Експресія і розподіл дофамінових рецепторів динамічно змінюються в ядрах щурів щурів після виведення з самоконтролю кокаїну. (2010)

Коментарі: Важкі користувачі порно повідомляють про багато типів симптомів відміни після припинення вживання. Всі вони відчувають тягу. Одужання не є лінійним, оскільки деякі люди можуть рецидивувати або мати тягу через тиждень відновлення. Це дослідження може виявити, чому. Після припинення вживання кокаїну рецептори дофаміну (D2) не повертаються до норми через 45 днів, а рецептори D3 збільшуються - що може призвести до сильної тяги.


абстрактний

Дофамінові рецептори (DARs) в ядрі accumbens (NAc) є критично важливими для дії кокаїну, але характер адаптації функції DAR після багаторазового впливу кокаїну залишається суперечливим. Частково це може бути пов'язано з тим, що різні методи, використовувані в попередніх дослідженнях, вимірювали різні пули DAR. У цьому дослідженні ми використовували аналіз зшивання білка, щоб зробити перші виміри експресії поверхні DAR у NAc щурів, досвідчених у кокаїні. Кількісні та загальні рівні рецепторів також визначали кількісно. Щури самостійно вводили фізіологічний розчин або кокаїн протягом десяти днів. Весь NAc, або ядро ​​та субрегіони оболонки, були зібрані через один або 45 днів, коли, як відомо, щури демонструють низький та високий рівень індукованого києм наркотику відповідно. Ми виявили збільшення DAR D1 клітинної поверхні в оболонці NAc у перший день після припинення самоконтролю кокаїну (призначений день відміни або WD1), але це нормалізувалося WD1. У групі кокаїну спостерігали зниження рівня внутрішньоклітинного та поверхневого DAR DAR. У оболонці обидва показники зменшились на WD45 та WD2. По суті, зниження експресії D1 DAR на поверхні спостерігалося лише на WD45. Подібним чином, WD2, але не WD45, був пов'язаний зі збільшенням експресії DAR D45 на поверхні в ядрі. Беручи до уваги багато інших досліджень, ми припускаємо, що зниження D1 DAR та збільшення експресії D3 DAR на поверхні на WD2 можуть сприяти посиленому пошуку кокаїну після тривалого виведення, хоча це, ймовірно, буде модулюючим ефектом, у світлі раніше продемонстрованого посередницького ефекту для глутаматних рецепторів типу АМРА.

Ключові слова: кокаїн, дофамінові рецептори, nucleus accumbens, рецепторний трафік

Вважається, що зміни в сигналізації дофамінових рецепторів (DAR) сприяють наркоманії (Volkow et al., 2009). Тому багато досліджень досліджували вплив самоконтролю кокаїну та виведення на експресію D1-подібних (D1 та D5) та D2-подібних (D2, D3 та D4) класів DAR в nucleus accumbens (NAc). Дослідження на людях і приматах використовували позитронно-емісійну топографію (ПЕТ) для забезпечення непрямого вимірювання доступних рецепторів клітинної поверхні DAR. У дослідженнях щурів, аналізів зв'язування або пробірці були використані рецептори авторадіографії; ці методи вимірюють DAR в ряді компартментів, включаючи, але не обмежуючись ними, пул клітинної поверхні. Особливо в дослідженнях гризунів результати, як видається, залежать від режиму лікарського засобу і часу проведення експерименту (Андерсон і Пірс, 2005). Однак іншою важливою змінною є використання різних методів, які вимірюють різні пули DAR, у поєднанні з недавно виявленими складностями щодо агрегації DAR, торгівлі та сигналізації. Всі ці фактори ускладнюють вимірювання функціональних видів DAR.

Добре встановлено, що D1-подібні DAR і D2-подібні DAR є позитивно і негативно зв'язані, відповідно, з аденилциклазой, і що кожна сім'я може також впливати на інші каскади сигнальної трансдукції (Lachowicz і Sibley, 1997; Neve et al., 2004). Зовсім недавно було оцінено, що D1, D2 і D3 DAR утворюють димери і комплекси вищого порядку (Lee et al., 2000a; George et al., 2002; Javitch, 2004). Олігомеризація, яка відбувається на ранній стадії біосинтетичного шляху на рівні ендоплазматичного ретикулума, може бути необхідною для націлювання на DAR і інші G-білкові рецептори (GPCR) на клітинну поверхню (Lee et al., 2000b; Bulenger et al., 2005). Олігомери DAR утворені дисульфідними зв'язками, але також взаємодіями гідрофобних трансмембранних доменів, що робить їх частково стійкими до відновлювальних умов і призводять до спостереження мономерних, димерних і олігомерних смуг в дослідженнях Вестерн-блот (наприклад, Lee et al., 2003). DAR також містять змінне число N-пов'язаних сайтів глікозилювання (Missale et al., 1998), які можуть знадобитися для D2 DAR, для торгівлі поверхнею клітин (Free et al., 2007). Глікозилювання D2 DAR сприяє додатковій смузі 70-75kDa, яка зазвичай спостерігається у вестерн-блотах (David et al., 1993; Fishburn et al., 1995; Lee et al., 2000b). Цікаво, що DAR показали, що утворюють гетеро-олігомери між різними підтипами DAR і з іншими GPCR і не-GPCRs; шляхом активації DAR в межах цих мультимерних комплексів, агоністи DA можуть активувати сигнальні шляхи, які відрізняються або змінюються за величиною від тих, які пов'язані з окремими DAR (наприклад, Rocheville et al., 2000; Ginés et al., 2000; Scarselli et al., 2001; Lee et al., 2004; Fiorentini et al., 2003; 2008; Marcellino et al., 2008; So et al., 2009).

У абстинентних користувачів кокаїну, уразливість до рецидиву часто збільшується після гострої стадії відміни лікарського засобу (Гавін і Клебер, 1986; Kosten et al., 2005). Аналогічне явище спостерігалося після відміни самостійного застосування кокаїну з розширеним доступом у щурів (Neisewander et al., 2000; Grimm et al., 2001; Lu et al., 2004a, b; Conrad et al., 2008). Ці дослідження показали, що індукований києм наркотичний пошук збільшується між першим і першим днем ​​припинення препарату, а потім повертається до базової лінії до 90 місяців. Фаза зростання називається "інкубацією". Метою цього дослідження було визначити, чи супроводжується інкубація cue-індукованої кокаїну прагненням зміни в рівнях D6, D1 або D2 DAR в NAc. З метою селективного вимірювання змін у функціональному пулі DAR, вираженого на клітинній поверхні, ми адаптували аналіз зшивання білка, який використовувалися раніше нашими лабораторіями для вимірювання експресії клітинної поверхні рецептора глутамата після лікування in vivo (Boudreau і Wolf, 2005; Boudreau et al., 2007; 2009; Conrad et al., 2008; Nelson et al., 2009; Ferrario et al., 2010). Використовуючи цей аналіз, поверхневі, внутрішньоклітинні і загальні рівні DAR визначали в аликвотах тканини NAc, отриманих у щурів або 1 день, або 45 днів після припинення прийому кокаїну з розширеним доступом або самостійного введення сольового розчину.

ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНІ ПРОЦЕДУРИ

Тварини і поведінкові процедури

Експерименти були проведені відповідно до Настанов Національного інституту здоров'я для догляду та використання лабораторних тварин (публікації NIH № 80-23; переглянуті 1996) і були схвалені нашим Комітетом з догляду за тваринами та їх використанням. Були зроблені всі зусилля для мінімізації кількості використовуваних тварин і їхніх страждань. Дане дослідження проаналізувало розподіл DAR в аликвотах тканини NAc, отриманих з тих самих щурів, які раніше використовувалися для демонстрації інкубації тяги кокаїну та пов'язаних з цим змін експресії субодиниць рецепторів α-аміно-3-гідрокси-5-метилізоксазол-XNУМХ-пропіонат (АМРА). після 4 днів виведення з кокаїнуConrad et al., 2008). Тканини не були доступні для всіх щурів, які використовувалися в нашому попередньому дослідженні, з урахуванням деяких відмінностей у значеннях N. Використовували дві когорти щурів. Весь NAc (ядро + оболонка) розсікали в першому, тоді як ядро ​​і оболонку розсікали окремо у другому. У цих дослідженнях використовувалися самці щурів Sprague Dawley (Harlan, Indianapolis, IN), що зважували 250-275g після прибуття і розміщувалися індивідуально на зворотному циклі світла-темряви 12h / 12h (висвітлюються в 0900 годинах). Процедури хірургії та навчання самоврядування описані раніше (Conrad et al., 2008). Коротко, щурам дозволяли самостійно вводити кокаїн або сольовий розчин протягом 10 днів (6h / день) в камерах самоврядування (MED Associates, St. Albans, VT) в звукопоглинальних шафах. Ніс-тикання в активній лунці здійснюється інфузією сольового розчину або кокаїну (0.5 мг / кг / 100μL над 3s), в поєднанні з дискретним світловим сигналом 30-s всередині носової дірки. Ніс, що тикає в неактивній лунці, не мав ніяких наслідків. Період тайм-ауту 10s використовувався протягом першої години або для перших інфузій 10 (який з них стався першим) і поширювався на 30s протягом решти часу, щоб запобігти передозуванню кокаїну. Щури, які самостійно вводили кокаїн, в середньому вводили інфузії 120 кожен день (~ 60mg / кг / день), тоді як щури, які самостійно вводили сольовий розчин, усереднювали інфузії 20 кожен день (дані не показані). Їжа та вода були присутні у всі часи. Після припинення прийому сольового розчину або кокаїну щурів повертали до домашніх клітин протягом 1 або 45 днів до отримання тканини NAc для дослідження зшивання білків (див. Наступний розділ). Таким чином, були сформовані чотири експериментальні групи: фізіологічні щури, вбиті на день виведення 1 (WD1-Sal), кокаїнові щури, вбиті на WD1 (WD1-Coc), фізіологічні щури, вбиті на WD45 (WD45-Sal) і кокаїнові щури, убиті на WD45 (WD45). -Coc). Термін "WD" означає просто кількість днів, коли лікарський засіб не було доступним, і не передбачає набір фізіологічних симптомів, що виникають в результаті припинення прийому хронічних препаратів.

