคณะ 1997; Zachariou และคณะ 2008) โปรตีนไคเนสที่ขึ้นกับแคมป์ (PKA) (Nestler และ Tallman 1988), เคร็บ (Guitart et al. พ.ศ. 1992; Shaw-Lutchman และคณะ 2002; ฮั่นและคณะ 2006) และ TH และ BDNF - ทั้งเป้าหมาย CREB ดาวน์สตรีม (Guitart et al. พ.ศ. 1989; Akbarian และคณะ 2002) ผู้หลับในเรื้อรังยังทำให้เกิดการแสดงออกของ GIRK2 / 3 ใน LC (ครูซและคณะ 2008) เช่นเดียวกับยีนอื่น ๆ อีกมากมายที่เปิดเผยโดยการวิเคราะห์ microarray (McClung และคณะ 2005) ยิ่งไปกว่านั้นเมื่อไม่นานมานี้มีการแสดงโดยใช้แบบจำลองวัฒนธรรมชิ้น LC ว่ากิจกรรมทางไฟฟ้าที่เพิ่มขึ้นของเซลล์ประสาท LC ที่เกิดจาก opiates เรื้อรังเกิดจากการเปิดใช้งานโดยตรงของ MOR บนเซลล์ประสาท LC NE แสดงถึงการดัดแปลง homeostatic ภายใน (เฉาและคณะ 2010) วิธีนี้ระบุถึงบทบาทที่สำคัญสำหรับ CREB ทั้งในกิจกรรมของเครื่องกระตุ้นหัวใจและการเพิ่มขึ้นของมอร์ฟีนจากอัตราการยิง LC (ฮั่นและคณะ 2006; เฉาและคณะ 2010) เอฟเฟกต์ที่พบในหนูที่มีการพัฒนาที่น่าพิศวงในช่วงต้นของ CREB เฉพาะกับเซลล์ประสาท NEParlato และคณะ 2010) ในที่สุดการเปิดใช้งาน LC neuronal firing และทางเดิน cAMP-CREB ที่ได้รับการควบคุมซึ่งไกล่เกลี่ยการยิงที่เพิ่มขึ้นได้แสดงให้เห็นในการศึกษาจำนวนมากที่จำเป็นและเพียงพอที่จะเป็นสื่อกลางในการถอน opiate ทางร่างกายเลนแลดด์และคณะ 1997; Punch และคณะ 1997; ฮั่นและคณะ 2006).
แม้ว่าการเปลี่ยนแปลงทางพลาสติกที่เกิดจากสารโอปิออยด์ส่วนใหญ่ที่อธิบายไว้ในที่นี้จะถูกสันนิษฐานว่าเป็นลักษณะเฉพาะของเซลล์ประสาท LC NE แต่ก็มีหลักฐานบางอย่างที่แสดงว่ามอร์ฟีนเรื้อรังสามารถส่งผลต่ออินพุตกระตุ้นไปยัง LC ได้เช่นกัน เนื่องจากมีการเพิ่มขึ้นของความถี่ EPSC ที่เกิดขึ้นเองในชิ้นเนื้อจากหนูที่ได้รับการรักษาด้วยมอร์ฟีน ( Torrecilla et al. 2008 ) นอกจากนี้ ยังมีการเพิ่มขึ้นของการปล่อยกลูตาเมตและแอสปาร์เทตใน LC ในร่างกายของหนูที่หยุดใช้มอร์ฟีน และการใช้สารต้านกรดอะมิโนกระตุ้นเฉพาะที่ใน LC สามารถยับยั้งการเพิ่มขึ้นของกิจกรรม LC ที่เกิดจากการหยุดใช้มอร์ฟีนได้บางส่วน ( Akaoka and Aston-Jones 1991 ; Aghajanian et al. 1994 )
ยังคงมีข้อถกเถียงอยู่บ้างว่าการเปลี่ยนแปลงของการส่งสัญญาณ cAMP-CREB ในเซลล์ประสาท LC และกิจกรรมของเซลล์ประสาท LC มีส่วนเกี่ยวข้องกับพฤติกรรมการถอนยาโอปิออยด์หรือไม่ ตัวอย่างเช่น การทำลาย LC หรือการกำจัดกิจกรรมของ CREB ในเซลล์ประสาท LC NE ในช่วงพัฒนาการ ไม่สามารถเปลี่ยนแปลงอาการถอนยาได้อย่างเห็นได้ชัด ( Christie et al. 1997 ; Parlato et al. 2010 ) ในทางตรงกันข้าม เราได้แสดงให้เห็นว่าการปรับเปลี่ยนกิจกรรมของเส้นทาง cAMP หรือของ CREB ใน LC ของสัตว์ทดลองที่โตเต็มวัย สามารถยับยั้งพฤติกรรมการถอนยาหลายอย่างได้อย่างสม่ำเสมอ ( Lane-Ladd et al. 1997 ; Punch et al. 1997 ; Han et al. 2006 ) เราเชื่อว่ามีปัจจัยสำคัญหลายประการที่อธิบายถึงผลลัพธ์ที่แตกต่างกันเหล่านี้ ประการแรก LC เป็นเพียงหนึ่งในหลายพื้นที่ของสมองที่มีความสำคัญต่อการพึ่งพายาโอปิออยด์ทางกายภาพและอาการถอนยา ( Koob and Le Moal 2001 ) ไม่น่าแปลกใจที่สัตว์ที่มีรอยโรคใน LC ยังคงพัฒนาการพึ่งพาทางกายภาพอย่างรุนแรงซึ่งเกิดจากการพึ่งพาพื้นฐานทางประสาทอื่นๆ เหล่านี้มากขึ้น ประการที่สอง เป็นไปได้มากว่าเครื่องมือบางอย่างที่ใช้ในการจัดการกิจกรรมของเส้นทาง cAMP ใน LC (เช่น การฉีดสารกระตุ้นหรือสารยับยั้ง PKA เฉพาะที่) จะส่งผลต่อเส้นใยประสาทกลูตาเมตในบริเวณนี้ ซึ่งดูเหมือนว่าจะแสดงการเปลี่ยนแปลงแบบพลาสติก (รวมถึงการควบคุมเส้นทาง cAMP ที่เพิ่มขึ้น) หลังจากได้รับมอร์ฟีนเรื้อรัง ( Nestler 1992 ; Christie et al. 1997 ) ประการที่สาม แม้ว่าเส้นประสาทรับความรู้สึกกลูตาเมตเหล่านี้จะมีบทบาทสำคัญ แต่ก็ไม่มีข้อสงสัยเลยว่าความยืดหยุ่นที่เกิดขึ้นเองภายในเซลล์ประสาท LC NE ก็มีส่วนเกี่ยวข้องด้วยเช่นกัน เพราะการกำจัดยีน CREB ออกจาก LC