上瘾的突触:伏隔核中突触和结构可塑性的机制(2010)

趋势神经科学。 作者手稿; 可在PMC 2011 June 1中找到。以最终编辑形式发布:

趋势神经科学。 2010六月; 33(6):267 276。

在线发布2010 March 5。 DOI:  10.1016 / j.tins.2010.02.002

Scott J. Russo,1,* 大卫M.迪茨,1 Dani Dumitriu,1 罗伯特C.马伦卡,2Eric J. Nestler1                        

抽象

成瘾药物导致大脑边缘区域的几种神经细胞类型的持续重建,这些区域被认为是导致成瘾的长期行为可塑性的原因。 尽管这些结构变化在伏核伏中神经元中有很好的记载,但对于潜在的分子机制知之甚少。 此外,尚不清楚结构可塑性及其突触伴随物是否会引起成瘾行为,或者它们是否反映了与成瘾本身无关的药物的稳态补偿。 在这里,我们讨论最近的矛盾数据,这些数据支持或反对药物诱导的树突棘变化驱动成瘾行为的假设。 我们定义了未来调查可以提供更详细的药物诱导突触重组图像的区域,包括超微结构,电生理学和行为学研究。

关键词: 树突棘,药物成瘾,复发,中脑边缘多巴胺系统,长时程增强(LTP),长期抑郁症(LTD),中型多刺神经元(MSN),α-氨基-3-羟基-5-甲基-4-异恶唑 - 丙酸(AMPA),N-甲基D-天冬氨酸(NMDA),ΔFosB,环AMP反应元件结合蛋白(CREB),核因子kappaB(NFκB)和肌细胞增强因子2(MEF-2)

介绍

药物成瘾的特点是行为的长期变化,如渴望和复发。 与这些稳定的行为异常相关的是大脑边缘区域中许多神经元细胞类型的持续重建。 已经观察到两种一般类型的结构可塑性:细胞体大小的变化[1]和树枝状树枝状或脊柱形态的变化[2]。 关于后者,取决于成瘾物质的类别,药物施用范例的性质(例如,实验者与自我管理)和检查的神经元细胞类型,滥用药物可以改变树突分支的复杂性,以及几个脑区神经元上树突棘的数量和大小(表1)。 相关证据表明,某些形态变化是成瘾行为的重要中介。 例如,与给予药物的动物相比,吗啡和可卡因改变了伏核(NAc)中的多刺神经元(MSN)上的树突棘的密度,这是一种关键的脑奖励区域,在更大程度上是动物自我施用药物。研究者,表明意志可能对塑性的关键方面很重要(综述于[3])。 此外,可卡因诱导的NAc树突结构变化与行为致敏的诱导密切相关[4]:诱导致敏的剂量和药物施用范例可靠地增加树突棘和分枝。 然而,尽管有这些证据,结构可塑性的行为相关性仍然不确定。 最近几项使用病毒介导的基因转移和其他方法更好地了解可卡因诱导的MSN树突结构变化的行为相关性和分子基础的研究产生了相互矛盾的结果,两篇手稿支持了可卡因诱导的树突棘增加的假设密度介导行为敏感和另外两个截然相反的[58]。 在这篇综述中,我们讨论了当前矛盾的实验数据,并为未来的调查制定了领域。 我们详细介绍了关键主题,从滥用药物诱导的突触可塑性类型和介导药物诱导的结构可塑性的信号通路开始,并进一步详细讨论了脊柱形态测定和肌动蛋白重组在成瘾中的功能。

表1  

药物诱导的神经元形态变化

阿片类药物和兴奋剂滥用引起的结构可塑性

药物诱导的树突的结构可塑性首先在1997中描述(综述于[3, 9, 10])。 从那时起,许多实验室已经证明,几乎所有滥用药物的长期使用都会在大脑的奖励回路中引起结构可塑性。 这些研究还将特定大脑区域内的结构变化与成瘾相关的行为表型相关联。 自罗宾逊及其同事的原始报告(在[3]),许多研究人员已经添加到这些不断增长的文献中,并发现了对神经元形态的更微妙和药物类特异性影响。 例如,阿片类药物和兴奋剂调节相反方向的结构可塑性。 阿片类药物可减少NAc MSNs,内侧前额叶皮质(mPFC)和海马锥体神经元上树突棘的数量和复杂性,并降低腹侧被盖区(VTA)多巴胺能神经元的体细胞大小[1, 3, 11, 12]。 迄今为止,这些发现只有一个例外:慢性吗啡增加眶额皮质(oPFC)锥体神经元的脊柱数量[13]。 与鸦片制剂相比,可卡因,安非他明和哌甲酯等兴奋剂不断增加NAc MSNs,VTA多巴胺能神经元和mPFC锥体神经元的树突复杂性和脊柱密度[2, 8, 1417]。 从行为的角度来看,吗啡可降低脊柱密度和树突复杂性,无论是连续给药以产生耐受性和依赖性,还是间歇性地使致敏性最大化,而增加脊柱密度和复杂性的兴奋剂范例均使用每日间歇性注射一次至数次。诱导药物过敏的药物[3, 9].

阿片类药物与兴奋剂在大脑奖赏区域诱发的相反形态变化是矛盾的,因为这两种药物会导致非常相似的行为表型。 阿片类药物和兴奋剂均能迅速诱导运动激活和运动以及长期奖励致敏[9]。 他们也都会引起类似的药物自我管理升级模式以及戒断期间的负面情绪状态(烦躁不安)[18]。 因此,如果鸦片制剂和兴奋剂引起的相反的形态变化是成瘾的重要介质,它们必须具有双向性质,从而在两个方向上从基线的变化产生相同的行为表型,或者存在关于突触功能的关键信息片段。没有通过测量树突棘密度的总体变化来捕获,因为这可以通过突触强度的变化来补偿,保持每个神经元的总突触输入不变[19]。 例如,酒精会降低神经元的复杂性和密度,同时巩固已有的突触[20并且可能是鸦片制剂和兴奋剂对突触后密度(PSD)的大小产生类似的影响,导致突触功效的相同净变化。 还不清楚长期接触阿片类药物或兴奋剂是否会导致NAc突触的类似电生理学变化,正如可能预期的那样,鉴于上瘾表型的共同特征。 最后,我们应该考虑药物诱导的一个脑区突触数量和功效的变化可能导致与其他大脑区域的连接加强或减弱,并可能驱动成瘾行为的不同方面[2123].