Білок зшивання

Цей метод детально описаний раніше (Boudreau і Wolf, 2005; Ferrario et al., 2010). Щурів обезголовлювали, їх мізки швидко видаляли, і весь NAc (або субрегіони ядра і оболонки) розсікали на льоду з коронального розтину 2mm, отриманого з використанням матриці мозку. Всю тканину NAc негайно подрібнювали на зрізи 400μm, використовуючи м'ясорубка тканини McIllwain (Vibratome, St. Louis, MO), тоді як менші ядра і субрегіони оболонки рубали вручну за допомогою скальпеля. Потім тканину додавали в пробірки Еппендорфа, що містять крижаний штучний CSF з шихтою 2 mM біс (сульфосукцинимидил) субератом (BS3; Pierce Biotechnology, Рокфорд, штат Іллінойс). Реакції зшивання давали можливість протікати протягом 30 хв при 4 ° C при дрібному перемішуванні і потім припиняли додаванням гліцину 100mM (10 хв при 4 ° C). Тканини осаджують шляхом короткого центрифугування, повторно суспендують у крижаному лізисному буфері, що містить інгібітори протеази і фосфатази, сонитируют за 5 сек і знову центрифугують. Аликвоти супернатанту зберігали при -80 ° C до аналізу за допомогою вестерн-блот.

Вестерн-блот-аналіз DAR в зшитих тканинах

Зразки (загальний білок / лізат 20-30μg) електрофорезували на гелях 4-15% Tris-HCl (Biorad, Hercules, CA). Білки переносили на мембрани полівініліденфториду для імуноблотінгу з використанням постійного струму (1.15mA) для 1.5 h. Для запобігання надмірного нагрівання використовувалася охолоджувальна котушка. Повна передача високомолекулярних агрегатів була підтверджена фарбуванням гелів після перенесення з Кумасси синім. Крім того, ми перевірили, що зшиті білки DAR не були виявлені в гелі для укладання (дані не показані). Після перенесення мембрани промивали в ddH2О, сушили на повітрі протягом 1 год при кімнатній температурі (RT), повторно гідратували 100% MeOH, промивали буферним розчином 1x Tris (TBS) і занурювали в 0.1M NaOH, pH 10 для 15 хв при RT. Потім їх промивали в TBS, блокували 3% бичачим сироватковим альбуміном (Sigma – Aldrich, St. Louis, MO) в TBS-Tween-20 (TBS-T), рН 7.4, протягом 1 год при RT і інкубували протягом ночі при 4 ° C з антитілами, що розпізнають D1 DAR (1: 1000; Millipore; Cat # AB1765P), D2 DAR (1: 1000; Millipore, Billercia, CA; Cat # AB5084P) і D3 DAR (1: 1000; Millipore; Cat # AB1786P). D4 і D5 DAR не аналізували через відсутність антитіл, які розпізнавали як зшиті, так і внутрішньоклітинні рецептори. Слід зазначити, що партії антитіл DAR, використані в цих експериментах, були придбані в 2005-06; поточні партії цих антитіл (2009-10) показують різні структури смужок, які не змінюються в тканини з DAR нокаутних мишей (неопубліковані спостереження). Після первинної інкубації антитіл, мембрани промивали розчином TBS-T, інкубували протягом 60 хв з HRP-кон'югованим анти-кролячим IgG або анти-мишачим IgG (1: 10,000; біотехнологія Upstate, Lake Placid, NY), промивали TBS- Т, промивають ddH2O, і занурюють в хемілюмінесцентний детекторний субстрат (Amersham GE, Piscataway, NJ). Після того, як були розроблені плями, зображення були зняті за допомогою програмного забезпечення візуалізації Versa Doc (Bio-Rad). Дифузні щільності поверхневих і внутрішньоклітинних смуг визначалися за допомогою програмного забезпечення Quantity One (Bio-Rad). Значення для поверхневого, внутрішньоклітинного і загального (поверхневого + внутрішньоклітинного) рівнів білка нормалізувалися до загального білка в доріжці, визначеному за допомогою Ponceau S (Sigma-Aldrich) і проаналізовані за допомогою TotalLab (Nonlinear Dynamics, Newcastle, UK). Поверхневе / внутрішньоклітинне співвідношення не вимагало нормалізації, оскільки обидві значення визначаються в одній смузі. Для вивчення специфічності антитіл були проведені дослідження переабсорбції антитіл DAR з використанням пептиду, що використовується для генерування кожного антитіла. Антитіло D1, D2 або D3 DAR об'єднували з 10-кратною надлишковою концентрацією пептиду в 500μl TBS, змішували протягом 4 год при 4 ° C, розбавляли до кінцевого об'єму 20ml, додавали до мембрани і інкубували протягом ночі при 4 ° C.

Аналіз даних

Дані аналізували, використовуючи SPSS з ANOVA, використовуючи вплив наркотиків (сольовий розчин проти кокаїну) та день виведення препарату (WD1 проти WD45) як факторів між суб’єктами, після чого проводився пост-хок тест Тукі. Значимість була встановлена ​​на рівні р <0.05.

РЕЗУЛЬТАТИ

DAR-аналіз з BS3 аналіз зшивання

Метою даного дослідження було проаналізувати клітинну поверхню і загальну експресію D1, D2 і D3 DAR в аликвотах тканини NAc, отриманих після припинення самоконтролю кокаїну (ХНУМХ год / день протягом 6 днів). Як описано в Методах, групи розроблені WD10 або WD1, щоб вказати кількість днів, проведених у домашніх клітинах без доступу до кокаїну до аналізу DAR. Тканина NAc з тих же щурів раніше використовувалася для демонстрації того, що формування рецепторів АМРА, відсутніх у GluR45, лежить в основі експресії інкубованого cue-індукованого потягу кокаїну у підданих кокаїну щурам на WD2 (Conrad et al., 2008). Для оцінки розподілу DAR ми використовували ту ж BS3 аналіз зшивання використовували раніше для дослідження розподілу рецепторів АМРА. BS3 являє собою мембранний непроникний білок зшиваючий агент і тому селективно зшиває білки клітинної поверхні, утворюючи агрегати з високою молекулярною масою. Внутрішньоклітинні білки не модифіковані. Таким чином, поверхневі та внутрішньоклітинні пули конкретного білка можна виділити за допомогою електрофорезу SDS-поліакриламідного гелю та вестерн-блот (Boudreau і Wolf, 2005; Boudreau et al., 2007; 2009; Conrad et al., 2008; Nelson et al., 2009; Ferrario et al., 2010). На додаток до кількісного визначення рівнів поверхневого та внутрішньоклітинного білка, ми використовували суму поверхневих та внутрішньоклітинних рівнів як міру загального рецепторного білка та поверхневого / внутрішньоклітинного співвідношення як міру розподілу рецепторів.

Рис. 1 ілюструє спосіб шляхом порівняння зшитого (X) і незшитого (Non) тканинного зонду для кожного DAR. Поверхневі смуги присутні тільки після зшивання. Внутрішньоклітинні смуги зменшуються в зшитих тканинах порівняно з рівною кількістю незшитої тканини, оскільки в першій частині поверхнева експресія загального пулу рецепторів тепер присутня в смузі поверхні. Відповідно, загальний рівень білків DAR в незшитих смугах приблизно дорівнює сумі значень S і I у зшитій смузі (див. Легенду до Рис. 1; та ж еквівалентність спостерігалася у всіх інших експериментах). Слід зазначити, що хоча BS3 забезпечує точний показник відносної різниці S / I співвідношень між експериментальними групами, абсолютний рівень S / I, який вимірюється, залежить від умов експерименту і антитіла. Наприклад, розглянемо два білки A і B, які подібно розподілені між S та I відділеннями. Якщо антитіло до А розпізнає свою зшиту форму менш пишно, ніж немодифікована (внутрішньоклітинна) форма, тоді як антитіло до В визнає обидві форми однаково добре, виміряне відношення S / I буде меншим для А, ніж В, навіть якщо частка кожного білка на поверхня насправді однакова.

Рис. 1

Вимірювання експресії поверхні DAR з використанням аналізу зшивання білка і демонстрації імуноспецифічності шляхом преабсорбції антитіл DAR пептидами, що використовуються для підняття кожного антитіла

Для DARN D1 і D3 ми кількісно визначили одну внутрішньоклітинну та одну поверхню (1a, c). Для D2 DAR були виявлені три внутрішньоклітинні смуги. Відповідно до інших досліджень (наприклад, Fishburn et al., 1995; Kim et al., 2008), ми ідентифікували ці смуги як мономерні (~ 55kDa), глікозильовані (~ 75kDa) і димерні (~ 100kDa) D2 DAR (1b). Також була виявлена ​​смуга поверхні. Всі три внутрішньоклітинні види сприяли поверхнево-експресованому пулу D2 DAR на основі зниженої інтенсивності всіх трьох внутрішньоклітинних смуг в зшитих тканинах щодо не-зшитого контролю. Всі три внутрішньоклітинні смуги D2 DAR були підсумовані для генерування внутрішньоклітинного значення, що використовується для визначення загального рівня D2 DAR (поверхневий + внутрішньоклітинний) і D2 DAR поверхневого / внутрішньоклітинного співвідношення. Також була виявлена ​​слабка смуга на ~ 200kDa, але його імунореактивність була занадто низькою для кількісного визначення (1b). Дослідження, проведені з пептидами, що використовуються для генерування кожного антитіла, показали імуноспецифічність всіх смуг, кількісно визначених у наших експериментах, включаючи поверхневі смуги (1d, e, f). Крім того, спостережувані структури смуг були подібні до тих, які були виявлені в попередніх дослідженнях імуноблотингу з використанням тих же антитіл (наприклад Huang et al., 1992 - D1 DAR; Boundy et al., 1993a - D2 DAR; Boundy et al., 1993b - D3 DAR), і імуногістохімічні дослідження з цими антитілами виявили очікуваний анатомічний розподіл для D1 DAR (Huang et al., 1992) і D2 DAR (Boundy et al., 1993a; Ван і Пікель, 2002; Паспалас і Голдман-Ракіч, 2004; Пінто і Сесак, 2008).