ในผู้ใหญ่ (ซึ่งไม่สามารถส่งผลกระทบต่อปลายประสาทรับความรู้สึกได้) จะยับยั้งการกระตุ้นที่เพิ่มขึ้นของเซลล์ประสาท LC NE ที่เกิดจากมอร์ฟีนและลดอาการถอนยา ( Cao et al. 2010 ; V Zachariou และ EJ Nestler, ข้อมูลที่ยังไม่ได้ตีพิมพ์) การที่การกำจัดยีน CREB ออกจากเซลล์ประสาทเหล่านี้ไม่มีผลในหนูทดลองแบบน็อกเอาต์แบบมีเงื่อนไข ( Parlato et al. 2010 ) เน้นให้เห็นถึงการชดเชยในระหว่างการพัฒนาที่ทำให้การใช้แบบจำลองน็อกเอาต์ในระยะเริ่มต้นมีความซับซ้อน และเน้นย้ำถึงความสำคัญของการใช้การดัดแปลงยีนในสมองของผู้ใหญ่ที่พัฒนาเต็มที่แล้วเมื่อศึกษาความยืดหยุ่นในผู้ใหญ่
ดังนั้น หลักฐานเชิงทดลองจำนวนมากจึงยืนยันว่าการเพิ่มขึ้นของการทำงานของวิถี cAMP-CREB เป็นกลไกของความยืดหยุ่นแบบโฮมีโอสแตติกภายในในเซลล์ประสาท LC NE ในการพัฒนาการพึ่งพาทางกายภาพของสารโอปิออยด์ นอกจากนี้ยังควรเน้นย้ำถึงความสำคัญทางประวัติศาสตร์ของงานวิจัยเกี่ยวกับ LC เนื่องจาก LC ทำหน้าที่เป็นระบบแบบจำลองสำหรับการทำงานระยะยาวของสารโอปิออยด์ต่อสมอง โดยอิงจากการศึกษา LC ก่อนหน้านี้ การเพิ่มขึ้นของการทำงานของวิถี cAMP-CREB ได้รับการพิสูจน์แล้วว่าเป็นกลไกทั่วไปของการทนต่อสารโอปิออยด์ การพึ่งพา และอาการถอนยาในหลายภูมิภาคของระบบประสาทส่วนกลางและส่วนปลาย และแท้จริงแล้วเป็นหนึ่งในแบบจำลองที่ได้รับการยอมรับมากที่สุดเกี่ยวกับพื้นฐานระดับโมเลกุลของการติดยาเสพติด ( Nestler 2001 , 2004 )
โครงสร้างพลาสติกที่มีโครงสร้างแบบเปิดโล่ง
จนถึงปัจจุบัน ยังไม่มีการอธิบายถึงความยืดหยุ่นเชิงโครงสร้างในเซลล์ประสาท LC ที่ตอบสนองต่อการให้ยาโอปิออยด์เรื้อรัง เรากำลังประเมินว่ามีการเปลี่ยนแปลงขนาดของเซลล์ประสาทเหล่านี้หรือไม่ ซึ่งคล้ายคลึงกับการเปลี่ยนแปลงที่สังเกตได้ในเซลล์ประสาท DA ใน VTAอย่างไรก็ตาม หลักฐานสองประการชี้ให้เห็นว่าการเปลี่ยนแปลงประเภทนี้อาจไม่เกี่ยวข้องกับ LC ประการแรก การขนส่งแอกซอนและระดับโปรตีนนิวโรฟิลาเมนต์ปกติถูกสังเกตพบใน LC หลังจากได้รับมอร์ฟีนเรื้อรัง ซึ่งแตกต่างจาก VTA ( Beitner-Johnson et al. 1992 ; Beitner-Johnson and Nestler 1993 ) ซึ่งบ่งชี้ว่าการสนับสนุนทางโภชนาการของโครงสร้างเซลล์ประสาทอาจไม่ได้รับผลกระทบ ประการที่สอง จากการค้นพบของเราที่ว่าอัตราการยิงที่เพิ่มขึ้นเป็นปัจจัยสำคัญที่ทำให้เกิดการเปลี่ยนแปลงขนาดของเซลล์ประสาท ความแตกต่างระหว่างการควบคุมอัตราการยิงของโอปิออยด์ใน LC และ VTA อาจมีความสำคัญ กล่าวคือ ใน VTA สารโอปิออยด์จะเพิ่มอัตราการยิงของเซลล์ประสาททั้งในชิ้นเนื้อและในร่างกายอย่างเฉียบพลันและเรื้อรัง และเราสังเกตเห็นขนาดของเซลล์ที่ลดลงซึ่งเกิดขึ้นพร้อมกันและเป็นผลมาจากการเพิ่มขึ้นของอัตราการยิงนี้ อัตราที่เพิ่มขึ้นนี้จะกลับสู่ระดับปกติหรือแม้กระทั่งลดลงต่ำกว่าระดับพื้นฐานในสัตว์ที่หยุดใช้สารโอปิออยด์ เนื่องจากมีหลักฐานจากงานวิจัยของเราเอง ( Russo et al. 2007 ) และงานวิจัยอื่นๆ ( Spiga et al. 2003 ) ว่าขนาดของตัวเซลล์ประสาทก็ลดลงในช่วงเวลาต่อมาเมื่ออัตราการยิงลดลง ดังนั้นการเพิ่มขึ้นอย่างต่อเนื่องของอัตราการยิงในช่วงเริ่มต้นอาจมีความสำคัญต่อการเหนี่ยวนำหรือการคงอยู่ของการเปลี่ยนแปลงทางสัณฐานวิทยา ในทางตรงกันข้าม กิจกรรมของเซลล์ประสาท LC จะลดลงอย่างเฉียบพลันเมื่อได้รับมอร์ฟีน กลับคืนสู่ระดับพื้นฐานในร่างกายเมื่อได้รับยาเรื้อรัง และจะเพิ่มขึ้นเหนือระดับปกติเฉพาะเมื่อหยุดใช้สารโอปิออยด์เท่านั้น (การสังเกตการณ์ในร่างกายเหล่านี้แตกต่างจากสิ่งที่เกิดขึ้นในวัฒนธรรมชิ้นส่วนสมอง ซึ่งอัตราการยิงที่เพิ่มขึ้นและการควบคุมการทำงานของเส้นทาง cAMP-CREB เกิดขึ้นในสภาวะที่ได้รับมอร์ฟีนเรื้อรัง [ติดยา] โดยไม่มีอาการถอนยา [ Cao et al. 2010 ]) ข้อพิจารณาเหล่านี้ชี้ให้เห็นว่า ในขณะที่มอร์ฟีนเรื้อรังอาจไม่ทำให้เกิดการเปลี่ยนแปลงในความยืดหยุ่นเชิงโครงสร้างในเซลล์ประสาท LC ในร่างกาย การถอนมอร์ฟีนอาจทำให้เกิดการเปลี่ยนแปลงได้ เพื่อสนับสนุนแนวคิดนี้ ผลลัพธ์จากการศึกษาไมโครอาร์เรย์ของ LC ของเราพบว่ายีนหลายตัวที่เกี่ยวข้องกับการเจริญเติบโตและโครงสร้างของเซลล์ลดลงหรือไม่มีการเปลี่ยนแปลงเมื่อได้รับมอร์ฟีนเรื้อรัง แต่เพิ่มขึ้นเมื่อถอนยา ( McClung et al. 2005 ) เป็นที่ทราบกันดีว่าการลดลงอย่างต่อเนื่องของอัตราการยิงพื้นฐานของเซลล์ประสาท LC ไม่เพียงพอที่จะเปลี่ยนแปลงขนาดของตัวเซลล์ เนื่องจากการกำจัด CREB ในระยะเริ่มต้นจากเซลล์ประสาท LC NE ไม่ได้เปลี่ยนแปลงขนาดของเซลล์ประสาท แต่ลดกิจกรรมพื้นฐานลง ( Parlato et al. 2010 ) อย่างไรก็ตาม เราก็ไม่พบความแตกต่างในขนาดของเซลล์ประสาทโดปามีนใน VTA เมื่อเราเพิ่มการแสดงออกของช่อง K +เพื่อลดอัตราการยิง ( Mazei-Robison et al. 2011 ) ดังนั้นข้อสังเกตของ Parlato et al. จึงไม่ได้ตัดความเป็นไปได้ของการเปลี่ยนแปลงที่เกิดจากการถอนมอร์ฟีนออกไป อย่างไรก็ตาม ควรสังเกตว่ากลไกที่ทำให้เกิดการเปลี่ยนแปลงในอัตราการยิงระหว่างสองบริเวณของสมองนั้นแตกต่างกันมาก โดยมีการเปลี่ยนแปลงในสัญญาณ AKT กระแส GABA Aและการแสดงออกของช่อง K +ที่เกี่ยวข้องกับ VTA และสัญญาณ cAMP-CREB ที่เกี่ยวข้องกับ LC
สรุปข้อสังเกต
ข้อมูลจาก VTA และ LC แสดงให้เห็นถึงการเปลี่ยนแปลงที่ซับซ้อนและสำคัญใน synaptic เซลล์และโครงสร้างพลาสติกที่เป็นสื่อกลางถึงผลกระทบที่ยั่งยืนของยาเสพติดยาเสพติดในเซลล์ประสาท catecholamine ของสมองและเซลล์ประสาทชนิดอื่นในภูมิภาคเหล่านี้ซึ่งส่งผลต่อรางวัลยาและการพึ่งพา . แม้ว่าความเป็นพลาสติกที่รองรับการกระทำ opiate เฉียบพลันในทั้งสองภูมิภาคและการกระทำ opiate เรื้อรังใน LC นั้นมีลักษณะที่ค่อนข้างดีการศึกษาในอนาคตมีความจำเป็นในการวิเคราะห์ plasticity ที่เกิดขึ้นกับการบริหาร opiate เรื้อรังใน VTA ด้วยความแตกต่างที่เห็นในเซลล์หลายชนิด ในรูปแบบอินพุต - เอาท์พุตหลายรูปแบบแม้สำหรับเซลล์ชนิดเดียว ความก้าวหน้าดังกล่าวจะนำไปสู่ความเข้าใจที่ดีขึ้นเกี่ยวกับวิธีการหลับในที่มีอิทธิพลต่อพื้นที่สมองนี้ในการควบคุมรางวัลและติดยาเสพติดในที่สุด ความเข้าใจในเรื่องการปรับตัวในระยะยาวที่เกิดจาก opiates ใน VTA และ LC จะไม่เพียง แต่พัฒนาความรู้เกี่ยวกับสาเหตุของการติดยาเสพติดและการติดยาเสพติด แต่ยังช่วยให้เราอธิบายการรักษาแบบใหม่ได้ด้วย
กิตติกรรมประกาศ
เราขอขอบคุณ AJ Robison และ Jessica Ables สำหรับความช่วยเหลือด้านศิลปะ
เชิงอรรถ
-
บรรณาธิการ: R. Christopher Pierce และ Paul J. Kenny
-
สามารถอ่านมุมมองเพิ่มเติมเกี่ยวกับเรื่องการเสพติดได้ที่www.perspectivesinmedicine.org
- ลิขสิทธิ์© 2012 ห้องปฏิบัติการข่าวฤดูใบไม้ผลิ Cold Spring Harbour; สงวนลิขสิทธิ์
ข้อมูลอ้างอิง
- ↵
- ↵
Aghajanian GK, Kogan JH, Moghaddam B. 1994. การถอน opiate เพิ่มกลูตาเมตและ aspartate efflux ใน locus coeruleus: การศึกษา microdialysis ในร่างกาย สมอง Res 636: 126-130
- ↵
Akaoka H, Aston-Jones G. 1991. การกระตุ้นการถอนตัวออกมามากเกินความจริงของเซลล์ประสาท cousuleus locus coeruleus นั้นเป็นสื่อกลางที่สำคัญโดยการเติมกรดอะมิโนที่กระตุ้นเข้าไป Neurosci J 11: 3830-3839
- ↵
Akbarian S, Rios M, Liu RJ, ทอง SJ, Fong HF, Zeiler S, Coppola V, Tessarollo L, Jones KR, Nestler EJ, et al. 2002. ปัจจัย neurotrophic ที่ได้มาจากสมองเป็นสิ่งจำเป็นสำหรับการปั้นแบบ opiate-induced ของเซลล์ประสาท noradrenergic Neurosci J 22: 4153-4162
- ↵
Aston-Jones G, Bloom FE 1981a กิจกรรมของเซลล์ประสาทที่มี norepinephrine ที่มี locus coeruleus ในพฤติกรรมของหนูคาดหวังความผันผวนในรอบการตื่นนอน Neurosci J 1: 876-886
- ↵
Aston-Jones G, Bloom FE 1981b เซลล์ประสาทที่มี Norepinephrine มี locus coeruleus ในหนูทดลองแสดงการตอบสนองต่อสิ่งเร้าที่ไม่เป็นพิษต่อสิ่งแวดล้อมอย่างเด่นชัด Neurosci J 1: 887-900
- ↵
แอสตัน - โจนส์จี, เชียงซี, อเล็กซินสกี้ต. 1991 การปลดปล่อยของ noradrenergic locus coeruleus เซลล์ประสาทในพฤติกรรมหนูและลิงแสดงบทบาทในการเฝ้าระวัง Prog Brain Res 88: 501-520