药物诱导的结构可塑性的神经生理学相关性

对海马和大脑皮层树突棘变化相关性的基础研究表明,单个棘的大小和形状与突触可塑性的形式相关,如长时程增强(LTP)和长期抑郁(LTD)[24, 25]。 人们认为,通过活动依赖机制可以将短暂的,未成熟的脊柱稳定成更永久的功能性脊柱(综述于[26])。 诱导LTD的刺激方案与脊柱的收缩或收缩有关[2729虽然诱导LTP与新刺的形成和现有刺的扩大有关[27, 28, 30]。 在分子水平上,据信LTP和LTD启动信号通路的改变,以及细胞骨架蛋白的合成和定位,其改变肌动蛋白的聚合以影响脊柱成熟和稳定性并且锚定或内化α-氨基-3 - 羟基-5-甲基-4-异恶唑 - 丙酸酯(AMPA)谷氨酸受体产生更多功能性脊柱(LTP)或收缩现有脊柱(LTD)[24, 26]。 稳定后,刺突变成蘑菇状,突触后密度更大[31],表明AMPA受体的表面表达增加,持续数月[29, 32]。 这些变化反映了高度稳定的细胞事件,这可能是与成瘾相关的某些长期行为变化的合理解释。

最近在成瘾模型方面的工作确实显示出NAc MSN的功能变化,这些变化在成瘾过程中具有高度时间依赖性和流动性(图1)。 在最后一次可卡因暴露后的早期时间点,瘦(更高度塑性)的刺和突触抑制增加[33, 34],这可能代表更多的沉默突触[35, 36]。 无声突触含有N-甲基-D-天冬氨酸(NMDA)谷氨酸受体,但很少或没有AMPA受体,表达相对稳定的NMDA受体介导的兴奋性突触后电流,是LTP的理想底物[36, 37]。 可卡因治疗后不久,NAc中的这种沉默突触似乎表达含有NR2B的NMDA受体的比例增加[35],与这些突触一致的发现是相当新的和不成熟的[38, 39]。 在可卡因戒断过程中,这些最近形成的脊柱似乎是高度短暂的,可能缩回或巩固成蘑菇状刺[33],伴随着缺乏AMPA受体的GluR2表面表达增加和这些谷氨酸能突触增强的事件[4042]。 (GluR2缺乏AMPA受体表现出更大的钙2+ 与含有GluR2的AMPA受体相比,总体电导率。)行为上,从可卡因自我给药中可以看到可卡因渴望的孵化; 其特点是可卡因寻求逐渐和逐渐增加,并且易于复发,这可能需要突触AMPA受体的化学计量学的这些变化[42, 43]。 然而,使用病毒介导的基因转移的行为研究表明AMPA GluR1亚基的过度表达反而降低了对可卡因的行为敏感性,突出了在该领域进一步研究的必要性[44]。 其他证据表明,在14或30戒断后几天再次接触可卡因会导致脊柱头部直径减小[33],降低AMPA受体的表面表达[40],以及这些突触的力量抑制[45]。 在突触结构和组成的这些瞬时变化期间,肌动蛋白聚合所需的RhoGTP酶信号蛋白的活性也发生显着变化,这可能是导致脊柱重建的原因[46]。 这些数据指出脊柱头部结构,NAc MSN的电生理特性和成瘾相关行为之间的复杂相互作用。 鉴于许多突触蛋白可以调节这些事件,因此鉴定其调节中涉及的精确分子网络将是重要的。

图1  

成瘾相关的突触和结构可塑性模型

阿片和兴奋剂诱导结构可塑性的机制

如前所述,成瘾模型中结构可塑性的功能相关性很复杂,因为吗啡和可卡因对MSN脊柱密度具有相反的影响。 此外,几乎没有对下游药物作用的直接检查来解释结构可塑性的这种二分法。 虽然有几项大规模微阵列研究检查了精神兴奋剂给药后基因表达的变化,但阿片类药物的这类信息相对较少。 此外,对吗啡或可卡因反应的基因表达变化的研究使用了广泛不同的时间点,方案和剂量,使得直接比较变得不可能。 尽管存在这些警告,但很明显阿片类药物和兴奋剂滥用药物可以调节许多编码细胞骨架调节蛋白的基因。 例如,在NAc中,吗啡减少荷马1和PSD95 [47],与突触后细胞骨架相关的支架蛋白。 有趣的是,可卡因在NAc中同样会减少这些蛋白质[4851]。 此外,吗啡还能降低RhoA,Rac1和Cdc42,即调节肌动蛋白细胞骨架的小GTP酶(见下文)[47]。 这些GTP酶及其下游靶标的活性也被可卡因减少[52]。 这些研究并非旨在直接比较结构相关基因的吗啡和可卡因调节,但两种药物均被发现诱导许多类似的变化,尽管它们对NAc MSN的树突棘具有相反的调节作用。 这表明该途径的调节可以作为可塑性的引发剂; 然而,它并没有解释阿片和兴奋剂引起的结构可塑性之间的二分法。

阿片类药物和兴奋剂类似地诱导许多细胞骨架调节基因的事实可能归因于它们在NAc中激活相似的转录调节因子,包括转录因子,ΔFosB和环AMP反应元件结合蛋白(CREB)[5356](图2)。 几乎所有类型的滥用药物均在NAc中诱导ΔFosB[57]并增强吗啡和可卡因的奖赏效果[58, 59]。 ΔFosB似乎占慢性可卡因在NAc中调节的所有基因的大约25%,包括与突触可塑性相关的几个基因,如cofilin,肌动蛋白相关蛋白-4(ARP4)和活性调节的细胞骨架蛋白(Arc)[58, 60]。 此外,ΔFosB对于可卡因诱导的树突棘密度变化是必要和充分的[7]。 然而,如果吗啡和可卡因都诱导ΔFosB,ΔFosB是增强的脊柱发生的关键介质,为什么慢性吗啡会降低NAc MSN脊柱密度? 一种可能性是ΔFosB在吗啡与可卡因给药的情况下调节部分不同的基因子集,这取决于所涉及的其他转录改变,或者吗啡诱导NAc神经元中的其他适应,其超越ΔFosB信号,其单独刺激脊柱发生。 需要进一步的研究来解决这些和替代性的解释。