D1 DAR

На WD45 не було виявлено істотних відмінностей між кокаїном і сольовими групами. Однак ефекти самоврядування кокаїну були очевидні на WD1. Аналіз всього NAc показав значно більш високе D1 DAR поверхневе / внутрішньоклітинне співвідношення в групі WD1-Coc порівняно з групами, які самостійно вводили фізіологічний розчин (Рис. 2a). Це пояснювалося скромним збільшенням DAR на поверхні D1 у поєднанні зі скромним зниженням внутрішньоклітинних D1 DAR (жоден з цих двох останніх ефектів не був статистично значущим), за відсутності будь-якої зміни в загальному рівні D1 DAR (поверхня + внутрішньоклітинний) (Рис. 2a). У ядрі NAc жодного значущого ефекту не було виявлено для будь-якої міри D1 DAR (2b). Однак оболонка NAc відображала зміни, які були подібні до тих, що спостерігалися у всій NAc, але трохи більш надійною (Рис. 2c). Співвідношення поверхневий / внутрішньоклітинний D1 DAR збільшувалося в групі WD1-Coc за рахунок значного збільшення експресії D1 DAR на поверхні. Внутрішньоклітинні рівні були незмінними, але спостерігалася тенденція до збільшення загального рівня D1 DAR. Таким чином, більша частина білка D1 DAR експресувалася поверхнево в оболонці NAc щурів WD1-Coc порівняно з щурами WD1-Sal. Розподіл D1 DAR повернувся до контрольного стану після 45 днів виведення з кокаїну.

Рис. 2

Експресія поверхні D1 DAR збільшувалася в оболонці NAc після 1 дня виведення з кокаїну

D2 DAR

В усьому NAc основним спостережуваним ефектом було зниження експресії D2 DAR у щурів, які самостійно вводили кокаїн у порівнянні з контролем сольового розчину (Рис. 3a). Це було найбільш яскраво виражено на WD45, коли спостерігалося зниження в поверхневій смузі, всіх трьох внутрішньоклітинних смугах (~ 55, 75 і 100kDa) і в загальному рівні D2 DAR у порівнянні з контролем сольового розчину. Коефіцієнт поверхневого / внутрішньоклітинного D2 DAR був трохи, але значно збільшився у групі WD45-Coc, що пояснюється більшим зниженням DARS в D2, що вказує на те, що клітини компенсують зниження експресії D2 DAR, розподіляючи більшу частину доступних D2 DAR на поверхню. Важливо мати на увазі, що підвищений поверхневий / внутрішньоклітинний коефіцієнт не передбачає збільшення передачі D2 DAR в даному конкретному випадку, оскільки абсолютний рівень поверхнево-виражених D2 DARs був знижений. У групі WD1-Coc єдиним значущим ефектом було зниження внутрішньоклітинних рівнів D2 DAR-мономеру (~ 55kDa) порівняно з групами WD45-Sal і WD1-Sal, хоча деякі інші заходи також мали тенденцію до зниження (Рис. 3a).

Рис. 3

Внутрішньоклітинні і поверхневі рівні D2 DAR в NAc були знижені після 45 днів виведення з кокаїну

Загальне зниження експресії D2 DAR було також видно в основних і оболонкових субрегіонах NAc (3b і 3cвідповідно), хоча ефекти мали тенденцію бути більш вираженими в оболонці. Таким чином, поверхневі рівні D2 DAR знижувалися у кокаїнових щурів тільки на WD45 в ядрі, але на WD1 і WD45 в оболонці. Усього D2 DARs значно зменшився тільки в оболонці. Зниження внутрішньоклітинних смуг D2 DAR відбувалося в обидва дні виведення як в ядрі, так і в оболонці, хоча були відмінні відмінні відміни і області, в яких внутрішньоклітинна смуга показала статистично значущий ефект. Підсумовуючи, рівень D2 DAR і внутрішньоклітинний білок знижувалися в NAc після кокаїну. Деякі зниження вже були помітні WD1.

D3 DAR

Значні зміни в розподілі D3 DAR не спостерігалися на WD1 після самоконтролю кокаїну, але розроблені WD45. У межах всього NAc, група WD45-Coc мала більш високий D3 DAR поверхневий / внутрішньоклітинний коефіцієнт, ніж всі інші групи, що пояснюється поєднанням помірного збільшення поверхневих рівнів і скромним зниженням внутрішньоклітинних рівнів (жоден ефект не був значним); загальна кількість DAR D3 DAR не змінилася (Рис. 4a).

Рис. 4

Експресія поверхні D3 DAR була підвищена в NAc після 45 днів виведення з самоконтролю кокаїну

Ядро NAc показало подібні, але більш виражені зміни. Таким чином, група WD45-Coc мала більш високі поверхневі рівні D3 DAR у порівнянні з усіма іншими групами, що призвело до більш високого співвідношення поверхня / внутрішньоклітинний (4b). У оболонці NAc єдиною істотною зміною відносно контролю сольового розчину було збільшення D3 DAR поверхневого / внутрішньоклітинного співвідношення (Рис. 4c). В обох основних і оболонкових рівнях загальний білок D3 DAR був вищим у WD45-Coc порівняно з щурами WD1-Coc (4b, c). Функціонально найважливішою зміною, ймовірно, є збільшення вираження поверхні D3 DAR в NAc на WD45, ефект, який був найбільш очевидний в основному субрегіоні.

ОБГОВОРЕННЯ

Ми проаналізували поверхневі D1, D2 і D3 DAR і внутрішньоклітинні рівні в NAc щурів на WD1 або WD45 після припинення самостійного застосування кокаїну з розширеним доступом. Хоча результати поведінки не представлені тут, ми раніше показали, що щури, які піддавалися цьому кокаїновому режиму, виявляють інкубацію індукованої cue кокаїнової спраги на WD45 (Conrad et al., 2008). Крім того, показали, що ті ж самі щури, що піддавалися впливу кокаїну, використовувані для отримання аналізованої тут тканини NAc, демонструють підвищені рівні клітинної поверхні GluR1 на WD45, що свідчить про утворення АМРА-рецепторів, які відсутні в GluR2, що супроводжує інкубацію cue-індукованої кокаїну (Conrad et al., 2008). Роль DAR в інкубації раніше не вивчалася. Крім того, наше дослідження є першим для вимірювання поверхнево-виражених DAR в будь-якій моделі тваринного наркоманії. Як описано нижче, хоча всі три досліджені DAR показали зміни, що залежать від часу після припинення самоконтролю кокаїну, ми припускаємо, що залежне від часу зменшення експресії поверхні D2 DAR і збільшення експресії поверхні D3 DAR в ядрі NAc, швидше за все, сприятиме інкубація кокаїну, викликаного києм.

Окрім спостережень за часом, ми спостерігали різні зміни DAR в основних і оболонкових субрегіонах. Ядро втягується в моторну реакцію на умовні підсилювачі, тоді як оболонка більше бере участь в обробці інформації, пов'язаної з посилюючими ефектами психостимуляторів (Ito et al., 2000; 2004; Rodd-Henricks et al., 2002; Ikemoto, 2003; Fuchs et al., 2004; Ikemoto et al., 2005). Відповідно до цього, ядро ​​є важливою частиною нейронної схеми, яка лежить в основі інкубації кокаїну, що викликається києм (Conrad et al., 2008). Це свідчить про те, що адаптації DAR в ядрі частіше пов'язані з інкубацією. Однак слід мати на увазі, що ядро ​​і оболонку не можна розглядати в ізоляції, оскільки вони взаємодіють у складі спіральних анатомічних петель, що зв'язують коркові, лімбічні та базальні ганглії (Хабер, 2003). Крім того, ці петлі спираються на безліч передавачів на додаток до DA, таких як глутамат. Маючи на увазі взаємодію між ядром і оболонкою і роль декількох передавальних систем, це може допомогти пояснити деякі очевидні розбіжності у літературі з оболонками. Наприклад, дослідження функціональної інактивації вказують на ядро, але не на оболонку в відновлення кокаїну та індукованого киємMcFarland і Kalivas, 2001; Fuchs et al., 2004). Проте, як буде більш детально розглянуто нижче, як оболонка, так і медіальне ядро ​​(але не латеральне ядро) залучені до регуляції DAR для відновлення кокаїном (Anderson et al., 2003; 2008; Bachtell et al., 2005; Шмідт і Пірс, 2006; Schmidt et al., 2006).

Ми обмежили наш огляд літератури, зосередивши увагу на адаптації DAR після самоконтролю за кокаїном, а не на неконтингентне лікування кокаїном (для огляду останньої теми див. Pierce і Kalivas, 1997; Андерсон і Пірс, 2005). Аналогічно, ми зосередилися на дослідженнях, які використовують внутрішньо-NAc-ін'єкцію DAR-підтипів-селективних препаратів, а не системне введення препарату (наприклад, Self et al., 1996; De Vries et al., 1999). Однак цікаво відзначити, що залежні від часу зміни у відповіді на системні агоністи DA були виявлені після припинення самоконтролю кокаїну (De Vries et al., 2002; Едвардс та ін., 2007). Ці зміни можуть бути пов'язані зі змінами експресії DAR, описаними тут, або вони можуть відображати зміни функції DAR в інших областях мозку.