- ↵
Aston-Jones G, Shipley MT, Chouvet G, Ennis M, Bockstaele E, Pieribone V, Shiekhattar R, Akaoka H, Drolet G, Astier B, et al. 1991b การควบคุมอวัยวะของเซลล์ประสาท cousuleus: กายวิภาคศาสตร์สรีรวิทยาและเภสัชวิทยา Prog Brain Res 88: 47-75
- ↵
Ballantyne JC, LaForge KS 2007. การพึ่งพาและการเสพติดของ opioid ในระหว่างการรักษาด้วย opioid ของอาการปวดเรื้อรัง อาการเจ็บปวด 129: 235-255
- ↵
Beitner-Johnson D, Nestler EJ 1993 มอร์ฟีนเรื้อรังบั่นทอนการขนส่ง axoplasmic ในระบบโดปามีนหนู mesolimbic Neuroreport 5: 57-60
- ↵
Beitner-Johnson D, Guitart X, Nestler EJ 1992. โปรตีน Neurofilament และระบบโดปามีน mesolimbic: กฎระเบียบร่วมกันของมอร์ฟีนเรื้อรังและโคเคนเรื้อรังในพื้นที่บริเวณหน้าท้องของหนู Neurosci J 12: 2165-2176
- ↵
MT, Hiroi N, Nestler EJ 1996. ระเบียบของ ERK (ไคเนสควบคุม extracellular signal), ส่วนหนึ่งของการถ่ายทอดสัญญาณ neurotrophin, ในระบบโดปามีนหนู mesolimbic หนูจากการสัมผัสเรื้อรังกับมอร์ฟีนหรือโคเคน. Neurosci J 16: 4707-4715
- ↵
Berridge CW, Waterhouse BD 2003. ระบบ locus coeruleus-noradrenergic: การปรับสภาพพฤติกรรมและกระบวนการรับรู้ของรัฐ Brain Res Brain Res Rev 42: 33-84
- ↵
Bolanos CA, Perrotti LI, Edwards S, Eisch AJ, Barrot M, Olson VG, รัสเซล DS, Neve RL, Nestler EJ 2003. Phospholipase Cgamma ในพื้นที่ที่แตกต่างกันของพื้นที่หน้าท้อง ventral tegmental ปรับพฤติกรรมที่เกี่ยวข้องกับอารมณ์ที่แตกต่างกัน Neurosci J 23: 7569-7576
- ↵
Bonci A, Williams JT 1997. เพิ่มโอกาสของการปล่อย GABA ระหว่างการถอนตัวจากมอร์ฟีน Neurosci J 17: 796-803
- ↵
- ↵
Cao JL, Vialou VF, Lobo MK, Robison AJ, Neve RL, Cooper DC, Nestler EJ, Han MH 2010 บทบาทที่สำคัญของการตอบสนองของโปรตีนที่จับกับแคมป์ - แคมป์ในโปรตีนในการปรับตัวแบบ homeostatic ที่เกิดจาก opus-locus coeruleus เซลล์ประสาท Proc Natl Acad Sci 107: 17011-17016
- ↵
Carlezon WA จูเนียร์, Boundy VA, Haile CN, Lane SB, Kalb RG, Neve RL, Nestler EJ 1997. การแพ้ต่อมอร์ฟีนที่เกิดจากการถ่ายโอนยีนของไวรัส วิทยาศาสตร์ 277: 812-814
- ↵
Carlezon WA Jr. , Haile CN, Coppersmith R, Hayashi Y, Malinow R, Neve RL, Nestler EJ 2000 เว็บไซต์ที่แตกต่างของรางวัลยาเสพติดและความเกลียดชังภายในสมองส่วนกลางที่ระบุโดยใช้เวกเตอร์ไวรัสเริมที่แสดง GluR1 Neurosci J 20: RC62
- ↵
เฉิน BT, Bowers MS, Martin M, Hopf FW, Guillory AM, Carelli RM, Chou JK, Bonci A. 2008. โคเคน แต่ไม่ได้รับรางวัลตามธรรมชาติการบริหารตนเองหรือการฉีดโคเคนแบบพาสซีฟสร้าง LTP ใน VTA เซลล์ประสาท 59: 288-297
- ↵
- ↵
Chu NN, Zuo YF, Meng L, Lee DY, Han JS, Cui CL 2007. การกระตุ้นด้วยไฟฟ้าจากอุปกรณ์ต่อพ่วงกลับการลดขนาดของเซลล์และเพิ่มระดับ BDNF ในบริเวณหน้าท้องส่วนล่างในหนูที่ได้รับมอร์ฟีนเรื้อรัง สมอง Res 1182C: 90–98
- ↵
Compton WM, Volkow ND 2006 เพิ่มขึ้นอย่างมากใน opioid ยาแก้ปวดในสหรัฐอเมริกา: ความกังวลและกลยุทธ์ ยาเสพติดแอลกอฮอล์ขึ้นอยู่กับ 81: 103-107
- ↵
ครูซ HG, Berton F, Sollini M, Blanchet C, Pravetoni M, Wickman K, Luscher C. 2008 การขาดงานและช่วยเหลือการถอนตัวของมอร์ฟีนในหนู GIRK / Kir3 Neurosci J 28: 4069-4077
- ↵
Dacher M, Nugent FS 2011a การปรับมอร์ฟีนที่เกิดจาก LTD ที่ GABAergic synapses ในพื้นที่หน้าท้อง Neuropharmacology 61: 1166-1171
- ↵
Dacher M, Nugent FS 2011b หลับในและปั้น Neuropharmacology 61: 1088-1096
- ↵
Dahlstrom A, Fuxe K. 1965 หลักฐานการมีอยู่ของการไหลเวียนของเส้นใยประสาท noradrenaline ในรากหน้าท้องของเส้นประสาทไขสันหลังหนู ประสบการณ์ 21: 409-410
- ↵