图2  

信号通路参与成瘾相关的细胞骨架重组

与ΔFosB相反,CREB在药物诱导的结构可塑性中的作用更具假设性。 尽管有证据表明NAc中CREB的诱导介导了对吗啡和可卡因奖励的耐受性和依赖性(综述于[61]),很少有数据可以检查CREB是否介导了接触滥用药物后的结构变化。 在其他几个脑区,CREB诱发脊柱发生[37, 62, 63],可能通过转录靶点介导的作用,如肌细胞增强因子2C(MEF2C)和脑源性神经营养因子(BDNF),这两者也与成瘾相关的可塑性有关[5, 64, 65]。 CREB还可以通过诱导microRNA来调节可塑性,mir132最近被证明可以通过降低GTP酶p250GAP的水平来诱导培养中海马神经元的神经突向外生长[部分]66]。 鉴于大量证据表明CREB在其他神经回路中的结构可塑性中起作用,因此直接调查CREB在介导NAc中药物诱导的结构可塑性中的作用是未来研究的重中之重。 然而,在这里也存在悖论,阿片类药物和兴奋剂都会诱导NAc中的CREB活性,同时对树突结构产生相反的影响。

介导可卡因诱导的结构可塑性的分子机制

1。 RhoGTP酶信号通路调节结构可塑性

肌动蛋白细胞骨架的结构变化在很大程度上受一小群GTP酶的控制,即Rho,细胞分裂周期42(Cdc42),Ras和Rac(见 图2)。 这些小GTP酶由鸟嘌呤核苷酸交换因子(GEF)激活,例如Ras-鸟嘌呤核苷酸释放因子(RasGRF1 / 2),VAV,Kalirin 7和Tiam1,所有这些都催化了GDP的GTP交换[6771]。 全球环境基金本身被许多细胞外信号激活,包括脑源性神经营养因子(BDNF)通过酪氨酸受体激酶(TRKB)机制,肿瘤生长因子-B(TGF-B),细胞粘附蛋白(整合素)和NMDA谷氨酸受体通过增加钙2+ 并激活钙2+/钙调蛋白依赖性蛋白激酶-II(CAMKII)[7174]。 GTP的结合激活这些GTP酶,然后激活肌动蛋白细胞骨架的下游调节因子,包括lim结构域激酶(LIMK),Wiskott-Aldrich综合征蛋白(WASPs),ARP和WASP家族verprolin同源物(WAVEs)[7577]。 然而,细胞外信号调节这些各种蛋白质的详细分子步骤,以及它们调节单个树突棘的产生,收缩或重塑的机制仍然知之甚少。

最近,已经研究了这些小GTP酶及其GEF活化剂在药物诱导的结构可塑性中的作用。 缺乏GEF Ras-GRF1的小鼠表现出对可卡因的敏感性减弱,而整个大脑中的组成型过表达增强了药物致敏和奖赏[78]。 此外,Ras-GRF1似乎介导ΔFosB的表达[78],如前所述促进NAc MSN上的spinogenesis [6, 7有趣的是,最近显示慢性可卡因可降低GTP结合的RhoA水平,可能导致下游肌动蛋白切断分子如LIMK和cofilin的减少[52].

小GTP酶的活性形式由GTP酶活化蛋白(GAP)终止,其增强GTP水解并因此充当RhoGTP酶的负调节剂。 尽管关于GAP在成瘾中的作用知之甚少,但一项研究表明,RhoGAP18B中的突变传递了对乙醇,尼古丁和可卡因的敏感性改变。 果蝇 [79]。 这些结果突出了未来很多研究的必要性,以确定暴露于可卡因或其他成瘾药物后RhoGTP酶及其调节蛋白的调节。

2。 结构可塑性的转录调节因子

尽管ΔFosB介导可卡因诱导的脊柱密度变化对NAc MSN的精确分子步骤仍然未知,但最近的几项研究已经表征了可能参与突触重塑的ΔFosB下游的候选基因(见 图2)。 使用全基因组分析,ΔFosB已被证明可调节已知介导spinogenesis的几种基因[58]。 一个这样的靶标是细胞周期蛋白依赖性激酶5(Cdk5),其通过ΔFosB由NAc中的可卡因诱导[80并且在其他系统中已知调节RhoGTP酶。 局部抑制Cdk5可防止NAc中可卡因诱导的脊柱增殖[8]。 Cdk5的一个目标是MEF2:Cdk5的诱导磷酸化并抑制MEF2,从而增加NAc MSN上的树突棘[5]。 响应可卡因抑制MEF2活性可允许细胞骨架相关基因,N-WASP和WAVE的转录,其在其近端启动子区域中具有推定的MEF结合位点。 还有证据表明,一种特定的WAVE蛋白WAVE1以Cdk5依赖性方式调节脊柱形态发生[81, 82]。 因此,通过ΔFosB通过慢性可卡因诱导Cdk5可以导致WAVE活性的调节,而MEF2可以调节其表达水平以介导成瘾中涉及的长期变化。 从功能的角度来看,抑制Cdk5,或激活MEF2,两者都会反对可卡因对NAc树突棘的影响,矛盾的是 增强 对可卡因的行为反应[5, 83, 84]。 这些意外的发现表明,总脊柱密度的总体变化可能不一定导致敏感的药物反应本身,但可能是“稳态适应”的结果,以补偿由慢性可卡因暴露引起的其他变化,例如谷氨酸能刺激的减少前额叶皮层传入的MSNs [34, 85].