Вираз поверхні D1 DAR тимчасово збільшується в оболонці NAc після припинення прийому кокаїну

Після самостійного введення кокаїну, експресія поверхні D1 DAR збільшувалася в оболонці NAc на WD1, але нормалізувалася за допомогою WD45, тоді як в ядрі не спостерігалося ніяких змін, що вказує на перехідний приріст, обмежений оболонкою. Аналогічні результати були отримані в попередніх дослідженнях з використанням авторадіографії рецепторів. Бен-Шахар та ін. (2007) виявили підвищену щільність D1 DAR в оболонці NAc щурів 20 min (але не 14 або 60 днів) після припинення прийому кокаїну з розширеним доступом (6 hr / day), тоді як ніяких змін не спостерігалося в ядрі або після кокаїну -адміністрація (2 hr / день). Nader et al. (2002) спостерігається невелике збільшення щільності D1 DAR в оболонці, але не ядра мавп-резусів, убитих після останнього сеансу самоуправління кокаїном 100. Мавпи, які оцінювали 30 днів після припинення дії тієї ж схеми, показали підвищену щільність D1 DAR в ростральних NAc і в обох ядрах і оболонках на більш каудальних рівнях, але D1 DAR нормалізувалася на 90 днів (Беверидж та ін., 2009). Всі ці результати, як і наші, вказують на тимчасове підвищення рівня D1 DAR, особливо в оболонці, після припинення прийому кокаїну. Однак попереднє дослідження цієї групи свідчило про зниження щільності D1 DAR у NAc (найбільш стійкому в оболонці) макак-резусів, які самостійно вводили кокаїн протягом набагато більш тривалого періоду часу (18 місяців; Moore et al., 1998a). Зниження зв'язування D1 DAR в NAc також було виявлено 18 год після припинення розширеного режиму доступу у щурів, хоча загальне споживання кокаїну в цьому дослідженні було вище, ніж у дослідженнях щурів, обговорених вище (De Montis та ін., 1998). Ці результати показують, що адаптації D1 DAR залежать від багатьох аспектів впливу кокаїну. Ще одне розгляд полягає в тому, що авторадіографія рецепторів вимірює загальні клітинні рецептори, тоді як наші експерименти зшивання білків можуть розрізняти поверхневі та внутрішньоклітинні рецептори. Цікаво, що дослідження иммуноблоттинга виявило тенденцію до підвищення рівня D1 DAR в NAc користувачів кокаїну людини (Worsley та ін., 2000).

Чи є тимчасове збільшення експресії D1 DAR на поверхні, що ми спостерігали в оболонці NAc, важливим для інкубації індукованої cue кокаїну? Це важко оцінити, оскільки жодні дослідження не перевірили вплив внутрішньо-NAc-ін'єкції D1 DAR-агоністів або антагоністів на індукований cue кокаїном після виведення домашньої клітини (або індукованого cue-відновлення кокаїну, що шукається після екстинкційного навчання). Проте рецептори D1 в медіальному NAc (оболонка і медіальне ядро) причетні до відновлення кокаїну з кокаїном після вимирання, очевидно, через механізм, який вимагає спільної активації D1 і D2 DAR (Anderson et al., 2003; 2008; Bachtell et al., 2005; Шмідт і Пірс, 2006; Schmidt et al., 2006). Разом з нашими результатами, це може свідчити про те, що нейрони в оболонці NAc більш чутливі до D1 DAR-опосередкованого кокаїну, який шукає в ранньому виведенні через перехідну регуляцію D1R. Проте слід застосовувати обережність для екстраполяції від відновлення до інкубаційних досліджень, оскільки навчання вимирання та виведення з клітини пов'язані з різними нейроадаптаціями в NAc (Саттон та ін., 2003; Ghasemzadeh et al., 2009; Вольф і Ферраріо, 2010). Важливо відзначити, що D1 DAR в базолатеральній амигдалі і префронтальній корі також важливі для індукованого києм відновлення кокаїну (наприклад, Ciccocioppo et al., 2001; Alleweireldt et al., 2006; Berglind et al., 2006).

На клітинному рівні, як пресинаптичні, так і постсинаптичні DAR можуть модулювати збудливість середніх колючих нейронів, переважний тип клітин і вихідний нейрон NAc (Nicola et al., 2000; O'Donnell, 2003). Відомо, що повторне введення неконтингентного кокаїну посилює деякі ефекти активації D1 DAR в NAc. Таким чином, за один день до одного місяця після припинення лікування кокаїном, по всій NAc спостерігалася підвищена здатність D1 DAR-агоністів пригнічувати активність середніх колючих нейронів (керованих ионофоретическим глутаматом).Генрі і Білий, 1991; 1995). Тим не менш, збільшене вираження поверхні D1 DAR, описане тут, навряд чи пояснить ці попередні результати, оскільки воно обмежено оболонкою і було продемонстровано тільки на WD1. Через добу після прийому кокаїну вводили 10-14 днів після припинення повторних ін'єкцій кокаїну, Бееррі і Малека (2002) спостерігали посилення DA-опосередкованого інгібування збудливих синаптичних відповідей у ​​колючих нейронах NAc середовища, яке, очевидно, було опосередковано пресинаптичними D1-подібними DAR на терміналах глутаматного нерва. Однак можливі ефекти ін'єкції, що викликає (наприклад, див Boudreau et al., 2007 та Kourrich et al., 2007), у поєднанні з відмінностями видів і відсутністю записів в ядрі, ускладнюють порівняння їхніх висновків з нашими. Слід також зазначити, що агоністи і антагоністи DAR використовуються Генрі і Білий (1991; 1995) та Бееррі і Маленка (2002) не розрізняли DARS D1 і D5.

Рівні D2 DAR зменшуються в NAc після припинення прийому кокаїну

Основним ефектом, що спостерігається в нашому дослідженні, було зниження D2 DAR білка як в ядрі NAc, так і в оболонці після припинення самоконтролю кокаїну, порівняно з контролем сольового розчину. Це було більш вираженим в оболонці, де внутрішньоклітинні, поверхневі та загальні смуги зменшувалися як на WD1, так і на WD45. У ядрі експресія поверхні D2 DAR зменшувалася тільки на WD45, а загальний рівень D2 DAR не зменшувався значно. Ряд інших досліджень також виявили зниження експресії D2 DAR після припинення прийому кокаїну. У макак-резусів з великим досвідом самоконтролю кокаїну щільність D2 DAR, виміряна за допомогою авторадіографії рецепторів, зменшувалася в багатьох полосках, включаючи ядро ​​NAc і оболонку, коли тканина була отримана відразу після останнього сеансу (Moore et al., 1998b; Nader et al., 2002). Використовуючи PET, цей ефект у базальних гангліях був виявлений протягом тижня 1 з початку самонаведення кокаїну (Nader et al., 2006). Швидкість, з якої рівень D2 DAR відновлюється під час скасування, може залежати від загального споживання кокаїну. У авторадіографічному дослідженні рівні D2 DAR в NAc відновилися до контрольних значень після 30 або 90 днів виведення з сеансів 100 самоконтролю кокаїну (Беверидж та ін., 2009). Однак у дослідженні PET мавп з більш тривалою експозицією (рік 1) і, таким чином, більшим загальним споживання кокаїну, 3 мавп 5 показав відновлення рівнів D2 DAR після 90 днів, у той час як мавпи 2 не показали відновлення навіть після 12 місяців (Nader et al., 2006). В цілому, ці результати добре збігаються з нашими висновками про зниження рівня D2 DAR в ході виведення.

Дослідження PET у кокаїнових наркоманів також виявили зниження рівня D2 DAR у багатьох стриатильних регіонах, включаючи вентральний стриатум, які були очевидні при ранньому знятті, а також після місяців дезінтоксикації 3-4 (Volkow et al., 1990, 1993, 1997). Однак значення для поведінки неясне, оскільки наявність D2 DAR не корелює з позитивними суб'єктивними ефектами кокаїну або з рішенням приймати більше кокаїну після дозування (Martinez et al., 2004). Важливо зауважити, що в той час, коли інфекційна тяга до кокаїну свідчить про залежне від часу збільшення під час виведення ("інкубація"), це не відбувається для кокаїну, прагнучого до кокаїну (Lu et al., 2004a). Тому результати Росії Martinez et al. (2004) Залишається відкритою можливість того, що D2 DAR доступність може корелювати з кой-індукованим пошуком кокаїну, фокусом інкубаційної моделі, що вивчається в цьому документі. Низька наявність D2 DAR у користувачів кокаїну людини корелює зі зменшенням метаболізму фронтального кори (Volkow et al., 1993). Поряд з іншими змінами, це може сприяти втраті контролю, що виникає, коли наркомани піддаються наркотикам або наркотичним речовинам, а також підвищенню вираженості наркотиків порівняно з винагородами, що не є наркотиками (Volkow et al., 2007; Volkow et al., 2009). Слід зазначити, що зниження рівня D2 DAR у дослідженні PET може свідчити про підвищений рівень вивільнення DA, ніж про зниження рівня D2 DAR, але останні результати підтверджують це пояснення у випадку хворих на кокаїн (Martinez et al., 2009). Більше того, післясмертне дослідження користувачів кокаїну людини виявило тенденцію до зниження рівня D2 DAR в NAc з використанням імуноблотінгу (Worsley та ін., 2000).

Дослідження кокаїнових наркоманів не можуть визначити, чи знижена доступність D2 DAR є сприятливою ознакою або результатом впливу кокаїну, але інші результати вказують на те, що обидві є вірними. З одного боку, експерименти з людьми, що не зловживають наркотиками, виявили зворотну кореляцію між доступністю D2 DAR і повідомленнями про «уподобання щодо наркотиків» при введенні метилфенидата (Volkow et al., 1999; 2002). Ці дані свідчать про те, що низька доступність D2 DAR може підвищити вразливість до залежності. Аналогічний висновок підтверджується дослідженнями в макаках-резусах. У мавпах, які перебувають у соціальному житті, досягнення соціального домінування збільшує наявність D2 DAR у стриатумі, і це пов'язано з більш низькою чутливістю до посилюючих ефектів кокаїну порівняно з підлеглими мавпами (Morgan et al., 2002). Соціальний статус також корелює з наявністю стриарної D2 DAR у вільних від наркотиків людях добровольців (Martinez et al., 2010). З іншого боку, як дослідження ПЕТ, так і авторадіографії за рецепторами показують, що довготривале самоврядування кокаїну зменшує наявність рецепторів стриктурного D2 DAR у індивідуально розташованих мавпах, як обговорювалося вище (Moore et al., 1998b; Nader et al., 2002; Nader et al., 2006). Схоже, що самостійне застосування хронічного кокаїну знижує наявність D2 DAR у домінуючих мавпах, які перебувають у соціальному житті (Czoty et al., 2004). Таким чином, після тривалого самостійного введення кокаїну, більше не було значних відмінностей у наявності або посиленні ефектів D2 рецепторів між кокаїном і домінуючими мавпами (Czoty et al., 2004). Однак підвищений рівень DAR DAR відновлювався у домінантних мавп під час абстиненції, і це корелювало з більшою затримкою у відповідь на новинку, що є ознакою, яка передбачає зниження чутливості до посилюючих ефектів кокаїну (Czoty et al., 2010).