Diana M, Pistis M, Muntoni A, Gessa G. 1995 การลดลงอย่างมากของกิจกรรมของเซลล์ประสาทโดปามีนในโดปามีนซิกในมอร์ฟีนถอนตัวออกจากหนู J Pharmacol Exp Ther 272: 781-785
- ↵
Diana M, Muntoni AL, Pistis M, Melis M, Gessa GL 1999. การลดลงอย่างยาวนานในกิจกรรมของเซลล์ประสาทโดปามีน mesolimbic หลังจากการถอนมอร์ฟีน. Eur J Neurosci 11: 1037-1041
- ↵
Di Chiara G, Imperato A. 1988 ยาเสพติดที่ถูกทารุณกรรมโดยมนุษย์จะเพิ่มความเข้มข้นของโดปามีนใน synaptic ในระบบ mesolimbic ของหนูที่เคลื่อนไหวอย่างอิสระ Proc Natl Acad Sci 85: 5274-5278
- ↵
Duman RS, Tallman JF, Nestler EJ 1988. เฉียบพลันและเรื้อรังควบคุมยาเสพติดของ adenylate cyclase ในสมอง: ผลกระทบเฉพาะในสถานที่ coeruleus J Pharmacol Exp Ther 246: 1033-1039
- ↵
เอนนิสเอ็ม, แอสตัน - โจนส์จี, Shiekhattar ร. 1992 การเปิดใช้งานของเซลล์ประสาท coeruleus โดยนิวเคลียส paragigantocellularis หรือกระตุ้นประสาทรับสารพิษ intracoerulear excitatory กรดอะมิโนสารสื่อประสาท สมอง Res 598: 185-195
- ↵
ฟิลด์ HL 2011. ภาวะที่กลืนไม่เข้าคายไม่ออกของแพทย์: ยาแก้ปวดและยาแก้ปวดเรื้อรัง เซลล์ประสาท 69: 591-594
- ↵
- ↵
Foote SL, Aston-Jones G, Bloom FE 1980. แรงกระตุ้นกิจกรรมของเซลล์ประสาท coeruleus ในหนูและลิงตื่นตัวเป็นฟังก์ชั่นของการกระตุ้นประสาทสัมผัสและเร้าอารมณ์ Proc Natl Acad Sci 77: 3033-3037
- ↵
ฟอร์ด CP, Mark GP, Williams JT 2006. คุณสมบัติและการยับยั้ง opioid ของเซลล์ประสาทโดปามีน mesolimbic แตกต่างกันไปตามตำแหน่งเป้าหมาย Neurosci J 26: 2788-2797
- ↵
Geisler S, Derst C, Veh RW, Zahm DS 2007. กลูตามาเตอจิค afferents ของท้องที่ tegmental พื้นที่ในหนู Neurosci J 27: 5730-5743
- ↵
Georges F, Le Moine C, Aston-Jones G. 2006 ไม่มีผลกระทบของมอร์ฟีนต่อเซลล์ประสาทโดปามีนหน้าท้องส่วนล่างในระหว่างการถอนตัว Neurosci J 26: 5720-5726
- ↵
Guitart X, Nestler EJ 1989. การระบุมอร์ฟีน - และวงจรแอมป์ - ควบคุมฟอสโฟโปรตีน (MARPPs) ในสถานที่ coeruleus และภูมิภาคอื่น ๆ ของสมองหนู: การควบคุมโดยมอร์ฟีนเฉียบพลันและเรื้อรัง Neurosci J 9: 4371-4387
- ↵
Guitart X, Thompson MA, Mirante CK, Greenberg ME, Nestler EJ 1992. กฎระเบียบของวงจรการตอบสนองของแอมป์โปรตีนที่จับองค์ประกอบ (CREB) phosphorylation โดยเฉียบพลันและเรื้อรังมอร์ฟีนในหนู locus coeruleus J Neurochem 58: 1168-1171
- ↵
Gysling K, วัง RY 1983. การกระตุ้นด้วยมอร์ฟีนจากเซลล์ประสาท A10 โดปามีนในหนู สมอง Res 277: 119-127
- ↵
Han MH, Bolanos CA, Green TA, Olson VG, Neve RL, Liu RJ, Aghajanian GK, Nestler EJ 2006. บทบาทของโปรตีนที่มีผลผูกพันต่อการตอบสนองของค่ายในคอกหนู ceruleus: การควบคุมกิจกรรมของเซลล์ประสาทและพฤติกรรมการถอนฝิ่น Neurosci J 26: 4624-4629
- ↵
Ishimatsu M, Williams JT 1996. กิจกรรมซิงโครนัสในโลกัสโคเรรูลัสเป็นผลมาจากการปฏิสัมพันธ์ dendritic ในภูมิภาค pericoerulear Neurosci J 16: 5196-5204
- ↵
Ivanov A, Aston-Jones G. 2001. การถอน opiate เฉพาะถิ่นในเซลล์ประสาท coeruleus ในหลอดทดลอง J Neurophysiol 85: 2388-2397
- ↵
Johnson SW, North RA. 1992 Opioids กระตุ้นเซลล์โดปามีนโดยการทำ hyperpolarization Neurosci J 12: 483-488
- ↵
Kogan JH, Nestler EJ, Aghajanian GK 1992. อัตราการยิงฐานของเซลล์ประสาท coeruleus ในสมองที่เพิ่มขึ้นจากหนูที่ต้องพึ่งฝิ่น: สัมพันธ์กับการตอบสนองที่เพิ่มขึ้นถึง 8-Br-cAMP Eur J Pharmacol 211: 47-53
- ↵
คูเจดับบลิว, Mazei-Robison MS, Laplant Q, Dietz DM, เฟอร์กูสัน D, Lobo M, Ohnishi YN, Feng J, Ohnishi YH, Mouzon E, และคณะ บทบาทของ BDNF ใน VTA ในการควบคุมการตอบสนองของโมเลกุลและพฤติกรรมต่อมอร์ฟีน ใน การประชุมประจำปีครั้งที่ 40, ประสาทวิทยาศาสตร์ 2010, # 368.5, สมาคมประสาทวิทยาศาสตร์, วอชิงตันดีซี
- ↵