在随后的研究中,我们检查了另一种转录因子核因子κB(NFκB)。 我们发现可卡因在NAc中诱导NFκB活性,并且由此产生的NFκB活化是MSN上可卡因诱导的树突棘形成所必需的[6]。 与Cdk5-MEF2途径一样,ΔFosB是可卡因诱导NFκB亚基所必需的,表明ΔFosB调节更大程度的改变基因表达,最终导致NAc MSN的脊柱发生。 有趣的是,我们还发现NFκB通路的抑制抑制了对可卡因的行为反应,这与该领域的普遍假设一致,即可卡因诱导的脊柱密度增加介导行为致敏[6].

Cdk5-MEF2的行为影响之间存在矛盾的差异 尽管两种途径的诱导都是通过ΔFosB介导并增加树突棘密度,但NFκB的作用很强,这突出了这些细胞内途径的复杂性和未来研究的重要性。 我们的假设是可卡因的净效应是通过ΔFosB,通过多个下游靶标(例如,NFκB,Cdk5-MEF2,许多其他)诱导NAc脊柱密度,并且净结果是对可卡因的敏感行为反应。 然而,同时,像Cdk5-MEF2这样的单个靶途径可以通过其自身多样化的下游分子后果单独引发不同的行为效应。 因此,至关重要的是,未来的研究应对许多可卡因和ΔFosB目标的下游分子途径进行分析,以深入了解每种途径对可卡因诱导的脊柱发生和改变的可卡因行为反应的特定贡献。 这些不一致的结果也可以通过与转基因和敲除小鼠或病毒过表达系统相关的混淆来解释。 这些模型在研究涉及结构可塑性的分子途径中起关键作用,可以产生脱靶基因效应并诱导基因产物,其水平远远超过药物暴露后所见的水平。 最后,我们必须认识到,通过仅测量总树突棘数,我们正在丢失关于这些脊是否正在形成活动突触并因此改变通过回路的信息流的重要信息。 考虑到这些警告,需要进一步的研究来检查脊柱结构和组成及其突触前输入的更详细变化(框1)以及这些分子操作在药物诱导的脊柱和突触可塑性的背景下的电生理学后果(框2).

方框1量化NAc MSN中结构可塑性的方法

(A)通过几种技术研究了树突棘的形态和密度,每种技术都有优点和缺点。 高尔基染色剂价格便宜且相对容易进行。 荧光蛋白(例如GFP)的病毒介导的表达允许探测控制结构可塑性的内在分子途径的能力。 然而,高尔基体和病毒转染都不允许对脊柱形状或数量进行详细的3维(3D)分析。 最新的扩散方法(基因枪输送 - 最常见的 - 碳化物染料DiI)和显微注射荧光分子如Alexa Fluor染料和Lucifer Yellow,结合高分辨率3D共聚焦成像,提供了前所未有的形态学一瞥。树突棘。 (B)在10X(下图),40X(上图)和100X(右图)上成像的具有荧光黄的NAc神经元的显微注射(或细胞加载)的实例。 (C)通过使用在Drd2-或Drd1-表达神经元中选择性表达GFP的转基因小鼠(左图),我们可以靶向扩散或染料显微注射来研究细胞类型特异性的形态变化。 (D)显微注射的一个优点是它已经被验证可用于NeuronStudio,这是一个对脊柱密度和形态进行自动3D分析的程序,以及将刺的无偏分类成薄,蘑菇,粗短和其他亚型(http://www.mssm.edu/cnic/tools-ns.html)。 存在类似的系统用于膜结合染料,例如DiI [33]。 (E)与电子显微镜(EM)相比,所有基于光学显微镜的方法都具有显着的缺点。 EM是突触可视化的黄金标准,它利用了突触的独特特征:突触后密度(PSDs)是电子密集的,可以很容易地显示出来。 此外,某些突触特征,如多个突触boutons(黄色弓)和穿孔突触(橙色框)只能通过EM可视化。 PSD的大小提供了突触强度的测量,因为PSD大小与突触功能和可塑性相关[91]。 这种信息水平在成瘾模型中可能很重要。 例如,滥用药物可能会改变脊柱密度而不改变细胞的功能输出,或者通过将现有的突触合并为更少但更强的突触,或者通过创建新的但是无声的突触。 相反,在脊柱总数没有变化的情况下,可能发生药物引起的脊柱大小或形状变化 - 因此也可能发生功能变化。 为了在未来的研究中解决这些问题,我们需要使用光学和电子显微镜直接比较阿片和兴奋剂诱导的NAc和其他神经元的结构可塑性,以及脊柱类型的3D形态测量分析,以及测量突触状态的电生理学相关性。 。 此外,需要使用多光子显微镜结合笼状谷氨酸的局部解笼锁,或用通道视紫红质刺激已鉴定的突触前神经末梢来直接测试各个新刺的功能和功效。 看到 框2 有关这些功能研究的详细说明。 比例尺:(A)中的5μm,(E)中的1μm。 在(D)中,蓝色,红色,绿色分别表示薄的蘑菇,粗短型刺。 在(E)中,蓝色阴影表示轴突,粉红色阴影表示脊柱,箭头指向PSD。

Box 2量化个体MSN突触的突触强度:为什么这是必要的?

药物滥用研究的一个重要优先事项是直接测量单个脊柱突触的突触强度,以便可以在结构性脊柱变化和突触传递的功能变化之间建立因果关系。 目前,这可以通过多光子激光扫描显微镜结合单个脊柱成像与多光子激光解笼笼状谷氨酸激活相同的单个棘[[...92, 93]。 另外一项重要的技术进步是识别特定传入输入对单个棘突进行突触的能力,因为突触结构和功能的药物诱导修饰可能根据输入而不同(例如,海马与杏仁核与NAc MSN的皮质输入。实现这一目标的令人兴奋但具有挑战性的方法是在特定传入输入的突触终端中表达光激活通道,例如通道视紫红质。这可以允许在切片制备中激活视觉上可识别的单个突触,同时对这些突刺进行成像。突触被用来记录他们对突触释放的谷氨酸的个体反应。最后,如文中所强调的,需要鉴定特定的NAc细胞类型,因为药物诱导的结构和功能突触修饰在表达Drd1-和Drd2的MSN之间可能不同。以及NAc中的各种中间神经元。