Як і у людей, і у мавп, дослідження щурів показують, що низька доступність D2 DAR є фактором ризику вразливості кокаїну. Таким чином, дослідження ПЕТ на щурах з високою імпульсивністю (ознака, пов'язане з підвищенням самоконтролю кокаїну) показують знижену наявність D2 / D3 DAR у вентральному стриатумі (Dalley et al., 2007). Рівні D2 DAR в NAc також знижуються у щурів, які демонструють високий локомоторний відповідь на новизну, іншу ознаку, пов'язану з вразливістю до наркоманії (Hooks et al., 1994). Наші результати у щурів свідчать про те, що зниження рівнів D2 DAR в NAc також може бути наслідком повторного впливу кокаїну, що відповідає дослідженням у мавп і людей (вище). Однак у двох рецепторних авторадиографических дослідженнях у щурів знайдені результати, які відрізняються від наших. Бен-Шахар та ін. (2007) не спостерігали зниження рівнів D2 DAR в NAc після відміни (20 хв, 14 днів 60 днів) від режиму самостійного застосування кокаїну з розширеним доступом, аналогічного нашому (6 ч / добу), хоча зниження спостерігалося в оболонці NAc після режиму обмеженого доступу (2 год / день) і 14 днів виходу (Ben-Shahar et al., 2007). Stéfanski et al. (2007) не виявив змін у рівнях D2 DAR у ядрі або оболонці 24 h після припинення самостійного застосування кокаїну з обмеженим доступом (ХНУМХ / год), хоча рівні D2 DAR зменшували контрольні показники кокаїну. Як зазначалося вище, рецептори авторадіографії вимірюють загальні клітинні рецептори, тоді як дослідження ПЕТ і зшивання білків вимірюють рецептори клітинної поверхні.

В цілому, дослідження взаємозв'язку між рівнями D2 DAR і кокаїном самостійного застосування підтримують модель, в якій D2 DAR зазвичай обмежує самоконтроль кокаїну. Таким чином, ми припускаємо, що знижені рівні D2 DAR, що спостерігаються в наших експериментах, можуть сприяти кокаїну, який викликається києм після скасування кокаїну. Зокрема, той факт, що поверхнева експресія D2 DAR в ядрі NAc зменшувалася на WD45, але не на WD1, у поєднанні з ключовою роллю для ядра NAc в індукованому cue кокаїном, дозволяє припустити, що залежне від часу D2 DAR регулювання в ядрі NAc може сприяти посиленню у часі інтенсифікації кокаїну. Це передбачає, що внутрішньо-NAc-вливання агоніста D2 під час відміни зменшить кокаїн, який викликається києм. На жаль, жодне дослідження не вивчало вплив інтра-NAc D2 DAR в інкубаційної моделі. З іншого боку, дослідження відновлення кокаїну з урахуванням кокаїну вказують на те, що D1 і D2 DAR в оболонці і медіальному ядрі співпрацюють з метою сприяння пошуку кокаїну (Anderson et al., 2003; Bachtell et al., 2005; Шмідт і Пірс, 2006; Schmidt et al., 2006). Виходячи з цих висновків, зниження експресії D2 DAR, що спостерігається в наших експериментах, може передбачати зменшення пошуку кокаїну, тобто виробляти ефект, протилежний від інтенсифікації, що залежить від відміни, що насправді спостерігається. Ця невідповідність може відображати проблеми, введені шляхом узагальнення від відновлення кокаїну після приготування після екстинкції до кокаїну, викликаного києм після скасування.

Залежне від часу збільшення експресії поверхні D3 DAR відбувається в ядрі NAc після припинення прийому кокаїну

Дослідження препаратів, що віддають перевагу D3 DAR, в парадигмах самостійного застосування та відновлення кокаїну дозволяють припустити, що антагоністи D3 DAR можуть бути корисні при лікуванні кокаїнової залежності та, зокрема, у зниженні реактивності до асоційованих з кокаїном сигналів (Heidbreder et al., 2005; 2008; Le Foll et al., 2005; Сі і Гарднер, 2007). Ці результати вказують на те, що активація D3 DAR ендогенним DA може бути залучена в опосередковування індукованого cue кокаїну. Наші результати показують, що експресія поверхні D3 DAR в ядрі NAc залишається незмінною на WD1 з самостійного застосування кокаїну з розширеним доступом, але збільшується на WD45 у зв'язку з інкубацією кокаїну. Вираз D3 DAR на поверхні не збільшувався значно в оболонці, хоча спостерігалося невелике, але значне збільшення поверхневого / внутрішньоклітинного співвідношення. Враховуючи роль передачі D3 DAR у відповідь на асоційовані з кокаїном сигнали і важливість ядра для кокаїну, що викликається києм, спокушається припустити, що підвищена експресія D3 DAR в ядрі NAc сприяла інкубації кокаїну. тяга, що спостерігається на WD45. Проте невральний сайт, на якому антагоністи D3 DAR діють для зниження кількості кокаїну, не встановлено. Зокрема, жодне дослідження не вивчало вплив внутрішньо-NAc-ін'єкції D3 DAR, що віддає перевагу лікарським засобам на кокаїн. У іншій моделі Schmidt et al. (2006) виявили, що ін'єкція D3-переважного агоніста PD 128,907 в ядро ​​або оболонку не призводила до відновлення кокаїну, що шукається після екстинкційного навчання.

Наші результати, як правило, узгоджуються з дослідженнями авторадіографії рецепторів, які вимірювали загальні рівні D3 DAR в NAc після впливу кокаїну. Staley and Mash (1996) повідомили, що зв'язування D3 DAR було вищим у NAc жертв передозування кокаїну в порівнянні з контролем за віком. Після впливу кокаїну в парадигмі кондиційного місця і трьох днів зняття, миші демонстрували збільшення зв'язування D3 DAR в ядрі NAc і оболонці (Le Foll et al., 2002). Neisewander et al. (2004) вимірювали зв'язування D3 DAR у щурів з великим досвідом самоконтролю кокаїну, які були протестовані на відновлення кокаїном після різних періодів абстиненції, а потім позбулися 24 h. D3 DAR зв'язування в NAc було незмінним на WD1, але збільшилося після більш тривалого часу (WD31-32), що відповідає нашому спостереженню залежного від часу збільшення. Крім того, лікування наркотиками під час відміни, яке знижувало пошук кокаїну, також послаблювало збільшення зв'язування D3 DAR, що свідчить про те, що регуляція D3 DAR функціонально пов'язана з пошуком кокаїну. Слід зазначити, що D3 DAR збільшується в Neisewander et al. (2004) були значними в ядрі, тоді як в оболонці спостерігалися лише тенденції, але субрегіони були проаналізовані в ростральній частині NAc, де ядро ​​і оболонка менш чіткі. Наш аналіз проводили на ядрі і оболонці з ростральних і каудальних ділянок NAc.

Контрастні зміни DARN D1, D2 і D3 після самостійного застосування кокаїну

Важливі відмінності в торгівлі людьми та внутрішньоклітинному сортуванні різних підтипів DAR можуть допомогти пояснити наше спостереження, що рівні D2 DAR зменшуються на WD45 після самоконтролю кокаїну, тоді як рівні D1 DAR не змінюються. Після гострого впливу на агоніст DA всі DAR присвоїли внутрішню терапію, але D1 DAR швидко рециркулювали на поверхню, в той час як D2 DAR призначалися для деградації (Bartlett et al., 2005). Якщо це відбувається після тривалого впливу підвищених рівнів DA під час самоконтролю кокаїну, це може допомогти пояснити наші результати тимчасового збільшення вираження D1 DAR, але більш стійке зниження вираження D2 DAR. Накопичення D3 DAR може бути пов'язано з меншою індукованою агоністом інтерналізацією порівняно з D2 DAR (Kim et al., 2001). Звичайно, необхідна обережність у екстраполяції від відповідей DAR в експрес-системах після короткочасного лікування агоністами до їх відповідей у ​​дорослих нейронах після тривалого лікування та відміни кокаїну.

Висновки

Ми провели перше дослідження експресії поверхні DAR після відміни від повторного впливу кокаїну, використовуючи парадигму самоврядування кокаїну, що призводить до інкубації кокаїну. Вираз поверхні D1 DAR збільшився в оболонці NAc на WD1, але нормалізувався за допомогою WD45. Внутрішньоклітинні рівні D2 DAR зменшилися в ядрі NAc і оболонці в обох випадках виведення. Тим не менш, в той час як вираження поверхні D2 DAR також зменшувалося в оболонці в обох випадках виведення, ядро ​​показало зменшення вираження поверхні D2 DAR на WD45, але не WD1. Індуковані кокаїном зміни в поверхні D3 DAR і загальній експресії в ядрі також залежали від часу; обидва заходи були збільшені на WD45, але не на WD1. Функціональні наслідки цих змін є складними для прогнозування. Однак, виходячи з обговорюваної вище літератури, включаючи результати, що демонструють більш важливу роль для ядра, ніж оболонка при індукованому cue кокаїні, ми припускаємо, що залежне від часу зниження D2 DAR клітинної поверхні і збільшення клітинної поверхні D3 DAR в NAc ядро може сприяти інкубації шуканого кокаїну. Однак ці ефекти, ймовірно, будуть модулюючими в світлі «опосередковує» ролі рецепторів АМРА, які відсутні в NAc GluR2, для експресії інкубованого індукованого cue-кокаїну (Conrad et al., 2008).