Koob GF, Le Moal M. 2001. ติดยาเสพติด, dysregulation ของรางวัลและ allostasis Neuropsychopharmacology 24: 97-129
- ↵
Krishnan V, Han MH, Mazei-Robison M, Iniguez SD, Ables JL, Vialou V, Berton O, Ghose S, Covington HE 3., Wiley MD, et al. ปี 2008 การส่งสัญญาณ AKT ภายในพื้นที่หน้าท้องควบคุมการตอบสนองของเซลล์และพฤติกรรมเพื่อกระตุ้นสิ่งเร้า จิตเวช Biol 64: 691-700
- ↵
Kuehn BM 2007. ใบสั่งยา Opioid ทะยาน: เพิ่มการใช้งานที่ถูกกฎหมายเช่นเดียวกับการใช้ในทางที่ผิด JAMA 297: 249-251
- ↵
Lammel S, Hetzel A, Häckel O, Jones I, Liss B, Roeper J. 2008 คุณสมบัติที่เป็นเอกลักษณ์ของเซลล์ประสาท mesoprefrontal ภายในระบบโดปามีน mesocorticolimbic คู่ เซลล์ประสาท 57: 760-773
- ↵
Lammel S, Ion DI, Roeper J, Malenka RC 2011. การปรับเฉพาะเซลล์ประสาทโดปามีนที่ฉายโดยการกระตุ้นจากสิ่งกระตุ้นและให้รางวัล เซลล์ประสาท 70: 855-862
- ↵
Lane DA, Lessard AA, Chan J, Colago EE, Zhou Y, Schlussman SD, Kreek MJ, Pickel VM 2008. การเปลี่ยนแปลงเฉพาะภูมิภาคในการกระจายตัวของเซลล์รับของ AMPA GluR1 subunit ในพื้นที่หน้าท้องหนูหนูหลังจากการจัดการมอร์ฟีนแบบเฉียบพลันหรือเรื้อรัง Neurosci J 28: 9670-9681
- ↵
Lane-Ladd SB, Pineda J, Boundy VA, Pfeuffer T, Krupinski J, Aghajanian GK, Nestler EJ 1997. CREB (โปรตีนที่จับกับองค์ประกอบการตอบสนองของค่าย) ใน locus coeruleus: หลักฐานทางชีวเคมีสรีรวิทยาและพฤติกรรมสำหรับบทบาทในการพึ่งพายาเสพติด Neurosci J 17: 7890-7901
- ↵
Leone P, Pocock D, Wise RA. 1991. การทำงานร่วมกันของมอร์ฟีน - โดปามีน: หน้าท้องมอร์ฟีนเทกาเมนทัลเพิ่มระดับนิวเคลียส accumbens ปล่อยโดปามีน Pharmacol Biochem Behav 39: 469-472
- ↵
Liu Y, Wang Y, Jiang Z, Wan C, Zhou W, Wang Z. 2007 เส้นทางการส่งสัญญาณ kinase ที่ควบคุมด้วยสัญญาณมีส่วนเกี่ยวข้องในการปรับรางวัล mPer1 ที่เกิดจากมอร์ฟีน Neuroscience 146: 265-271
- ↵
Luscher C, Malenka RC 2011. ยา synaptic ปั้นในการติดยา - จากการเปลี่ยนแปลงของโมเลกุลการเปลี่ยนแปลงวงจร เซลล์ประสาท 69: 650-663
- ↵
Madhavan A, He L, Stuber GD, Bonci A, Whistler JL 2010 ไมโคร - Opioid รับ endocytosis ป้องกันการปรับตัวในพื้นที่หน้าท้องการส่งสัญญาณ GABA เกิดขึ้นในระหว่างการถอนมอร์ฟีน naloxone- ตกตะกอน Neurosci J 30: 3276-3286
- ↵
Manchikanti L, Fellows B, Ailinani H, Pampati V. 2010 การใช้การรักษา, การละเมิดและการใช้ opioids แบบ nonmedical: มุมมองสิบปี แพทย์ปวด 13: 401-435
- ↵
Margolis EB, Hjelmstad GO, Bonci A, เขตข้อมูล HL 2003. Kappa-opioid agonists ยับยั้งโดยตรง dopaminergic เซลล์ประสาท midbrain Neurosci J 23: 9981-9986
- ↵
Margolis EB, Lock H, Hjelmstad GO, ฟิลด์ HL 2006. พื้นที่หน้าท้องได้รับการตรวจสอบอีกครั้ง: มีเครื่องหมายสำหรับ electrophysiological สำหรับเซลล์ประสาทโดปามิเนอร์จิคหรือไม่? J Physiol 577: 907-924
- ↵
Margolis EB, Mitchell JM, Ishikawa J, Hjelmstad GO, ทุ่ง HL 2008. เซลล์ประสาทโดปามีนในสมองส่วนกลาง: เป้าหมายการฉายกำหนดระยะเวลาที่อาจเกิดปฏิกิริยาและโดปามีน D (2) การยับยั้งตัวรับ Neurosci J 28: 8908-8913
- ↵
Matsuoka I, Maldonado R, Defer N, Noel F, Hanoune J, Roques BP 1994. การบริหารมอร์ฟีนเรื้อรังทำให้เกิดการเพิ่มขึ้นเฉพาะภูมิภาคของสมองประเภท VIII adenylyl cyclase mRNA Eur J Pharmacol 268: 215-221
- ↵
Mazei-Robison MS, KW JW, Friedman AK, Lansink CS, Robison AJ, Vinish M, Krishnan V, Kim S, Siuta MA, Galli A, et al 2011. บทบาทของการส่งสัญญาณ mTOR และการทำงานของเซลล์ประสาทในการปรับตัวที่เกิดจากมอร์ฟีนในเซลล์ประสาทส่วนปลายพื้นที่หน้าท้องของโดปามีน เซลล์ประสาท 72: 977-990
- ↵
McClung CA, Nestler EJ, Zachariou V. 2005 กฎระเบียบของการแสดงออกของยีนโดยการถอนตัวของมอร์ฟีนเรื้อรังและมอร์ฟีนในโลคัสเซรูลัสและบริเวณหน้าท้อง Neurosci J 25: 6005-6015