3。 细胞型结构可塑性特异性

NAc MSN存在于两种主要亚型中,主要含有Drd1或Drd2多巴胺受体。 受体下游的细胞内途径差异很大,因此控制神经元结构的分子途径可能相应地不同。 尽管在用Drd1-和Drd2表达的MSNs中,在用精神兴奋剂重复治疗后诱导树突棘,但是在Drd1神经元中新刺的长期稳定性似乎更大。 这些观察结果支持Drd1下游的细胞内信号通路可介导Spin的长期稳定性,而不是Drd2神经元[17, 86]。 实际上,含有Drd1的MSNs中增加的树突棘持续存在与Drd1 MSN中持续诱导ΔFosB和对慢性药物暴露的敏感行为反应高度相关[87, 88]。 因此,吗啡和可卡因可能调节Drd1和Drd2 MSN中不同的细胞内级联反应。 因此,一个关键问题是不同的滥用药物是否通过选择性调节这些不同的NAc MSN中的基因表达来差异调节神经元结构。 这是一个至关重要的考虑因素,因为这两个群体涉及NAc功能的不同方面,仍未完全定义,包括对可卡因行为影响的不同贡献。 例如,从Drd32和Drd32细胞中选择性敲除1 kDa(DARPP-2)的多巴胺和cAMP调节的磷蛋白对可卡因诱导的运动产生相反的作用[89]。 此外,从Drd1神经元中选择性敲除糖皮质激素受体降低了可卡因的动机并抑制了广泛剂量的摄入[90]。 现在能够使用更敏感的方法探测Drd1和Drd2 MSN中的分子变化(框1)将帮助我们了解这些神经细胞类型中发生的分子变化如何导致神经元结构的不同变化,以响应不同类型的滥用药物,以及这些变化如何影响成瘾行为。

结论

药物诱导的结构可塑性是与成瘾模型相关的更可复制和持久的变化之一。 许多相关研究和一些功能研究提供了令人信服的证据,证明这些神经适应症在调节对可卡因的行为致敏方面至关重要。 然而,也有一些功能性报告认为药物诱导的脊柱可塑性是一种与致敏无关的外延现象。 很明显,需要做更多的工作才能充分理解突触和结构可塑性在成瘾行为中的作用。 在这个阶段,对任何一方进行明确争论还为时过早,因为大多数已发表的研究依赖于总树突棘密度的测量,忽略了脊柱可塑性的许多特征(见 框1)。 在整个审查过程中,我们概述了未来调查的关键领域,总结如下 表2,这是澄清矛盾的实验数据和帮助解释树突脊椎可塑性在成瘾中的作用所需要的。 将需要使用多光子和电子显微镜进行的未来研究来比较阿片类药物和兴奋剂滥用药物对兴奋性突触的详细结构特性的影响,例如停靠池与储备池突触前囊泡的数量,PSD和活动区长度以及脊柱头部密度和体积。 这将有助于回答在吗啡和可卡因之后观察到的总树突棘密度中的矛盾差异是否确实反映了突触数量和强度的差异的问题。 此外,由于许多电生理变化的短暂性,我们需要更详细的树突可塑性,LTD / LTP的时间过程信息,以及阿片类药物和兴奋剂诱导的谷氨酸受体的插入或内化,这可能反映了特定的行为特征。瘾。 为了确定因果关系,我们需要确定这些功能和结构变化中的每一个如何影响类似上瘾的行为。 最后一点特别重要,需要集成多种技术。 首先,分子途径被鉴定为受滥用药物和下游靶基因的调节,所述基因靶基因被描述为任何相关的结构可塑性相关基因。 然后,通过使用病毒介导的基因转移,shRNA或诱导型遗传突变小鼠的表达来操纵这些分子途径,将有可能确定它们在慢性药物施用后在电生理学,结构和行为变化中的特定作用。 最后,所有这些研究必须考虑细胞类型和大脑区域特定的基础,以有意义地理解成瘾的脑病理学的精确机制。

表2  

突出的问题
框1  

致谢

国家药物滥用研究所的拨款支持了这项审查的准备工作

术语表

与成瘾相关的行为
这通常通过使用药物自我管理范例进行研究,包括获得和维持自我管理,戒断和灭绝,以及恢复(复发)
兴奋剂治疗方案
这包括在给定的持续时间内以给定剂量和频率进行的实验者或自我施用的可卡因安非他明或尼古丁。 然后在最后一次药物剂量后的不同时间分析动物
阿片类治疗范例
这包括在给定的持续时间内以给定剂量和频率进行的实验者或自我施用的吗啡,海洛因或其他阿片类药物滥用。 然后在最后一次药物剂量后的不同时间分析动物
大脑奖励区域
这些包括腹侧被盖区域的中脑多巴胺能神经元,以及这些神经元突出的边缘区域,包括伏隔核(腹侧纹状体)杏仁核,海马和前额皮质的几个区域(例如,内侧,眶额等)。
谷氨酸受体
脑中主要的离子型谷氨酸受体以特异性激动剂命名,α-氨基-3-羟基-5-甲基-4-异恶唑 - 丙酸酯(AMPA)和N-甲基-D-天冬氨酸(NMDA)
多巴胺受体
两种主要类型的多巴胺受体在伏核中表达,含有Drd1或Drd2受体,它们的受体后信号传导机制不同。 Drd1受体是Gs偶联并刺激腺苷酸环化酶,而Drd2受体是Gi / o偶联并抑制腺苷酸环化酶,激活内向整流K+ 通道,并抑制电压门控Ca.2+ 通道。 两种受体也可以调节细胞外信号调节激酶(ERK)级联反应
RhoGTPases
这些小G蛋白在肌动蛋白细胞角蛋白的调节中发挥核心作用,被认为是树突棘生长和回缩中不可或缺的一部分。 它们被鸟嘌呤核苷酸交换因子(GEF)激活并被GTP酶激活蛋白(GAPs)抑制
转录因子
这些蛋白质与响应基因内的特定DNA序列(称为响应元件)结合,从而增加或降低这些基因转录的速率。 调节树突棘的转录因子的实例是:ΔFosB(一种Fos家族蛋白),环AMP反应元件结合蛋白(CREB),核因子κB(NFκB)和肌细胞增强因子-2(MEF2)
蛋白激酶
几种蛋白激酶,即磷酸化其他蛋白质以调节其功能的酶,已经参与控制树突棘形成,包括Ca2+/钙调蛋白依赖性蛋白激酶-II(CaMKII),细胞周期蛋白依赖性激酶-5(Cdk5),p21激活激酶(PAK1)和lim结构域激酶(LIMK)等等
肌动蛋白相关蛋白
肌动蛋白细胞骨架受到大量蛋白质的调节,然而,每种蛋白质在最终生长或缩回脊柱或改变脊柱大小和形状方面的详细作用仍未完全了解。 例子包括肌动蛋白相关蛋白(ARPs),Wiskott-Aldrich综合征蛋白(WASPs),WASP家族verprolin同源物(WAVEs)和cofilin等等