Подяки

Ця робота була підтримана DA009621, DA00453 і нагородами NARSAD заслуженого дослідника MEW, DA020654 до MM, а також докторською нагородою National Research Service DA021488 для KLC

СКОРОЧЕННЯ

АМРА
α-аміно-3-гідрокси-5-метилізоксазол-4-пропіонат
BS3
біс (сульфосукцинимидил) суберат
DAR
Допаміновий рецептор
Кок
кокаїн
GPCR
G-білок, пов'язаний з рецептором
NAc
Nucleus accumbens
ПЕТ
топографія позитронної емісії
RT
кімнатна температура
Сел
солончак
SDS
Додецилсульфат натрію
TBS
Тризний буферний розчин (TBS)
TBS-T
TBS-Tween-20
WD1
День відкликання 1
WD45
День відкликання 45

Виноски

Заява видавця: Це PDF-файл неозброєного рукопису, який був прийнятий до публікації. Як послугу нашим клієнтам ми надаємо цю ранню версію рукопису. Рукопис буде підданий копіюванню, набору тексту та перегляду отриманого доказу до його опублікування в остаточній формі. Зверніть увагу, що під час виробничого процесу можуть бути виявлені помилки, які можуть вплинути на вміст, і всі правові застереження, які стосуються журналу, стосуються.