- ↵
แนร์ - โรเบิร์ตส์ RG, Chatelain-Badie SD, Benson E, White-Cooper H, Bolam JP, Ungless MA 2008. การประเมิน stereological ของ dopaminergic, GABAergic และ glutamatergic neurons ในบริเวณหน้าท้อง tegmental, substantia นิโกรและ retrorubral ในสนามหนู Neuroscience 152: 1024-1031
- ↵
Nestler EJ 1992. กลไกระดับโมเลกุลของการติดยา Neurosci J 12: 2439-2450
- ↵
Nestler EJ 2001. พื้นฐานเกี่ยวกับโมเลกุลของการขึ้นรูปพลาสติกในระยะยาว Neurosci ธรรมชาติ Rev 2: 119-128
- ↵
Nestler EJ 2004. การทบทวนในอดีต: กลไกระดับโมเลกุลและเซลล์ของการติดยาเสพติดยาเสพติดและโคเคน แนวโน้ม Pharmacol Sci 25: 210-218
- ↵
Nestler EJ, Aghajanian GK 1997. พื้นฐานเกี่ยวกับโมเลกุลและเซลล์ของการเสพติด วิทยาศาสตร์ 278: 58-63
- ↵
Nestler EJ, Tallman JF 1988. การรักษามอร์ฟีนเรื้อรังเพิ่มกิจกรรมโปรตีนไคเนสแอมป์ - ขึ้นอยู่กับวงจรในหนูตั๊กแตน coeruleus Mol Pharmacol 33: 127-132
- ↵
Nestler EJ, Alreja M, Aghajanian GK 1994. กลไกระดับโมเลกุลและระดับเซลล์ของการกระทำยาเสพติด: การศึกษาในหนู locus coeruleus Brain Res Bull 35: 521-528
- ↵
Niehaus JL, Murali M, Kauer JA. 2010 ยาเสพติดของการละเมิดและความเครียดทำให้ LTP ที่ยับยั้ง synapses ในพื้นที่ tegmental หน้าท้อง Eur J Neurosci 32: 108-117
- ↵
Nugent FS, Penick EC, Kauer JA 2007. Opioids ปิดกั้นความสามารถในการยับยั้ง synapses ในระยะยาว ธรรมชาติ 446: 1086-1090
- ↵
Nugent FS, Niehaus JL, Kauer JA 2009. การส่งสัญญาณ PKG และ PKA ใน LTP ที่ GABAergic synapses Neuropsychopharmacology 34: 1829-1842
- ↵
Numan S, Lane-Ladd SB, Zhang L, Lundgren KH, Russell DS, Seroogy KB, Nestler EJ 1998. ระเบียบที่แตกต่างของ mRNAs neurotrophin และ trk ตัวรับในนิวเคลียส catecholaminergic ในระหว่างการรักษาและถอนยาเสพติดเรื้อรัง Neurosci J 18: 10700-10708
- ↵
O'Brien CP 2001. การติดยาเสพติดและการใช้ยาในทางที่ผิด ในกู๊ดแมนและกิลแมนพื้นฐานทางเภสัชวิทยาของการบำบัด (ed. JG Hardman, LE Limbird, AG Gil Gilman), หน้า 621–642 McGraw-Hill, New York
- ↵
Olson VG, Zabetian CP, Bolanos CA, Edwards S, Barrot M, Eisch AJ, Hughes T, DW ตนเอง, Neve RL, Nestler EJ 2005. กฎระเบียบของรางวัลยาเสพติดโดยโปรตีนที่มีผลผูกพันองค์ประกอบการตอบสนองของค่าย: หลักฐานสำหรับอนุภูมิภาคย่อยสองหน้าที่ที่แตกต่างกันของพื้นที่หน้าท้อง Neurosci J 25: 5553-5562
- ↵
Ortiz J, Harris HW, Guitart X, Terwilliger RZ, Haycock JW, Nestler EJ 1995. ไคเนสโปรตีนควบคุมสัญญาณนอกเซลล์ (ERKs) และ ERK ไคเนส (MEK) ในสมอง: การกระจายและการควบคุมระดับภูมิภาคโดยมอร์ฟีนเรื้อรัง Neurosci J 15: 1285-1297
- ↵
Parlato R, Cruz H, Otto C, Murtra P, Parkitna JR, Martin M, Bura SA, Begus-Nahrmann Y, จาก Boh Boh und und Halbach O, Maldonado R, et al. 2010 ผลของการระเหยเฉพาะของเซลล์ชนิดของปัจจัยการถอดรหัสการตอบสนองค่ายในเซลล์ประสาท noradrenergic ในสถานที่ยิง cousuleus และพฤติกรรมการถอนหลังจากการสัมผัสกับมอร์ฟีนเรื้อรัง J Neurochem 115: 563-573
- ↵
Punch L, Self DW, Nestler EJ, Taylor JR 1997. การปรับพฤติกรรมการถอน opiate ตรงข้ามกับ microinfusion ของ kinase โปรตีน A inhibitor vs. activator ใน locus coeruleus หรือ periaqueductal grey Neurosci J 17: 8520-8527
- ↵
Rasmussen K, Beitner-Johnson DB, Krystal JH, Aghajanian GK, Nestler EJ 1990. ยาเสพติดถอนและหนู locus coeruleus: พฤติกรรม electrophysiological และชีวเคมี correlates Neurosci J 10: 2308-2317
- ↵
Robinson TE, Kolb B. 1999 Morphine เปลี่ยนแปลงโครงสร้างของเซลล์ประสาทในนิวเคลียส accumbens และ neocortex ของหนู ไซแนปส์ 33: 160-162
- ↵