脚注

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参考资料

1. Sklair-Tavron L,et al。 慢性吗啡诱导中脑边缘多巴胺神经元形态的明显变化。 Proc Natl Acad Sci US A. 1996;93(20):11202-7。 [PMC免费文章] [考研]
2. Robinson TE,Kolb B.先前使用安非他明的经验所产生的伏隔核和前额叶皮层神经元的持续结构修饰。 J Neurosci。 1997;17(21):8491-7。 [考研]
3. Robinson TE,Kolb B.与暴露于滥用药物有关的结构可塑性。 神经药理学。 2004;47(Suppl 1):33-46。 [考研]
4. Li Y,Acerbo MJ,Robinson TE。 行为致敏的诱导与伏隔核的核心(但不是壳)中的可卡因诱导的结构可塑性相关。 Eur J Neurosci。 2004;20(6):1647-54。 [考研]
5. Pulipparacharuvil S,et al。 可卡因调节MEF2以控制突触和行为可塑性。 神经元。 2008;59(4):621-33。 [PMC免费文章] [考研]
6. Russo SJ,et al。 核因子κB信号调节神经元形态和可卡因奖赏。 J Neurosci。 2009;29(11):3529-37。 [PMC免费文章] [考研]
7. Maze I,et al。 组蛋白甲基转移酶G9a在可卡因诱导的可塑性中的重要作用。 科学。 327(5962):213-6。 [PMC免费文章] [考研]
8. Norrholm SD,et al。 可卡因诱导的伏隔核中树突棘的增殖依赖于细胞周期蛋白依赖性激酶-5的活性。 神经科学。 2003;116(1):19-22。 [考研]
9. Russo SJ,et al。 成瘾的神经营养因子和结构可塑性。 神经药理学。 2009;56(Suppl 1):73-82。 [PMC免费文章] [考研]
10. Dietz DM,et al。 精神兴奋剂诱导结构可塑性的分子机制。 Pharmacopsychiatry。 2009;(42 Suppl 1):S69–78. [PMC免费文章] [考研]
11. Nestler EJ。 药物成瘾的分子机制。 J Neurosci。 1992;12(7):2439-50。 [考研]
12. Russo SJ,et al。 中脑多巴胺神经元中的IRS2-Akt通路调节对阿片类药物的行为和细胞反应。 Nat Neurosci。 2007;10(1):93-9。 [考研]
13. Robinson TE,et al。 实验者与自我给予吗啡对成年大鼠伏隔核,海马和新皮质中的树突棘的广泛但区域特异性影响。 突触。 2002;46(4):271-9。 [考研]
14. Robinson TE,et al。 可卡因自我管理改变了伏隔核和新皮质中的树突和树突棘的形态。 突触。 2001;39(3):257-66。 [考研]
15. Robinson TE,Kolb B.用安非他明或可卡因反复治疗后伏隔核和前额皮质中树突和树突棘形态的改变。 Eur J Neurosci。 1999;11(5):1598-604。 [考研]
16. Sarti F,et al。 急性可卡因暴露会改变腹侧被盖区域的脊柱密度和长期增强。 Eur J Neurosci。 2007;26(3):749-56。 [考研]
17. Lee KW,et al。 D1中可卡因诱导的树突棘形成和伏隔核中含有D2多巴胺受体的中型多刺神经元。 Proc Natl Acad Sci US A. 2006;103(9):3399-404。 [PMC免费文章] [考研]
18. Koob GF,Le Moal M.奖励神经电路的可塑性和吸毒成瘾的“黑暗面”。 Nat Neurosci。 2005;8(11):1442-4。 [考研]
19. Zito K,et al。 通过调节脊柱肌动蛋白细胞骨架诱导脊柱生长和突触形成。 神经元。 2004;44(2):321-34。 [考研]
20. Hamilton GF,Whitcher LT,Klintsova AY。 产后暴食样酒精暴露降低了树突复杂性,同时增加了mPFC II / III层锥体神经元中成熟棘的密度。 突触。 2009;64(2):127-135。 [PMC免费文章] [考研]
21. Luscher C,Bellone C.可卡因诱发的突触可塑性:成瘾的关键? Nat Neurosci。 2008;11(7):737-8。 [考研]
22. Ikemoto S. Dopamine奖励回路:从腹侧中脑到伏隔核 - 嗅结节复合体的两个投射系统。 脑住宅牧师 2007;56(1):27-78。 [PMC免费文章] [考研]
23. Belin D,Everitt BJ。 寻求可卡因的习惯依赖于连接腹侧和背侧纹状体的多巴胺依赖性连续连接。 神经元。 2008;57(3):432-41。 [考研]
24. Bourne J,Harris KM。 细刺是否学会了记得的蘑菇刺? Curr Opin Neurobiol。 2007;17(3):381-6。 [考研]
25. Carlisle HJ,肯尼迪MB。 脊椎结构和突触可塑性。 趋势神经科学。 2005;28(4):182-7。 [考研]
26. Tada T,Sheng M.树突棘形态发生的分子机制。 Curr Opin Neurobiol。 2006;16(1):95-101。 [考研]
27. Nagerl UV,et al。 海马神经元中双向活动依赖的形态可塑性。 神经元。 2004;44(5):759-67。 [考研]
28. Okamoto K,et al。 肌动蛋白动力学的快速和持续调节调节双向可塑性的突触后重组。 Nat Neurosci。 2004;7(10):1104-12。 [考研]
29. 左Y,等。 在大脑皮质的不同区域发展长期树突棘稳定性。 神经元。 2005;46(2):181-9。 [考研]
30. Matsuzaki M,et al。 单个树突棘长期增强的结构基础。 的性质。 2004;429(6993):761-6。 [考研]
31. Harris KM,Jensen FE,Tsao B.出生后第1天和大鼠海马(CA15)的树突棘和突触的三维结构:对突触生理学和长期增强的成熟的影响。 J Neurosci。 1992;12(7):2685-705。 [考研]