Посилання

  • Alleweireldt AT, Хоббс RJ, Тейлор AR, Neisewander JL. Ефекти SCH-23390, що вводяться в мигдалину або сусідні кори головного мозку і базальні ганглії на пошук кокаїну і самостійне введення у щурів. Neuropsychopharmacology. 2006;31: 363-374. [PubMed]
  • Андерсон С.М., Барі А.А., Пірс Р.С. Введення D1-подібного антагоніста рецептора дофаміну SCH-23390 в оболонку медіального ядра accumbens послаблює індуковане кокаїном відновлення індукованої поведінки у щурів. Психофармакологія (Берл) 2003;168: 132-138. [PubMed]
  • Anderson SM, Famous KR, Sadri-Vakili G, Кумарезан В., Шмідт HD, Bass CE, Terwilliger EF, Cha JH, Pierce RC. CaMKII: біохімічний міст, що зв'язує акумуленти дофамінових і глутаматних систем у пошуках кокаїну. Nat Neurosci. 2008;11: 344-353. [PubMed]
  • Андерсон С.М., Пірс Р.С. Індуковані кокаїном зміни в сигналізації дофамінових рецепторів: наслідки для посилення та відновлення. Pharmacol і Ther. 2005;106: 389-403. [PubMed]
  • Bachtell Р.К., Whisler K, Karanian D, Self DW. Вплив внутрішньоядерних оболонок на введення агоністів і антагоністів допаміну на кокаїнову та кокаїнову поведінку у щурів. Психофармакологія (Берл) 2005;183: 41-53. [PubMed]
  • Бартлетт SE, Enquist J, Хопф FW, Лі JH, Gladher F, Харація V, Waldhoer M, Mailliard WS, Армстронг R, Bonci, Whistler JL. Реакція допаміну регулюється шляхом цільового сортування рецепторів D2. Proc Natl Acad Sci США. 2005;102: 11521-11526. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • Бен-Шахар О, Келі П, Кук М, Тормоз W, Джойс М, Ніфелер М, Хестон Р, Еттенберг А. Зміни в рівнях рецепторів D1, D2 або NMDA під час відмови від короткого або розширеного щоденного доступу до IV кокаїну. Мозок Рес. 2007;1131: 220-228. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • Berglind WJ, Case JM, Паркер М.П., ​​Фукс Р.А., Див. Антагонізм дофамінових рецепторів D1 або D2 в базолатеральній мигдалині диференційно змінює придбання асоціацій кокаїну, необхідних для індукованого києм відновлення кокаїну. Неврологія. 2006;137: 699-706. [PubMed]
  • Beurrier C, Маленка РК. Посилене інгібування синаптичної передачі дофаміном в nucleus accumbens під час поведінкової сенсибілізації до кокаїну. J Neurosci. 2002;22: 5817-5822. [PubMed]
  • Beveridge TJ, Сміт HR, Надер М.А., Porrino LJ. Утримання від хронічного самоврядування кокаїну змінює стриатинові дофамінові системи у макак-резусів. Neuropsychopharmacology. 2009;34: 1162-1171. [PubMed]
  • Boudreau AC, Ferrario CR, Glucksman MJ, Wolf ME. Адаптації сигнального шляху і нові субстрати протеїнкінази А, пов'язані з поведінковою сенсибілізацією до кокаїну. J Neurochem. 2009;110: 363-377. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • Boudreau AC, Reimers JM, Milovanovic M, Wolf ME. АМРА-рецептори клітинної поверхні в ядрах щурів збільшуються під час виведення кокаїну, але засвоюються після виклику кокаїну у зв'язку з зміною активації мітоген-активованих протеїнкіназ. J Neurosci. 2007;27: 10621-10635. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • Boudreau AC, Wolf ME. Поведінкова сенсибілізація до кокаїну пов'язана з підвищеною експресією поверхні рецептора АМРА у ядрі accumbens. J Neurosci. 2005;25: 9144-9151. [PubMed]
  • Бунді В.А., Лудтке Р.Р., Артимишин Р.П., Фільц Т.М., Молінфов П.Б. Розробка поліклональних антитіл дофамінових рецепторів D2 з використанням пептидів, специфічних для послідовностей. Mol Pharmacol. 1993a;43: 666-676. [PubMed]
  • Boundy VA, Luedtke RR, Gallitano AL, Smith JE, Filtz TM, Kallen RG, Molinoff PB. Експресія і характеристика рецептора дофаміну D3 щура: фармакологічні властивості і розвиток антитіл. J фармакологічної та експериментальної терапії. 1993b;264: 1002-1011. [PubMed]
  • Bulenger S, Marullo S, Bouvier M. Виникаюча роль гомо- і гетеродимеризации в біосинтезі і дозріванні рецепторів G-білка. Trends Pharmacol Sci. 2005;26: 131-137. [PubMed]
  • Ciccocioppo R, Sanna PP, Weiss F. Кокаїн-прогностичний стимул індукує медикаментозну поведінку і нервову активацію в лімбічних областях мозку після декількох місяців абстиненції: розворот антагоністами D (1). Proc Natl Acad Sci США. 2001;98: 1976-1981. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • Конрад К.Л., Ценг KY, Uejima JL, Реймерс Дж. М., Хенг LJ, Шахам Y, Марінеллі М., Вовк ME. Формування акумульованих рецепторів АМРА GluR2 опосередковує інкубацію кокаїнової тяги. Природа. 2008;454: 118-121. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • Czoty PW, Gage HD, Надер М.А. Відмінності в доступності і реакції дофамінових рецепторів D2 на новинку в соціально розташованих чоловічих мавпах під час утримання від кокаїну. Psychopharmacol Epub. 2010 Jan 13;
  • Czoty PW, Morgan D, Шеннон Е.Е., Gage HD, Nader MA. Характеристика дофамінових рецепторів D1 і D2 в соціально розміщених мавпах, що самоконтролюють кокаїн. Психофармакологія (Берл) 2004;174: 381-388. [PubMed]
  • Даллі JW, Фрайер TD, Brichard L, Робінсон ES, Теобальд Д., Лаане К, Пена Y, Мерфі Е.Р., Шах Я, Пробст К, Абакумова І., Айгбірхіо Ф.І., Річардс Х.К. . Рецептори Nucleus accumbens D2 / 3 прогнозують імпульсивність і підсилення кокаїну. Наука. 2007;315: 1267-1270. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • David C, Fishburn CS, Monsma FJ, Jr., Sibley DR, Fuchs S. Синтез і обробка дофамінових рецепторів D2. Biochem. 1993;32: 8179-8183. [PubMed]
  • De Montis G, Co C, Дворкін С.І., Smith JE. Модифікації рецептора дофаміну D1 комплексу у щурів, що самостійно вводять кокаїн. Eur J Pharmacol. 1998;362: 9-15. [PubMed]
  • De Vries TJ, Шоффельмер А.Н., Binnekade R, Raaso H, Vanderschuren LJ. Рецидив до дії кокаїну та героїну, опосередкованого рецепторами дофаміну D2, залежить від часу і пов'язаний з поведінковою сенсибілізацією. Neuropsychopharmacology. 2002;26: 18-26. [PubMed]
  • De Vries TJ, Шоффельмер А.Н., Binnekade R, Vanderschuren LJ. Допамінергічні механізми, що опосередковують стимул до пошуку кокаїну та героїну після тривалого відміни самостійного застосування препарату IV. Психофармакологія (Берл) 1999;143: 254-260. [PubMed]
  • Edwards S, Whisler KN, Фуллер DC, Orsulak PJ, Self DW. Зміни, пов'язані з наркоманією, в поведінкових реакціях дофамінових рецепторів D1 і D2 після хронічного самоврядування кокаїну. Neuropsychopharmacology. 2007;32: 354-366. [PubMed]
  • Ферраріо ЧР, Лі Х, Ван Х, Реймерс Дж. Роль перерозподілу рецепторів глутамату в руховій сенсибілізації до кокаїну. Neuropsychopharmacology. 2010;35: 818-833. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • Fiorentini C, Busi C, Gorruso E, Gotti C, Spano P, Missale C. Реципрокная регуляція функцій рецептора дофаміну D1 і D3 і торгівля шляхом гетеродимеризации. Mol Pharmacol. 2008;74: 59-69. [PubMed]
  • Fiorentini C, Gardoni F, Spano P, Di Luca M, Missale C. Регуляція торгівлі рецепторами дофаміну D1 і десенсибілізація шляхом олігомеризації з рецепторами глутамат N-метил-D-аспартату. J Biol Chem. 2003;278: 20196-20202. [PubMed]
  • Fishburn CS, Elazar Z, Fuchs S. Диференціальна глікозилювання та внутрішньоклітинний трафік для довгих і коротких ізоформ D2 рецептора дофаміну. J Biol Chem. 1995;270: 29819-29824. [PubMed]
  • Вільний RB, Hazelwood LA, Cabrera DM, Spalding HN, Namkung Y, Rankin ML, Sibley DR. Експресія дофамінових рецепторів D1 і D2 регулюється безпосередньою взаємодією з белком шаперона calnexin. J Biol Chem. 2007;282: 21285-21300. [PubMed]
  • Фукс РА, Еванс К.А., Паркер М.С., Див. Диференціальне залучення основних і оболонкових субрегіонів nucleus accumbens в обумовлене ки-індукованим відновленням пошуку кокаїну у щурів. Психофармакологія (Берл) 2004;176: 459-465. [PubMed]
  • Gawin FH, Kleber HD. Симптоматика абстиненції та психіатричний діагноз при вживанні кокаїну. Клінічні спостереження. Arch Gen Psychiatry. 1986;43: 107-113. [PubMed]
  • Джордж СР, О'Дауд Б.Ф., Лі СП. Олігомеризація рецепторів, пов'язаних з G-білками, та його потенціал для відкриття лікарських засобів. Nat Rev Drug. 2002;1: 808-820. [PubMed]
  • Ghasemzadeh MB, Vasudevan P, Мюллер C, Seubert C, Mantsch JR. Регіональні специфічні зміни в експресії рецептора глутамату і субклеточного розподілу після вимирання самоконтролю кокаїну. Мозок Рес. 2009;1267: 89-102.
  • Ginés S, Hillion J, Torvinen M, Le Crom S, Касадо V, Канела Е.І., Рондін S, Лью JY, Watson S, Zoli M, Agnati LF, Verniera P, Lluis C, Ферре S, Fuxe K, Франко Р. Дофамін D1 і рецептори A1 аденозину утворюють функціонально взаємодіючі гетеромерні комплекси. Proc Natl Acad Sci США. 2000;97: 8606-8611. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • Grimm JW, Hope BT, Wise RA, Shaham Y. Neuroadaptation. Інкубація потягу кокаїну після відміни. Природа. 2001;412: 141-142. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • Haber SN. Примат базальних гангліїв: паралельні та інтегративні мережі. J Chem Neuroanat. 2003;26: 317-330. [PubMed]
  • Heidbreder C. Селективний антагонізм до рецепторів дофаміну D3 як мішень для фармакотерапії наркоманії: огляд доклінічних доказів. ЦНС Нейрол Disord мети наркотиків. 2008;7: 410-421. [PubMed]
  • Heidbreder CA, Gardner EL, Xi ZX, Thanos PK, Mugnaini M, Hagan JJ, Ashby CR., Jr. Роль центральних дофамінових рецепторів D3 у наркоманії: огляд фармакологічних доказів. Brain Res Brain Res Rev. 2005;49: 77-105. [PubMed]
  • Генрі DJ, Білий FJ. Повторне введення кокаїну викликає стійке посилення чутливості дофамінових рецепторів D1 в межах ядра щура щура. J фармакологічної та експериментальної терапії. 1991;258: 882-890. [PubMed]
  • Генрі DJ, Білий FJ. Стійкість поведінкової сенсибілізації до кокаїну паралельно посилює інгібування нейронів nucleus accumbens. J Neurosci. 1995;15: 6287-6299. [PubMed]
  • Гачки MS, Juncos JL, юстиція JB, молодший, Meiergerd SM, Povlock SL, Schenk JO, Kalivas PW. Індивідуальний локомоторний відповідь на новизну передбачає селективні зміни в рецепторах D1 і D2 і мРНК. J Neurosci. 1994;14: 6144-6152. [PubMed]
  • Хуан Q, Чжоу Д, Чейз К., Гуселла Дж.Ф., Аронін Н., Діфілья М. Імуногістохімічна локалізація дофамінового рецептора D1 у мозку щурів виявляє його аксональний транспорт, до- і постсинаптичну локалізацію, а також поширеність в базальних гангліях, лімбічної системі і ядро таламуса ретикулярне. Proc Natl Acad Sci США А. 1992;89: 11988-11992. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • Ікемото С. Залучення нюхового горбка у винагороду кокаїну: дослідження внутрішньочерепного самоврядування. J Neurosci. 2003;23: 9305-9311. [PubMed]
  • Ikemoto S, Qin M, Лю ZH. Функціональний розрив для первинного зміцнення D-амфетаміну лежить між медіальним і бічним вентральним стриатумом: чи діє розподіл ядра, оболонки і нюхового горбка аккумбенса? J Neurosci. 2005;25: 5061-5065. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • Ito R, Dalley JW, Howes SR, Robbins TW, Everitt BJ. Дисоціація в кондиційному вивільненні дофаміну в ядрі і оболонці nucleus accumbens у відповідь на кокаїнові сигнали і під час кокаїнової поведінки у щурів. J Neurosci. 2000;20: 7489-7495. [PubMed]
  • Ito R, Robbins TW, Everitt BJ. Диференціальний контроль за поведінкою, що шукає кокаїн, ядром і оболонкою nucleus accumbens. Nat Neurosci. 2004;7: 389-397. [PubMed]
  • Javitch JA. Мурахи йдуть двома за двома: олігомерна структура G-білкових рецепторів. Mol Pharmacol. 2004;66: 1077-1082. [PubMed]
  • Кім К.М., Валенцано К.Ю., Робінсон С.Р., Яо В.Д., Барак Л.С., Карон М.Г. Диференціальна регуляція рецепторів дофамінових D2 і D3 за допомогою G-білкових рецепторів кіназ і бета-арестинів. J Biol Chem. 2001;276: 37409-37414. [PubMed]