Robinson TE, Gorny G, Savage VR, Kolb B. 2002 ผลกระทบที่กว้างขวาง แต่เฉพาะในระดับภูมิภาคของการทดลอง - กับมอร์ฟีนที่บริหารด้วยตนเองต่อกระดูกสันหลังของ dendritic ในนิวเคลียส accumbens, ฮิบโปและหนูนีโอคอร์เท็กซ์ ไซแนปส์ 46: 271-279
- ↵
Russo SJ, Bolanos CA, Theobald DE, DeCarolis NA, Renthal W, Kumar A, Winstanley CA, Renthal NE, Wiley MD, DW ตนเองและคณะ 2007. เส้นทาง IRS2-Akt ในเซลล์ประสาทโดปามีนในสมองส่วนกลางควบคุมการตอบสนองเชิงพฤติกรรมและเซลล์ต่อ opiates Nat Neurosci 10: 93-99
- ↵
Russo SJ, Mazei-Robison MS, Ables JL, Nestler EJ 2009. ปัจจัยประสาทและโครงสร้างพลาสติกในการติดยาเสพติด Neuropharmacology 56 (Suppl 1): 73–82
- ↵
Russo SJ, Dietz DM, Dumitriu D, Morrison JH, Malenka RC, Nestler EJ 2010 The synapse ที่ติดยาเสพติด: กลไกของพลาสติก synaptic และปั้นโครงสร้างในนิวเคลียส accumbens เทรนด์ Neurosci 33: 267-276
- ↵
Saal D, Dong Y, Bonci A, Malenka RC 2003. ยาเสพติดของการละเมิดและความเครียดทำให้เกิดการปรับตัว synaptic ทั่วไปในเซลล์ประสาทโดปามีน เซลล์ประสาท 37: 577-582
- ↵
Sarti F, Borgland SL, Kharazia VN, Bonci A. 2007 การสัมผัสโคเคนแบบเฉียบพลันเปลี่ยนแปลงความหนาแน่นของกระดูกสันหลังและความสามารถในระยะยาวในบริเวณพื้นที่หน้าท้อง Eur J Neurosci 26: 749-756
- ↵
Sesack SR, Grace AA 2010 เครือข่ายรางวัลคอร์ติโก้ - เบส Ganglia: Microcircuitry Neuropsychopharmacology 35: 27-47
- ↵
Shaw-Lutchman TZ, Barrot M, Wallace T, Gilden L, Zachariou V, Impey S, Duman RS, Storm D, Nestler EJ 2002. การทำแผนที่ภูมิภาคและเซลลูล่าร์ของการถอดความการตอบสนองด้วย cAMP ที่ตอบสนองต่อองค์ประกอบระหว่างการถอนมอร์ฟีนจากนัลโตเซโลน Neurosci J 22: 3663-3672
- ↵
Sklair-Tavron L, Shi WX, Lane SB, Harris HW, Bunney BS, Nestler EJ 1996. มอร์ฟีนเรื้อรังทำให้เกิดการเปลี่ยนแปลงที่มองเห็นได้ในสัณฐานวิทยาของเซลล์ประสาทโดปามีน mesolimbic Proc Natl Acad Sci 93: 11202-11207
- ↵
Spiga S, Serra GP, Puddu MC, Foddai M, Diana M. 2003 ความผิดปกติที่เกิดจากการถอนมอร์ฟีนใน VTA: กล้องจุลทรรศน์เลเซอร์สแกน Confocal Eur J Neurosci 17: 605-612
- ↵
สเวนสัน LW 1982. การคาดการณ์ของพื้นที่หน้าท้องและพื้นที่ใกล้เคียง: การรวมตัวติดตามถอยหลังเข้าคลองฟลูออเรสเซนต์และการศึกษาอิมมูโน Brain Res Bull 9: 321-353
- ↵
Torrecilla M, Marker CL, Cintora SC, Stoffel M, วิลเลียมส์ JT, Wickman K. 2002 ช่องโพแทสเซียม G-protein gated ที่ประกอบด้วย Kir3.2 และ Kir3.3 subunits เป็นสื่อกลางในการยับยั้งผลกระทบเฉียบพลันของ opioids ต่อเซลล์ประสาท Cerusus Neurosci J 22: 4328-4334
- ↵
Torrecilla M, Quillinan N, Williams JT, Wickman K. 2008 ระเบียบก่อนและหลังการเคลื่อนที่ของเซลล์ประสาท cousuleus หลังการรักษามอร์ฟีนเรื้อรัง: การศึกษาของหนู GIRK-knockout Eur J Neurosci 28: 618-624
- ↵
- ↵
Williams JT, Egan TM, North RA. 1982 Enkephalin เปิดโพแทสเซียมในเซลล์ประสาทส่วนกลางของสัตว์เลี้ยงลูกด้วยนม ธรรมชาติ 299: 74-77
- ↵
- ↵
Williams JT, Christie MJ, Manzoni O. 2001. การดัดแปลงโทรศัพท์มือถือและ synaptic เป็นสื่อกลางในการพึ่งพา opioid Physiol Rev 81: 299-343
- ↵
Wolf DH, Numan S, Nestler EJ, Russell DS 1999. การควบคุมฟอสโฟไลพิสคัมม่าในระบบโดปามีน mesolimbic โดยการใช้มอร์ฟีนเรื้อรัง J Neurochem 73: 1520-1528
- ↵
Wolf DH, Nestler EJ, Russell DS 2007. กฎระเบียบของเซลล์ประสาท PLC โดยใช้มอร์ฟีนเรื้อรัง สมอง Res 1156: 9-20
- ↵
Zachariou V, Liu R, LaPlant Q, Xiao G, Renthal W, Chan GC, Storm DR, Aghajanian G, Nestler EJ 2008. บทบาทที่โดดเด่นของ adenylyl cyclases 1 และ 8 ในการพึ่งพายาเสพติด: การศึกษาเกี่ยวกับพฤติกรรม, อิเล็กโทรวิทยาและโมเลกุล จิตเวช Biol 63: 1013-1021