32. Holtmaat AJ,et al。 体内新皮质中的瞬时和持久性树突棘。 神经元。 2005;45(2):279-91。 [考研]
33. 沉HW,等。 在可卡因戒断的大鼠中改变树突棘的可塑性。 J Neurosci。 2009;29(9):2876-84。 [PMC免费文章] [考研]
34. Thomas MJ,et al。 伏核中的长期抑郁症:行为致敏与可卡因的神经相关性。 Nat Neurosci。 2001;4(12):1217-23。 [考研]
35. 黄YH,等。 体内可卡因经验产生沉默的突触。 神经元。 2009;63(1):40-7。 [PMC免费文章] [考研]
36. 马林卡RC,尼科尔·RA。 长期增强-十年的进步? 科学。 1999;285(5435):1870-4。 [考研]
37. Marie H,et al。 通过CaMKIV和CREB的急性体内表达产生沉默突触。 神经元。 2005;45(5):741-52。 [考研]
38. 盛M,等。 在大鼠皮层发育过程中改变异聚NMDA受体的亚基组成。 的性质。 1994;368(6467):144-7。 [考研]
39. Elias GM,et al。 SAP102和PSD-95对AMPA和NMDA受体的差异运输是突触发育的基础。 Proc Natl Acad Sci US A. 2008;105(52):20953-8。 [PMC免费文章] [考研]
40. Boudreau AC,et al。 大鼠伏核中的细胞表面AMPA受体在可卡因戒断期间增加,但在可卡因激发后内化,与促分裂原活化蛋白激酶的激活改变有关。 J Neurosci。 2007;27(39):10621-35。 [PMC免费文章] [考研]
41. Boudreau AC,Wolf ME。 对可卡因的行为致敏与伏隔核中AMPA受体表面表达的增加有关。 J Neurosci。 2005;25(40):9144-51。 [考研]
42. 康拉德KL等人。 伏隔核的形成缺乏AMPA受体的GluR2介导可卡因渴望的孵育。 的性质。 2008;454(7200):118-21。 [PMC免费文章] [考研]
43. Anderson SM,et al。 CaMKII:一种将可卡因寻求中的伏隔核多巴胺和谷氨酸系统连接起来的生化桥。 Nat Neurosci。 2008;11(3):344-53。 [考研]
44. Bachtell RK,et al。 GluR1在可卡因致敏和可卡因寻求行为中伏核神经元中的表达。 Eur J Neurosci。 2008;27(9):2229-40。 [考研]
45. Kourrich S,et al。 可卡因经验控制伏隔核中的双向突触可塑性。 J Neurosci。 2007;27(30):7921-8。 [考研]
46. Toda S,et al。 可卡因增加肌动蛋白循环:在寻求药物的恢复模式中的作用。 J Neurosci。 2006;26(5):1579-87。 [考研]
47. Spijker S,et al。 吗啡暴露和禁欲定义了大鼠伏隔核中基因表达的特定阶段。 FASEB J. 2004:03-0612fje。
48. 罗氏KW。 PSD-95的角色不断扩大:成瘾的新环节。 神经科学的趋势。 2004;27(12):699-700。 [考研]
49. Szumlinski KK,et al。 荷马异构体差异调节可卡因诱导的神经可塑性。 神经精神药理学。 2005;31(4):768-777。 [考研]
50. 姚WD等人。 鉴定PSD-95作为多巴胺介导的突触和行为可塑性的调节剂。 神经元。 2004;41(4):625-638。 [考研]
51. Heiman M,et al。 CNS细胞类型分子特征的转化分析方法。 细胞。 2008;135(4):738-748。 [PMC免费文章] [考研]
52. Kim WY,et al。 可卡因调节伏隔核中的ezrin-radixin-moesin蛋白和RhoA信号传导。 神经科学。 2009;163(2):501-505。 [考研]
53. 希望BT,等。 通过慢性可卡因和其他慢性治疗诱导由脑中改变的Fos样蛋白组成的长效AP-1复合物。 神经元。 1994;13(5):1235-44。 [考研]
54. Alibhai IN,et al。 调节fosB和DeltafosB mRNA表达:体内和体外研究。 Brain Res。 2007;1143:22-33。 [PMC免费文章] [考研]
55. Shaw-Lutchman TZ,et al。 在纳曲酮沉淀的吗啡戒断期间cAMP反应元件介导的转录的区域和细胞作图。 J Neurosci。 2002;22(9):3663-72。 [考研]
56. Shaw-Lutchman TZ,et al。 通过安非他明调节小鼠脑中CRE介导的转录。 突触。 2003;48(1):10-7。 [考研]
57. Perrotti LI,et al。 由滥用药物引起的大脑中DeltaFosB诱导的不同模式。 突触。 2008;62(5):358-69。 [PMC免费文章] [考研]
58. McClung CA,Nestler EJ。 CREB和ΔFosB对基因表达和可卡因奖赏的调节。 Nat Neurosci。 2003;6(11):1208-1215。 [考研]
59. Zachariou V,et al。 在视神经作用中伏隔核中ΔFosB的重要作用。 Nat Neurosci。 2006;9(2):205-211。 [考研]
60. Renthal W,et al。 通过可卡因调节染色质的全基因组分析揭示了sirtuins的作用。 神经元。 2009;62(3):335-48。 [PMC免费文章] [考研]
61. Carlezon WA,Jr,Duman RS,Nestler EJ。 CREB的许多面孔。 趋势神经科学。 2005;28(8):436-45。 [考研]
62. Murphy DD,Segal M.中枢神经元中树突棘的形态可塑性是由cAMP反应元件结合蛋白的激活介导的。 Proc Natl Acad Sci US A. 1997;94(4):1482-7。 [PMC免费文章] [考研]
63. Seigo S,et al。 CREB和MKK1的相反功能协同调节视皮层中树突棘的几何形状。 比较神经病学杂志。 2007;503(5):605-617。 [考研]