  • Кім О.О., Аріано М.А., Намкунг Я., Марінек П, Кім Е, Хан Дж, Сіблій Д.Р. Експресія і торгівля дофаміновими рецепторами D2 регулюється шляхом безпосередньої взаємодії з ZIP. J Neurochem. 2008;106: 83-95. [PubMed]
  • Костен Т., Костен Т., Полінг Дж., Олівето А. “Інкубація” рецидиву кокаїну під час клінічного випробування дисульфіраму. Коледж з проблем наркотичної залежності. 2005 Анотація #357.
  • Куріч С., Ротуел П.Е., Клаг Ю.Р., Томас МЮ. Досвід кокаїну контролює двонаправлену синаптичну пластичність в nucleus accumbens. J Neurosci. 2007;27: 7921-7928. [PubMed]
  • Lachowicz JE, Sibley DR. Молекулярні характеристики дофамінових рецепторів ссавців. Pharmacol Токсикол. 1997;81: 105-113. [PubMed]
  • Le Foll B, Frances H, Diaz J, Schwartz JC, Sokoloff P. Роль рецептора дофамінових D3 у реактивності до асоційованих з кокаїном сигналів у мишей. Eur J Neurosci. 2002;15: 2016-2026. [PubMed]
  • Le Foll B, Goldberg SR, Соколоф П. Рецептори дофамінових рецепторів D3 і лікарська залежність: вплив на винагороду або за її межами? Нейрофармакологія. 2005;49: 525-541. [PubMed]
  • Lee SP, O'Dowd BF, Ng GY, Varghese G, Akil H, Mansour A, Nguyen T, George SR. Інгібування експресії поверхні клітини мутантними рецепторами демонструє, що рецептори дофаміну D2 існують як олігомери в клітині. Mol Pharmacol. 2000a;58: 120-128. [PubMed]
  • Lee SP, O'Dowd BF, Rajaram RD, Nguyen T, George SR. Гомодимеризація D2-рецепторів дофаміну опосередковується багатьма ділянками взаємодії, включаючи міжмолекулярну взаємодію із залученням трансмембранного домену 4. Біохімія (Mosc) 2003;42: 11023-11031.
  • Lee SP, So CH, Rashid AJ, Varghese G, Cheng R, Lanca AJ, O'Dowd BF, George SR. Коактивація рецепторів допаміну D1 та D2 генерує новий фосфоліпазний С-опосередкований сигнал кальцію. J Biol Chem. 2004;279: 35671-35678. [PubMed]
  • Лі SP, Xie Z, Varghese G, Nguyen T, O'Dowd BF, George SR. Олігомеризація дофамінових та серотонінових рецепторів. Neuropsychopharmacology. 2000b;23: S32-40. [PubMed]
  • Lu L, Grimm JW, Демпсі J, Shaham Y. Кокаїн шукає більш тривалий період відміни у щурів: різні часові курси реагування, викликані кокаїновими сигналами проти кокаїнового грунтовки протягом перших місяців 6. Психофармакологія (Берл) 2004a;176: 101-108. [PubMed]
  • Lu L, Grimm JW, Hope BT, Shaham Y. Інкубація кокаїнової тяги після відміни: огляд доклінічних даних. Нейрофармакологія. 2004b;47(Поставка 1): 214-226. [PubMed]
  • Марцелліно D, Ферре S, Касадо V, Кортес А, Ле Фолль Б, Маццола С, Драго Ф, Саур О, Старк Х, Соріано А, Барнс С., Голдберг С.Р., Луїс С, Фукс К, Франко Р. Ідентифікація дофаміну D1 Гетеромери рецептора D3. Показання до ролі синергічних взаємодій рецепторів D1-D3 в смугастому тілі. J Biol Chem. 2008;283: 26016-26025. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • Мартінес Д., Брофт А., Фолтін Р.В., Сліфштейн М, Хванг Д.Р., Хуан Я, Перес А, Франкл Р.Г., Купер Т., Клебер HD, Фішман М.В., Ларуель М. Залежність кокаїну і наявність рецепторів d2 у функціональних підрозділах стриатума: відносини з кокаїном. Neuropsychopharmacology. 2004;29: 1190-1202. [PubMed]
  • Мартінес Д., Орловська Д., Нарендран Р, Сліфштейн М, Лю Ф, Кумар Д, Брофт А, Ван Хеертум Р, Клебер HD. Наявність рецепторів дофаміну 2 / 3 в стриатуме і соціальний статус у добровольців. Biol психіатрії. 2010;67: 275-278. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • Мартінес Д., Сліфштейн М, Нарендран Р, Фолтін Р.В., Брофт А, Хван Д.Р., Перез А, Абі-Даргам А, Фішман МВ, Клебер HD, Ларюлле М. Рецептори дофаміну D1 в залежності від кокаїну, виміряні за допомогою ПЕТ і вибір самостійно вводять кокаїн. Neuropsychopharmacology. 2009;34: 1774-1782. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • McFarland K, Kalivas PW. Схеми, що опосередковують індуковану кокаїном поновлення наркоманії. J Neurosci. 2001;21: 8655-8663. [PubMed]
  • Missale C, Nash SR, Robinson SW, Jaber M, Caron MG. Допамінові рецептори: від структури до функції. Rev. Physiol 1998;78: 189-225. [PubMed]
  • Moore RJ, Vinsant SL, Nader MA, Porrino LJ, Friedman DP. Вплив кокаїну на саморегуляцію на стриатинові рецептори дофаміну D1 у макак-резусів. Синапс. 1998a;28: 1-9. [PubMed]
  • Moore RJ, Vinsant SL, Nader MA, Porrino LJ, Friedman DP. Вплив самостійного застосування кокаїну на рецептори дофаміну D2 у макак-резусів. Синапс. 1998b;30: 88-96. [PubMed]
  • Morgan D, Grant KA, Gage HD, Mach RH, Kaplan JR, Prioleau O, Nader SH, Buchheimer N, Ehrenkaufer RL, Nader MA. Соціальне домінування у мавп: рецептори дофамінових D2 і кокаїн самоврядування. Nat Neurosci. 2002;5: 169-174. [PubMed]
  • Надер М.А., Даунас Ю.Б., Мур Т., Надер Ш., Мур Р.Я., Сміт HR, Фрідман Д.П., Порріно ЖЖ. Вплив самоконтролю кокаїну на стриатинові дофамінові системи у макак-резусів: початкове та хронічне опромінення. Neuropsychopharmacology. 2002;27: 35-46. [PubMed]
  • Nader MA, Morgan D, Gage HD, Nader SH, Calhoun TL, Buchheimer N, Ehrenkaufer R, Mach RH. Візуалізація ПЕТ-рецепторів дофамінових D2 при хронічному самоконтролі кокаїну у мавп. Nat Neurosci. 2006;9: 1050-1056. [PubMed]
  • Neisewander JL, Бейкер Д.А., Фукс Р.А., Тран-Нгуєн Л.Т., Палмер А, Маршалл Дж. Експресія Fos-білка і кокаїноподібна поведінка у щурів після впливу середовища кокаїну. J Neurosci. 2000;20: 798-805. [PubMed]
  • Neisewander JL, Fuchs RA, Tran-Nguyen LT, Weber SM, Coffey GP, Джойс JN. Збільшення зв'язування дофамінових рецепторів D3 у щурів, які отримують кокаїн у різні моменти часу після самостійного застосування кокаїну: наслідки для поведінки, що шукає кокаїн. Neuropsychopharmacology. 2004;29: 1479-1487. [PubMed]
  • Нельсон К.Л., Милованович М, Веттер Ю.Б., Форд К.А., Вовк ME. Поведінкова сенсибілізація до амфетаміну не супроводжується зміною експресії поверхні рецептора глутамату в ядрі щурів щура. J Neurochem. 2009;109: 35-51. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • Neve KA, Seamans JK, Trantham-Davidson H. Сигналізація дофамінових рецепторів. J Рецепт передачі сигналу Res. 2004;24: 165-205. [PubMed]
  • Нікола С.М., Сурмейер Дж. Допамінергічна модуляція збудливості нейронів в стриатуме і ядрі accumbens. Annu Rev Neurosci. 2000;23: 185-215. [PubMed]
  • О'Доннелл П. Дофамінове регулювання нервових ансамблів переднього мозку. Eur J Neurosci. 2003;17: 429-435. [PubMed]
  • Паспалас CD, Гольдман-Ракич П.С. Мікродомени для дофамінової об'ємної нейротрансмісії в префронтальній корі примату. J Neurosci. 2004;24: 5292-5300. [PubMed]
  • Pierce RC, Kalivas PW. Схемотехнічна модель вираження поведінкової сенсибілізації до амфетаміноподібних психостимуляторів. Brain Res Brain Res Rev. 1997;25: 192-216. [PubMed]
  • Pinto A, Sesack SR. Ультраструктурний аналіз префронтальних коркових входів у мигдалину щурів: просторові відносини до передбачуваних аксонів дофаміну та рецепторів D1 та D2. Структура мозку Функція. 2008;213: 159-175. [PubMed]
  • Rocheville M, Lange DC, Kumar U, Patel SC, Patel RC, Patel YC. Рецептори дофаміну і соматостатину: утворення гетеро-олігомерів з підвищеною функціональною активністю. Наука. 2000;288: 154-157. [PubMed]
  • Rodd-Henricks ZA, McKinzie DL, Li TK, Murphy JM, McBride WJ. Кокаїн вводиться самостійно в оболонку, але не в ядро ​​щурів Wistar. J фармакологічної та експериментальної терапії. 2002;303: 1216-1226. [PubMed]
  • Scarselli M, Novi F, Schallmach E, Lin R, Baragli A, Colzi A, Griffon N, Corsini GU, Sokoloff P, Levenson R, Vogel Z, Maggio R. D2 / D3 гетеродимери дофамінових рецепторів мають унікальні функціональні властивості. J Biol Chem. 2001;276: 30308-30314. [PubMed]
  • Шмідт Х.Д., Андерсон С.М., Пірс Р.С. Стимуляція D1-подібних або D2 рецепторів дофаміну в оболонці, але не в ядрі nucleus accumbens відновлює кокаїноподібну поведінку у щурів. Eur J Neurosci. 2006;23: 219-228. [PubMed]
  • Schmidt HD, Pierce RC. Кооперативна активація D1-подібних і D2-подібних дофамінових рецепторів в оболонці nucleus accumbens необхідна для відновлення кокаїноподібної поведінки у щурів. Неврологія. 2006;142: 451-461. [PubMed]
  • Self DW, Barnhart WJ, Lehman DA, Nestler EJ. Протилежна модуляція поведінки, що шукає кокаїн, агоністами дофамінових рецепторів D1 та D2. Наука. 1996;271: 1586-1589. [PubMed]
  • Так CH, Verma V, Alijaniaram M, Cheng R, Rashid AJ, O'Dowd BF, George SR. Сигналізація кальцію за допомогою рецепторів дофаміну D5 та гетеро-олігомерів рецептора D5-D2 відбувається за механізмом, відмінним від механізму гетеро-олігомерів рецептора D1-D2 дофаміну. Mol Pharmacol. 2009;75: 843-854. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • Staley JK, Mash DC. Адаптивне збільшення дофамінових рецепторів D3 в головному мозку винагороджує схеми смертей людини від кокаїну. J Neurosci. 1996;16: 6100-6106. [PubMed]
  • Stéfanski R, Ziolkowska B, Kusmider M, Mierzejewski P, Wyszogrodzka E, Kolomanska P, Dziedzicka-Wasylewska M, Przewlocki R, Kostowski W. Мозок Рес. 2007;1157: 1-10. [PubMed]
  • Саттон М.А., Шмідт Е.Ф., Чой К.Г., Шад К.А., Уіслер К., Сіммонс Д., Караньян Д.А., Монтеггія Л.М., Неве Р.Л. Індукована вимиранням регуляція в рецепторах АМРА знижує кокаїнову поведінку. Природа. 2003;421: 70-75. [PubMed]
  • Volkow ND, Fowler JS, Wang GJ, Baler R, Telang F. Зображення ролі дофаміну в наркоманії та наркоманії. Нейрофармакологія. 2009;56(Поставка 1): 3-8. [PMC безкоштовна стаття] [PubMed]
  • Volkow ND, Fowler JS, Wang GJ, Hitzemann R, Logan J, Schlyer DJ, Dewey SL, Wolf AP. Зниження доступності дофамінових рецепторів D2 пов'язане зі зниженням фронтального метаболізму у вживаючих кокаїну. Синапс. 1993;14: 169-177. [PubMed]
  • Волков Н.Д., Фаулер Ю.С., Ван Г.Я., Свонсон Дж.М., Теланг Ф. Допамін в наркоманії та наркоманії: результати візуалізаційних досліджень і наслідків лікування. Арка Нейрол. 2007;64: 1575-1579. [PubMed]
  • Volkow ND, Fowler JS, Wolf AP, Schlyer D, Shiue CY, Alpert R, Dewey SL, Logan J, Bendriem B, Christman D, et al. Вплив хронічного зловживання кокаїном на постсинаптичні дофамінові рецептори. Am J Psychiatry. 1990;147: 719-724. [PubMed]
  • Volkow ND, Wang GJ, Fowler JS, Logan J, Gatley SJ, Gifford A, Hitzemann R, Ding YS, Pappas N. Прогнозування підсилюючих відповідей на психостимулятори в організмі людини за допомогою рівнів рецепторів D2. Am J Psychiatry. 1999;156: 1440-1443. [PubMed]
  • Volkow ND, Wang GJ, Fowler JS, Logan J, Gatley SJ, Hitzemann R, Chen AD, Dewey SL, Pappas N. Знижена стриатальна дофамінергічна реактивність у детоксикованих кокаїнозалежних суб'єктів. Природа. 1997;386: 830-833. [PubMed]
  • Volkow ND, Wang GJ, Fowler JS, Танос PP, Logan J, Gatley SJ, Gifford A, Ding YS, Wong C, Pappas N. Рецептори D2 Brain DA DXNUMX передбачають підсилюючі ефекти стимуляторів у людей: дослідження реплікації. Синапс. 2002;46: 79-82. [PubMed]
  • Wang H, Pickel VM. Рецептори дофамінових D2 присутні в префронтальних коркових аферентах і їх мішенях в пластах ядра щурячо-путаменной щури. J Comp Neurol. 2002;442: 392-404. [PubMed]
  • Wolf ME, Ferrario CR. Пластичність рецептора АМРА у ядрі accumbens після повторного впливу кокаїну. Neurosci Biobehav Rev Epub. 2010 Jan 28;
  • Worsley JN, Moszczynska A, Falardeau P, Каласінський К.С., Шмунк G, Guttman M, Furukawa Y, Ang L, Adams V, Reiber G, Anthony RA, Wickham D, Kish SJ. Білок рецептора дофаміну D1 підвищений в ядрах людей, що страждають хронічними метамфетамінами. Моль психіатрії. 2000;5: 664-672. [PubMed]
  • Xi ZX, Gardner EL. Фармакологічні дії NGB-2904, селективного антагоніста рецептора D3 дофаміну, на тваринних моделях наркоманії. CNS Drug Rev. 2007;13: 240-259. [PubMed]