64. Graham DL,et al。 使用可卡因的伏隔核中的动态BDNF活性增加了自我给药和复发。 Nat Neurosci。 2007;10(8):1029-37。 [考研]
65. Pu L,Liu QS,Poo MM。 可卡因戒断后中脑多巴胺神经元中BDNF依赖性突触致敏。 Nat Neurosci。 2006;9(5):605-7。 [考研]
66. Vo N,et al。 cAMP反应元件结合蛋白诱导的microRNA调节神经元形态发生。 Proc Natl Acad Sci US A. 2005;102(45):16426-31。 [PMC免费文章] [考研]
67. Abe K,et al。 Vav2是Cdc42,Rac1和RhoA的激活剂。 J Biol Chem。 2000;275(14):10141-9。 [考研]
68. Farnsworth CL,et al。 由神经元交换因子Ras-GRF介导的Ras的钙活化。 的性质。 1995;376(6540):524-7。 [考研]
69. Krapivinsky G,et al。 NMDA受体通过NR2B和RasGRF1之间的直接相互作用与ERK途径偶联。 神经元。 2003;40(4):775-84。 [考研]
70. Penzes P,et al。 通过反式突触ephrinB-EphB受体激活Rho-GEF kalirin快速诱导树突棘形态发生。 神经元。 2003;37(2):263-74。 [考研]
71. Tolias KF,et al。 Rac1-GEF Tiam1将NMDA受体与树突状乔木和刺的活动依赖性发育相结合。 神经元。 2005;45(4):525-38。 [考研]
72. Edlund S,et al。 转化生长因子-β诱导的肌动蛋白细胞骨架的动员需要通过小GTP酶Cdc42和RhoA的信号传导。 Mol Biol细胞。 2002;13(3):902-14。 [PMC免费文章] [考研]
73. 王JQ,等。 谷氨酸信号传导至纹状体神经元中的Ras-MAPK:诱导型基因表达和可塑性的机制。 Mol Neurobiol。 2004;29(1):1-14。 [考研]
74. 袁XB,等。 Rho GTPases在介导轴突导向中的信号传导和串扰。 Nat Cell Biol。 2003;5(1):38-45。 [考研]
75. Machesky LM,et al。 疤痕是WASp相关蛋白,通过Arp2 / 3复合物激活肌动蛋白丝的成核。 Proc Natl Acad Sci US A. 1999;96(7):3739-44。 [PMC免费文章] [考研]
76. Miki H,et al。 通过WASP相关的肌动蛋白解聚蛋白N-WASP诱导形成的filopodium。 的性质。 1998;391(6662):93-6。 [考研]
77. Miki H,Suetsugu S,Takenawa T. WAVE,一种新的WASP家族蛋白,参与Rac诱导的肌动蛋白重组。 EMBO J. 1998;17(23):6932-41。 [PMC免费文章] [考研]
78. Fasano S,et al。 Ras-Guanine核苷酸释放因子1(Ras-GRF1)控制纹状体中细胞外信号调节激酶(ERK)信号的激活和对可卡因的长期行为反应。 生物学精神病学。 2009
79. Rothenfluh A,et al。 对乙醇的不同行为反应由替代的RhoGAP18B同种型调节。 细胞。 2006;127(1):199-211。 [考研]
80. Kumar A,et al。 染色质重塑是纹状体中可卡因诱导的可塑性的关键机制。 神经元。 2005;48(2):303-14。 [考研]
81. Kim Y,et al。 WAVE1的磷酸化调节肌动蛋白聚合和树突棘形态。 的性质。 2006;442(7104):814-7。 [考研]
82. Sung JY,et al。 WAVE1控制树突棘中神经元活动诱导的线粒体分布。 Proc Natl Acad Sci US A. 2008;105(8):3112-6。 [PMC免费文章] [考研]
83. Benavides DR,et al。 Cdk5调节可卡因奖励,动机和纹状体神经元兴奋性。 J Neurosci。 2007;27(47):12967-76。 [考研]
84. Bibb JA,et al。 长期接触可卡因的作用受神经元蛋白Cdk5的调节。 的性质。 2001;410(6826):376-80。 [考研]
85. Berglind WJ,et al。 单次PFC内输注BDNF可防止可卡因诱导的伏隔核内细胞外谷氨酸的改变。 J Neurosci。 2009;29(12):3715-9。 [PMC免费文章] [考研]
86. Kim Y,et al。 哌甲酯诱导的树突棘形成和伏隔核中的DeltaFosB表达。 Proc Natl Acad Sci US A. 2009;106(8):2915-20。 [PMC免费文章] [考研]
87. 希望BT,等。 通过慢性可卡因和其他慢性治疗诱导由脑中改变的Fos样蛋白组成的长效AP-1复合物。 神经元。 1994;13(5):1235-1244。 [考研]
88. Nestler EJ。 评论。 成瘾的转录机制:DeltaFosB的作用。 Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci。 2008;363(1507):3245-55。 [PMC免费文章] [考研]
89. Bateup HS,et al。 不同种群的中型多刺神经元差异调节纹状体运动行为。 Proc Natl Acad Sci US A. 在新闻。
90. Ambroggi F,et al。 压力和成瘾:多巴胺能神经元中的糖皮质激素受体促进可卡因寻求。 Nat Neurosci。 2009;12(3):247-249。 [考研]
91. Lisman JE,Raghavachari S,Tsien RW。 中枢谷氨酸能突触的量子传递的基础事件序列。 Nat Rev Neurosci。 2007;8(8):597-609。 [考研]
92. Steiner P,et al。 PSD-95丝氨酸73磷酸化对突触后密度的不稳定抑制脊柱生长和突触可塑性。 神经元。 2008;60(5):788-802。 [PMC免费文章] [考研]
93. Kantevari S,et al。 谷氨酸和GABA的双色双光子解笼锁。 纳特方法。 7(2):123-5。 [考研]